哈哈咕咕
小鼠结肠组织,proteintech的牌子,230的分子量。看到一些帖子说不太好跑,有没有大神有成功经验可以分享一下的??谢谢各位学术大佬
loveliufudan
以下是一些可能有用的电泳转膜条件设置建议:
电泳条件:
针对您的样品特点,建议您尝试10%或12%的SDS-PAGE凝胶电泳分离,如果您的样品数量有限,可以使用1D电泳。电泳过程中,保持电流密度在20 mA/gel左右,使得样品能够充分分离。
转膜条件:
您可以根据您的样品特性和实验需求,尝试以下两种转膜条件:
Wet transfer:
在常规缓冲液中,使用常规的SDS转移缓冲液(例如Tris-Glycine缓冲液),pH设为8.3左右,电流密度为0.1-0.2mA/cm2,时间为1小时至过夜不等。建议在转膜前将膜预先孵育在转移缓冲液中,以保证膜的完全湿润。
Semi-dry transfer:
该方法使用缓冲液量较少,转移速度更快,且需要较少的电流。在该方法中,您可以尝试将电流密度设为0.8-1.0mA/cm2,时间为15-30分钟不等。由于转膜速度较快,建议您根据实验结果进行优化。
在转膜过程中,可以通过Ponceau S染色来验证转膜效果,以确保目标蛋白已成功转移到膜上。
土井挞克树
1.推荐使用8%浓度的分离胶进行电泳。
2.建议使用阳性对照。
3.建议在转膜缓冲液中加入SDS至终浓度为0.1%。
4. 建议使用0.45μm的PVDF膜。
5. 建议转膜缓冲液中使用10%甲醇或更低浓度。
6.建议转膜完成后使用丽春红染色,确定转膜是否成功。
balalaLy
可以试一下用1.0的板,7%的胶来跑,转膜用90V 4小时
相关产品推荐
相关问答