酶消化法

相关实验：大鼠乳鼠成骨细胞培养实验

最新修订时间：2024-05-13

原理

取材于出生2~3 d 小鼠颅骨，以含20%胎牛血清的DMEM培养液进行培养，采用胶原酶消化法分离成骨细胞，并进行细胞接种与传代。采用胶原酶消化法分离培养成骨细胞是一种可靠、简便、快速的细胞原代分离培养方法。

材料与仪器

实验材料	SD大鼠
试剂、试剂盒	胰蛋白酶 F12 完全培养液 Ⅱ型胶原酶酒精
仪器、耗材	手术器械磁力搅拌器

步骤

一、实验步骤

1. 拉颈处死24 小时内新生的SD大鼠，75%乙醇浸泡5 min，取出头盖骨，分离顶骨和额骨，冰生理盐水液反复洗涤大鼠乳鼠颅盖骨标本除去脂肪组织及残留血，放入另一盛有F12 完全培基液的培养皿中再洗涤，将颅骨剪成2～5 mm²碎片，将洗涤过的骨碎片用 0.25%胰蛋白酶2 ml 预消化15 min，以清除纤维组织细胞，弃去上清液(其中主要含成纤维细胞)。

2. 然后以0.1% Ⅱ型胶原酶10 ml，在37℃环境中消化 20 分钟，室温下磁力搅拌消化20 分钟。静置数分钟，收集消化液，室温下以1200 rpm离心10 分钟。去除上清液，用20% 胎牛血清的F12 培养液4 ml 悬浮细胞，接种于75 ml 培养瓶中，补培养液8 ml 使每瓶液体量达到12 ml；对静置后沉淀部分可再重复以胶原酶消化20 分钟、磁力搅拌消化15 分钟、离心10 分钟，将获得的3 瓶细胞放置于二氧化碳培养箱，在5% CO₂，95%空气，37℃温度下培养，24 小时后可见细胞贴壁生长，胞质开始伸展，换新鲜培养液，以后每隔48 小时换培养液(注：消化视具体情况而定，也可多消化 1 遍)。

3. 原代培养一般接种后第7 天能长满。传代时，取生长良好、贴壁松紧适度的成骨细胞 1 瓶，弃去培养液，传代时先以 PBS 冲洗 2 遍，加 0.25%胰酶1 ml，室温下消化3～5 分钟，将胰蛋白酶液弃去，加 F12 培养液充分吹打8-10 分钟。将已消化的细胞收集、合并，计数；用 F12 完全培基调节至细胞浓度为合适浓度。一般取2-5 代成骨细胞进行实验。代数太多，细胞老化或者分化明显。

二、结果

如图所示，成骨细胞的形状和成纤维细胞非常相似，但是不同的是，比成纤维细胞更不容易消化，尤其是传代次数多，细胞老化的时候，非常难消化，并且不易消化成单个细胞。