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        免疫荧光技术之染色方法

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        一、制片

        选无自发性荧光的石英玻片或普通优质玻片,洗净后浸泡于无水乙醇和乙醚等量混合液中。用时取出用绸布擦净。将待检样品如组织块剪成适当大小印压于玻片上。也可采用冰冻切片或石蜡切片样品。

        二、固定

        除研究细胞表面抗原或不稳定抗原可不固定外,一般均应固定。

        固定的作用有三:

        1. 防止标本从玻片上脱落。

        2. 除去防碍抗原-抗体结合的类脂,使抗原抗体结合物易于获得良好的染色结果。

        3. 固定的标本易于保存,如组织切片固定后在-20℃下可保存一年而不改变其染色特性。

        标本的固定原则是:

        1. 不能损伤细胞内的抗原。

        2. 不能凝集蛋白质。

        3. 不能损伤细胞形态。

        4. 固定后应保持细胞膜的通透性,以允许抗体进入与抗原结合。

        三、水洗

        固定后以冷的0.01 Mol/L pH7.4PBS液浸泡冲洗,最后以蒸馏水冲洗,防止自发性荧光。

        四、染色

        染色分直接染色法与间接染色法。

        1. 材料与试剂

        (1)荧光抗体,稀释至应用浓度。

        (2)0.01 Mol/L pH7.4PBS液

        (3)9份优质甘油加1份pH7.4PBS液即为甘油缓冲液。甘油有减少非特异性荧光的作用。

        (4)带盖方盘

        2. 直接染色法

        (1)将固定好的玻片置于湿盘中,滴加荧光抗体染色液,以覆盖为度,加盖,37℃感做30 min~45min。

        (2)PBS冲洗3次,每次冲洗3 min,即3×3冲洗。

        (3)蒸馏水冲洗。

        (4)滴甘油缓冲液一滴,封片,荧光显微镜检查。

        3. 间接染色法

        (1) 检查抗原:
        ①取固定标本,加已知的免疫血清,37℃孵育30 min。
        ②以PBS液3×3冲洗。
        ③再加荧光标记的抗抗体,37℃孵育30 min。
        ④PBS 3×3冲洗。
        ⑤H2O冲洗,凉干。
        ⑥加甘油缓冲液,封片、镜检。

        (2)检查抗体:
        ①免疫后动物的淋巴组织涂片,自然干燥,甲醇固定。
        ②滴加相应抗原液(按1:100~1:500稀释),37℃孵育30 min。
        ③PBS液3×3冲洗。
        ④加荧光抗体,37℃孵育30 min。
        ⑤PBS液3×3冲洗。
        ⑥水洗,凉干。
        ⑦加甘油缓冲液,封片、镜检。

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