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YJ105 GST标签蛋白纯化琼脂糖凝胶

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  • 雅酶已认证
  • YJ105
  • 2026年01月14日
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    • 详细信息
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    • 技术资料
    • 规格

      1 mL×10

    GST标签蛋白纯化琼脂糖凝胶
    Glutathione Agarose Resin
    本产品 4℃运输;保存于 4℃,禁止产品冻结,长期存放请保证试剂管竖立向上,凝胶浸没于保护液中,保质期24 个月。

    货号规格
    goodYJ105     1 mL×10

    产品简介
    good本产品可用于纯化各种表达系统融合表达的 GST 重组蛋白,其是以由高度交联的 4% 琼脂糖凝胶为基质,通过 12 个原子的间隔臂,用化学方法共价结合还原型谷胱甘肽制作而成。

    产品参数

    产品细节图片1


    自备试剂

    产品细节图片2


    操作步骤
    good
    ◆ 样本处理(以大肠杆菌表达系统为例)
    goodgg1. 离心收集大肠杆菌(4,4,000×g,30 min),弃上清;
    goodgg2. 用冷1×PBS(货号PS110)重悬细胞, 如果需要,可加入适量的添加剂,如非离子去污剂(NP-40)蛋白酶抑制剂(货号:GRF101);
    goodgg3. 用超声波破碎法在冰上破碎菌体,直到样品破碎完全;
    goodgg4. (可选)如果裂解物太过粘稠,可以加入RNase A(终浓度10 μg/mL)和DNase I(终浓度5 μg/mL)并在冰上孵育10~15 min;
    goodgg5. 离心收集上清(412,000×g20 min);
    goodgg6. SDS-PAGE分析GST融合蛋白的含量及可溶性;

    good◆ 纯化重组GST融合蛋白
    goodgg7. 轻轻重悬GST标签蛋白纯化琼脂糖凝胶 吸取适量加入重力柱中用10倍柱体积的冷1×PBS(货号PS110)平衡GST琼脂糖凝胶;
    goodgg8. 将步骤5制备好的含有GST融合蛋白的上清液加入到纯化柱中,流速控制为0.5~1 mL/min;
    goodgg9. 蛋白上清液全部流出纯化柱后立刻加入1×PBS清洗纯化柱,所需量大约为柱体积的 20倍或者直到流出液的A280值达到最低且稳定;
    goodg10. 用10~15倍柱体积的现配 洗脱缓冲液 以0.5~1 mL/min的流速洗脱,收集洗脱液。或者根据流出液A280值判断,当数值陡然上升时开始接收洗脱液,直到A280数值降至最低且稳定时,停止收集。后续可根据目的蛋白的性质和用途4透析到20 mM Tris-HCl,pH 8.0或者1×PBS,pH 7.4中,以去除游离的谷胱甘肽。

    good◆ 凝胶再生及储存
    good◆ GST标签蛋白纯化琼脂糖凝胶 可以重复使用,但随着使用次数增多,非特异性结合的蛋白聚集往往造成流速和蛋白结合载量下降,这时便需要对琼脂糖凝胶填料进行清洗。
    goodg11. 使用5倍纯化柱体积去离子水清洗琼脂糖凝胶填料;
    goodg12. 使用2倍柱体积的6 M盐酸胍溶液进行清洗;
    goodg13. 使用5倍柱体积去离子水清洗填料;
    goodg14. 使用3~4倍柱体积70%乙醇或2倍柱体积的1%Triton X-100清洗填料;
    goodg15. 使用5倍柱体积去离子水清洗填料,即完成琼脂糖凝胶填料再生。
    goodg15. 注:填料再生后,可以立即使用,如不立即使用,需要将填料悬浮于等体积的20%乙醇中,置于 4℃保存。

    注意事项
    good1. 
    琼脂糖凝胶应保存在储存溶液中,防止干燥;
    good2. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作;
    good3. 本产品仅限科研使用。

    常见问题解析
     

    问题 原因 解决方案
    GST融合蛋白的产量低或无法检测到 融合蛋白形成包涵体 采用低温(16~25℃)培养细胞,或者诱导过程中降低诱
    导剂的终浓度至1 mM,或者缩短诱导时间
    纯化前需要完全融解和复性。将裂解液与GST标签蛋白纯化琼脂糖凝胶在摇床上轻摇2个小时或者更长时间(过夜),充分结合
    融合蛋白可能失活 采用温和的超声破碎条件或者其它的裂解条件,比如采用溶菌酶
    融合蛋白被蛋白酶降解 在裂解步骤或洗涤步骤加入适量的蛋白酶抑制剂
    融合蛋白不能有效地从树脂上洗脱下来 延长洗脱时间,或者增加洗脱缓冲液中还原性谷胱甘肽的浓度至15 mM或者更高
    调节洗脱缓冲液的pH值至8.0~9.0
    在洗脱缓冲液中加入Triton X-100(终浓度0.1%)、辛基-葡萄糖苷(终浓度2%)或者NaCl(终浓度0.1~0.2 M)
    洗脱缓冲液中有较多杂带 融合蛋白被蛋白酶降解 在裂解步骤或漂洗步骤加入适量的蛋白酶抑制剂
    一些宿主蛋白,比如伴侣蛋白,可能会和融合蛋白互相作用 在漂洗缓冲液中加入DTT(终浓度5 mM)。在纯化前将重组蛋白溶液和伴侣蛋白溶液(2 mM ATP, 10 mM MgSO4, 50 mM Tris-HCl)37℃振荡10 min
    过度的超声处理会导致一些蛋白与融合蛋白相结合 采用温和的超声破碎条件或者其它的裂解条件
    有些蛋白会与融合蛋白或树脂发生非特异性结合 优化漂洗条件:加入一些洗涤剂如1% Triton X-100、
    1% Tween-20、0.03% SDS或者0.1% NP-40可以降低非特异性吸附;优化漂洗缓冲液中的盐浓度也可以降低非特异性吸附



     

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