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小鼠前脂肪细胞

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  • 2025年07月16日
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      上海机纯实业有限公司

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      小鼠前脂肪细胞

    细胞名称:    小鼠前脂肪细胞

    种属来源:    小鼠

    组织来源:    实验动物的正常脂肪组织

    疾病特征:    正常原代细胞

    细胞形态:    梭形细胞,不规则细胞

    生长特性:    贴壁生长

    培 养 基:    我们推荐使用EliteCell原代前脂肪细胞培养体系

    小鼠前脂肪细胞

    作为体外培养原代前脂肪细胞的培养基。

    生长条件:    气相:空气,95%;二氧化碳,5%; 温度:37 ℃,

    传代方法:    1:2至1:6,每周2次。

    冻存条件:    90% 完全培养基+10% DMSO,液氮储存

    细胞鉴定:    前脂肪细胞因子-1(Pref-1)免疫荧光染色为阳性,经鉴定细胞纯度高于90%。

    QC检 测:    不含有 HIV-1、 HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌。

    特点和简介
    脂肪组织在体内有在胞浆内积聚脂滴的成熟脂肪细胞和未在胞浆内积聚脂滴但有这种潜能的前脂肪细胞。前脂肪细胞呈梭形,是一类具有增殖和向脂肪细胞分化能力的特异化了的前提细胞,与肥胖有着非常密切的关系。

    接受后处理
    1) 收到细胞后,请检查是否漏液 ,如果漏液,请拍照片发给我们。

    2) 请先在显微镜下确认细胞生长 状态,去掉封口膜并将T25瓶置于37℃培养约2-3h。

    3) 弃去T25瓶中的培养基,添加 6ml本公司附带的完全培养基。

    4) 如果细胞密度达80%-90%请及 时进行细胞传代,传代培养用6ml本公司附带的完全培养基。

    5) 接到细胞次日,请检查小鼠前脂肪细胞是 否污染,若发现污染或疑似污染,请及时与我们取得联系。

    培养操作
    1)复苏细胞:将含有 1mL 细胞悬液的冻存管在 37℃水浴中迅速摇晃解冻,加 入 4mL 培养基混合均 匀。在 1000RPM 条件下离心 4 分钟,弃去上清液,补 加 1-2mL 培养基后吹匀。然后将所有细胞悬液加入培养瓶中培 养过夜(或将 细胞悬液加入 10cm 皿中,加入约 8ml 培养基,培养过夜)。第二天换液并 检查细胞密度。

    2)细胞传代:如果细胞密度达 80%-90%,即可进行传代培养。

    1. 弃去培养上清,用不含钙、镁离子的 PBS 润洗细胞 1-2 次。

    2. 加 1ml 消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培养瓶中,置于 37℃培 养箱中消化 1-2 分钟,然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分 变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养 瓶后加少量培养基终止消 化。

    3. 按 6-8ml/瓶补加培养基,轻轻打匀后吸出,在 1000RPM 条件下离心 4 分 钟,弃去上清液,补加 1-2mL 培养液后吹匀。

    4. 将细胞悬液按 1:2 比例分到新的含 8ml 培养基的新皿中或者瓶中。

    3)细胞冻存:待细胞生长状态良时,可进行细胞冻存。下面 T25 瓶为类;

    1. 细胞冻存时,弃去培养基后,PBS 清洗一遍后加入 1ml 胰酶,细胞变圆 脱 落后,加入 1ml 含血清的培养基终止消化,可使用血球计数板计数。

    2. 4 min 1000rpm 离心去掉上清。加 1ml 血清重悬细胞,根据细胞数量加 入血 清和 DMSO,轻轻混匀,DMSO 终浓度为 10%,细胞密度不低于1x106/ml,每支冻存管冻存 1ml 细胞悬液,注意冻 存管做标识。

    3. 将冻存管置于程序降温盒中,放入-80 度冰箱,2 个小时以后转入液氮灌储存。记录冻存管位置以便下次拿取。

    注意事项
    1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完,培养液是否有漏液、浑浊等现象,若有上述现 象发生请及 时和我们联系。

    2. 仔细阅读细胞说明书,了解细胞相关信息,如细胞形态、所用培养基、血清比例、所 需细胞因子 等,确保细胞培养条件一致。若由于培养条件不一致而导致细胞出现问 题,责任由客户自行承担。

    3.   用 75%酒精擦拭细胞瓶表面,显微镜下观察细胞状态。因运输问题贴壁细胞会有少量 从瓶 壁脱落,将细胞置于培养箱内静置培养 4~6 小时,再取出观察。此时多数细胞均 会贴壁,若细胞仍不能贴壁请用台盼蓝 染色测定细胞活力,如果证实细胞活力正常, 请将细胞离心后用新鲜培养基再次贴壁培养;如果染色结果显示细胞无活 力,请拍下 照片及时和我们联系,信息确认后我们为您再免费寄送一次。

    4.   静置细胞贴壁后,请将细胞瓶内的培养基倒出,留 6~8mL 维持细胞正常培养,待细 胞汇 合度  80%左右时正常传代。

    5.   请客户用相同条件的培养基用于细胞培养。培养瓶内多余的培养基可收集备用,细胞 传代时可以 一定比例和客户自备的培养基混合,使细胞逐渐适应培养条件。

    6.   建议客户收到细胞后前 3 天各拍几张细胞照片,记录细胞状态,便于和我司技术 部 沟通交流。由于小鼠前脂肪细胞运输的原因,个别敏感细胞会出现不稳定的情况,请及时和我们联 系,告知细胞的具体情况,以便我们 的技术人员跟踪回访直至问题解决。

    7.   该细胞仅供科研使用。

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    相关实验
    • 正常小鼠前脂肪细胞的培养

      实验材料: 1. 细胞来源:8—12天龄的小鼠; 2. 清洗液:不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS,添加200000IU/L青霉素、200mg/L链霉素,pH7.4; 3. 消化液:0.3%胶原酶溶液,含4%牛血清白蛋白。用Hanks液配制; 4. DW培养液:DMEM和WAJC404培养液按1:1(V/V)混合,添加100IU/ml青霉素、50µg/ml链霉素; 5. 培养液a:DW培养液,10%胎牛血清; 6. 培养液b:DW培养液,补充胰岛素10

    • 原代培养人前脂肪细胞

      吸管反复吹打使组织块分散,然后通过孔径25μM(200目)的筛网过滤,收集滤液和未过滤的组织块。5、将滤液以600g离心5分钟弃上清,加入原代培养的基础培养基制成细胞悬液。6、将未滤过的组织按照上述过程再处理一次,将俩次获得的细胞悬液混匀计数,按照104个/cm2的密度接种于培养瓶里,于37度,5%CO2培养箱中培养。接种12-16小时基本贴壁。在增殖状态下的前脂肪细胞可以使用胰蛋白酶消化的方法传代,并且可以冻存和复苏。

    • 正常大鼠前脂肪细胞的培养

      甲腺原氨酸(T3 )200pmol/L;       8. 筛网:孔径为25μm的尼龙网筛。         实验方法:       1. 取材       ① 取用普通食物喂养的4周龄雄性大鼠,乙醚麻醉后断头处死;       ② 在无菌条件下从附睾周围切取脂肪垫,放入培养皿中。尽量除去血管。然后用清洗液冲洗3次;         2. 分离细胞       ①  充分剪碎所取脂肪细胞。然后放入消化液中,37℃水浴中振荡消化40

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