细胞样本中提取外泌体

差速超速离心法主要是采取逐渐提高离心速度的方法分离大小不同的细胞器。起始离心速度较低，让较大的颗粒沉降到管底，小的颗粒仍然悬浮在上清液中。选取所需沉淀或者上清液样本改用较高的离心速度和超速离心样本，将较小样本颗粒沉降，以此类推，达到分离不同密度、大小颗粒样本的目的。

分离富集得到相对较纯的外泌体颗粒

(1) 将实验样本放入水（室温）中融化，记录原始样本体积与样品编号，于超净台中取实验样本 40 mL 均分加入到 50 mL 的离心管后用 PBS 重悬至 40 mL，配平后使用低速离心机 300 g，4 ℃ 离心 10 min，取上清液转移至新的 50 mL 离心管中；

(2) 将收集的上清液配平后使用低速离心机 2000 g，4 ℃ 离心 10 min，取上清液转移至超速离心机配套的离心管（40 mL）中；

(3) 配平所收集的超速离心机配套离心管中的上清液后，10000 g，4 ℃ 离心 30 min，取上清液转移至超速离心机配套的离心管（40 mL）中；

(4) 将上清液倒入大超离管中，装上离心管盖，在离心管底部线圈位置画圈便于分辨重悬位置，配平、装入角转子，画圈标记处朝外放置。设置 100000 g，4 ℃ 离心 70 min，取透明沉淀（拆去离心盖，倒掉上清，将离心管倒置，防止液体回流），并用 400 μL 的 PBS 对画圈处重悬；所得即为外泌体溶液。

(5) 按实验检测的要求分装后 -80 ℃ 冰箱保存。

1. 注意标记沉淀大致位置，避免下机后，遗失位置信息，洗脱不充分或者为洗脱到外泌体；

2. 注意全程无菌操作，避免污染，影响后续实验；

3. 高速离心前，一定注意离心管整体的配平（质量平），以避免发生安全事故或者导致严重的机器损毁；

4. 收集的新鲜样本，若不及时分离，建议用 2000 g 离心，去除细胞碎片，再移至 -80 ℃ 保存，避免后续组学分析时发生核糖体污染等情况的发生。

1. 未见明显沉淀物：细胞上清一般沉淀很少，几乎不可见，所以对于重点标记处一定仔细洗脱。

2. 重悬后有可见杂质：一些离心管盖可能经过重复的使用会存在镀层脱落沉淀，可选择瞬离取上清或者过滤等方式去除（可能会造成部分颗粒损失）。