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- XK-YDXB-1968
- 2026年02月16日
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
73
- 细胞类型：
原代细胞
- 物种来源：
人/大鼠/小鼠/其他
- 细胞形态：
上皮样/成纤维样/淋巴
- 运输方式：
常温运输/干冰运输
- 生长状态：
贴壁/悬浮
- 规格：
5ml-500ml
细胞类型：原代细胞
大鼠冠状动脉内皮细胞以下实验方案介绍了贴壁培养哺乳动物细胞传代的一般流程。请注意昆虫细胞与哺乳动物细胞传代的一些关键步骤有所不同。
1）装有贴壁细胞的培养容器
2）经过组织培养处理的培养瓶、培养板或培养皿
3）完全生长培养基，预热至 37°C
4）一次性无菌 15-mL 试管
5）37°C 培养箱，充有二氧化碳浓度为 5% 的湿化空气
6）平衡盐溶液，例如：杜尔贝科盐缓冲液 (DPBS)，不含、镁和红
7）解离剂，例如：胰蛋白酶或 TrypLE™ Express，不含红
8）用于活细胞和总细胞计数的试剂和设备，例如：Countess® 自动细胞计数仪、台盼蓝染料和血球计数器，或者 Coulter Counter® (Beckman Coulter)
大鼠冠状动脉内皮细胞贴壁细胞传代的第一步是通过酶或机械方法将细胞从培养容器表面解离下来。
贴壁细胞传代流程
所有与细胞接触的溶液和设备均应为无菌状态。必须采用正确的无菌技术，并且在层流通风橱内工作。
1 .从培养容器中吸出用过的细胞培养基并丢弃。
2 .用不含和镁的平衡盐溶液冲洗细胞 (每 10 cm 2 培养表面积需要2 mL溶液)。从与贴壁细胞层相对的容器一侧轻轻加入冲洗液，以避免搅动细胞层，前后摇晃容器数次。
注：冲洗步骤可去除可能抑制解离剂作用的少量血清、和镁。
3 .从培养容器中吸出冲洗液并丢弃。
4 .向培养瓶中加入预热的解离剂 (例如：胰蛋白酶或 TrypLE™)；试剂量应足以覆盖细胞层(每 10 cm 2 大约 0 .5 mL)。轻轻摇晃容器，使试剂完全覆盖细胞层。
5 .将培养容器在室温下孵育约 2 分钟。请注意实际孵育时间根据所用细胞系不同而有所差异。
6 .在显微镜下观察细胞解离情况。如果解离程度未达 90%，可将孵育时间延长几分钟，每30 秒钟检查一次解离情况。也可轻轻拍打培养容器以加快细胞解离。
7 .细胞解离程度大于等于 90% 时，倾斜培养容器，使细胞上液体尽快流尽。加入所用解离剂两倍体积的预热完全生长培养基。吹打细胞层表面数次，使培养基分散。
8 .将细胞转移到 15-mL 锥形管中，以 200 × g 的离心力离心 5 至 10 分钟。请注意离心速度和时间依细胞种类不同而有所差异。
9 . 用最少体积的预热完全生长培养基重新悬浮细胞沉淀，取出少量样品进行计数。
10 .采用血球计数器、细胞计数仪按照台盼蓝拒染法或者使用 Countess® 自动细胞计数仪测定总细胞数和活细胞百分比。必要时，可再次向细胞中加入生长培养基，以便达到所需的细胞浓度，并重新进行细胞计数。
注：我们建议使用 Countess® 自动细胞计数仪测定总细胞数和活细胞百分比。Countess®自动细胞计数仪计数所需的样本量与您目前使用的血球计数器所需量相同，且不到一分钟即可完成一个样本的典型细胞计数，适用于各种真核细胞。有关传统血球计数器使用的更多信息，请参阅第 41 页的"支持技术方案"部分。
11 .将细胞悬液稀释到该细胞系推荐的接种密度，并将适量体积的细胞悬液转移到新的细胞培养容器中，把细胞放回培养箱。
注：如果使用培养瓶，将其放入培养箱前应将瓶盖旋松，以便进行充分的气体交换，除非您使用的是通气式培养瓶和透气性瓶盖。
悬浮细胞的传代
悬浮细胞传代比贴壁细胞传代稍微简单一些。由于细胞已经在生长培养基中悬浮，因此无需通过酶的作用使其从培养容器表面脱离，整个过程较为迅速，对细胞的损伤也较小。悬浮培养时不进行生长培养基的更换；而是每 2 到 3 天加料一次，直到细胞汇合。可以直接在培养瓶中稀释细胞，然后继续培养扩增，或者也可以从培养瓶中取出一部分细胞，将余下的细胞稀释到该细胞系适宜的接种密度。悬浮细胞传代后的延滞期一般比贴壁细胞短。
大鼠冠状动脉内皮细胞悬浮培养容器
悬浮培养可采用未经组织培养处理的无菌培养瓶 (例如：不带折流板的摇瓶) 进行；但是，专为悬浮细胞培养设计的转瓶 (即：搅拌瓶)具有出色的气体交换功能，可进行较大规模的细胞培养。
转瓶有两种基本设计；其培养基由悬挂的搅拌棒或者垂直的叶轮搅拌 (即搅动)。垂直叶轮的换气效果更佳。转瓶总培养体积不能超过转瓶标示体积的一半，以便换气充分(例如：500 mL 转瓶中培养液体不能超过 250 mL)。
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文献和实验体外培养模型已被广泛应用于血脑屏障的研究、脑血管疾病的病理生理及分子生物学研究、新药筛选、脑微血管内皮细胞生理生化及药理学研究等领域。而大多数体内实验采用大鼠为动物模型，而且大鼠具有较多的细胞生物学研究所需的抗体可用，因此进行大鼠脑微血管内皮细胞的培养具有重要的意义。自从Panula等[2]首次成功培养大鼠脑微血管内皮细胞以来，国内外有关大鼠脑微血管内皮细胞的分离和培养方法已有较多的报道，我们发现国内的方法多以组织匀浆、两次尼龙网过滤分离脑微血管段为主[3,4]，也有采用酶消化、梯度离心及尼龙网过滤
本人总结了下大鼠内皮细胞的培养方案 一，消化法。优点：获得的细胞比其他方法纯。缺点：获得细胞比较少。 常见问题及解决方法：1.消化的时间不好控制时，建议大家分两段时间消化，消化30分钟时收取消化液放入一个离心管，30分到45分钟段收集的放入另一离心管，离心后看看第二管是否有杂细胞，若没有就把两管混合用，若有就只用第一管的。2.消化液，我的经验是5份0.2％胶原酶和1份0.125％胰酶。3.若很难消化时，可以磁力搅拌消化。注意消化法时结扎一定要紧！ 二，植快法。优点：获得细胞
材料与方法： 材料 : 培养皿、培养瓶、烧瓶、试管，玻璃针等。 眼科剪、眼科镊、手术刀片。 5%CO2孵箱、PH计。 恒温水浴箱。 PMi1640培养基，D-Hank’s缓冲液 、胎牛血清，内皮生长因子（ECGF），青霉素，链霉素,戊巴比妥钠等。 方法： 1、取材：4～6ｗＷｉｓｔａｒ大鼠, 大剂量2%戊巴比妥钠麻醉处死，将处死后的大鼠浸入75%酒精中，放入超净台。在无菌状态下剪开胸腹腔，分离胸主动脉,用2ｍｌ注射器从主动脉弓处向胸主动脉注入D-Hank’s液,驱除残血,取
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