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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 规格:
1 mL×10
GST标签蛋白纯化琼脂糖凝胶
Glutathione Agarose Resin
本产品 4℃运输;保存于 4℃,禁止产品冻结,长期存放请保证试剂管竖立向上,凝胶浸没于保护液中,保质期24 个月。
货号规格
goodYJ105 1 mL×10
产品简介
good本产品可用于纯化各种表达系统融合表达的 GST 重组蛋白,其是以由高度交联的 4% 琼脂糖凝胶为基质,通过 12 个原子的间隔臂,用化学方法共价结合还原型谷胱甘肽制作而成。
产品参数
自备试剂
操作步骤
good◆ 样本处理(以大肠杆菌表达系统为例)
good◆gg1. 离心收集大肠杆菌(4℃,4,000×g,30 min),弃上清;
good◆gg2. 用冷1×PBS(货号:PS110)重悬细胞, 如果需要,可加入适量的添加剂,如非离子去污剂(NP-40)或蛋白酶抑制剂(货号:GRF101);
good◆gg3. 用超声波破碎法在冰上破碎菌体,直到样品破碎完全;
good◆gg4. (可选)如果裂解物太过粘稠,可以加入RNase A(终浓度10 μg/mL)和DNase I(终浓度5 μg/mL)并在冰上孵育10~15 min;
good◆gg5. 离心收集上清(4℃,12,000×g,20 min);
good◆gg6. SDS-PAGE分析GST融合蛋白的含量及可溶性;
good◆ 纯化重组GST融合蛋白
good◆gg7. 轻轻重悬GST标签蛋白纯化琼脂糖凝胶 ,吸取适量加入重力柱中,用10倍柱体积的冷1×PBS(货号:PS110)平衡GST琼脂糖凝胶;
good◆gg8. 将步骤5制备好的含有GST融合蛋白的上清液加入到纯化柱中,流速控制为0.5~1 mL/min;
good◆gg9. 蛋白上清液全部流出纯化柱后,立刻加入1×PBS清洗纯化柱,所需量大约为柱体积的 20倍或者直到流出液的A280值达到最低且稳定;
good◆g10. 用10~15倍柱体积的现配 洗脱缓冲液 以0.5~1 mL/min的流速洗脱,收集洗脱液。或者根据流出液A280值判断,当数值陡然上升时开始接收洗脱液,直到A280数值降至最低且稳定时,停止收集。后续可根据目的蛋白的性质和用途,4℃透析到20 mM Tris-HCl,pH 8.0或者1×PBS,pH 7.4中,以去除游离的谷胱甘肽。
good◆ 凝胶再生及储存
good◆ GST标签蛋白纯化琼脂糖凝胶 可以重复使用,但随着使用次数增多,非特异性结合的蛋白聚集往往会造成流速和蛋白结合载量的下降,这时便需要对琼脂糖凝胶填料进行清洗。
good◆g11. 使用5倍纯化柱体积去离子水清洗琼脂糖凝胶填料;
good◆g12. 使用2倍柱体积的6 M盐酸胍溶液进行清洗;
good◆g13. 使用5倍柱体积去离子水清洗填料;
good◆g14. 使用3~4倍柱体积70%乙醇或2倍柱体积的1%Triton X-100清洗填料;
good◆g15. 使用5倍柱体积去离子水清洗填料,即完成琼脂糖凝胶填料再生。
good◆g15. 注:填料再生后,可以立即使用,如不立即使用,需要将填料悬浮于等体积的20%乙醇中,置于 4℃保存。
注意事项
good1. 琼脂糖凝胶应保存在储存溶液中,防止干燥;
good2. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作;
good3. 本产品仅限科研使用。
常见问题解析
| 问题 | 原因 | 解决方案 |
| GST融合蛋白的产量低或无法检测到 | 融合蛋白形成包涵体 | 采用低温(16~25℃)培养细胞,或者诱导过程中降低诱 导剂的终浓度至1 mM,或者缩短诱导时间 |
| 纯化前需要完全融解和复性。将裂解液与GST标签蛋白纯化琼脂糖凝胶在摇床上轻摇2个小时或者更长时间(过夜),充分结合 | ||
| 融合蛋白可能失活 | 采用温和的超声破碎条件或者其它的裂解条件,比如采用溶菌酶 | |
| 融合蛋白被蛋白酶降解 | 在裂解步骤或洗涤步骤加入适量的蛋白酶抑制剂 | |
| 融合蛋白不能有效地从树脂上洗脱下来 | 延长洗脱时间,或者增加洗脱缓冲液中还原性谷胱甘肽的浓度至15 mM或者更高 | |
| 调节洗脱缓冲液的pH值至8.0~9.0 | ||
| 在洗脱缓冲液中加入Triton X-100(终浓度0.1%)、辛基-葡萄糖苷(终浓度2%)或者NaCl(终浓度0.1~0.2 M) | ||
| 洗脱缓冲液中有较多杂带 | 融合蛋白被蛋白酶降解 | 在裂解步骤或漂洗步骤加入适量的蛋白酶抑制剂 |
| 一些宿主蛋白,比如伴侣蛋白,可能会和融合蛋白互相作用 | 在漂洗缓冲液中加入DTT(终浓度5 mM)。在纯化前将重组蛋白溶液和伴侣蛋白溶液(2 mM ATP, 10 mM MgSO4, 50 mM Tris-HCl)37℃振荡10 min | |
| 过度的超声处理会导致一些蛋白与融合蛋白相结合 | 采用温和的超声破碎条件或者其它的裂解条件 | |
| 有些蛋白会与融合蛋白或树脂发生非特异性结合 | 优化漂洗条件:加入一些洗涤剂如1% Triton X-100、 1% Tween-20、0.03% SDS或者0.1% NP-40可以降低非特异性吸附;优化漂洗缓冲液中的盐浓度也可以降低非特异性吸附 |
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