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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
-20℃
- 保质期:
12个月
- 英文名:
EZ-ladder Normal DNA Marker (500-12000 bp)
- 库存:
100
- 供应商:
上海万生昊天生物技术有限公司
- 规格:
250µl/5*250ul
| 规格: | 250µl | 产品价格: | ¥60.0 |
|---|---|---|---|
| 规格: | 5*250ul | 产品价格: | ¥240.0 |
本产品是由11条线状双链DNA片段组成,保存于1xLoading Buffer中, 条带范围宽、间距大,适用于大范围DNA片段大小的确定。
1500bp和4000bp为加亮带,浓度为其他条带的2.5倍;
5ul产品中,每条带含量约40ng,加亮带约100ng。
5ul/lane,1xTAE buffer, 7v/cm,45min
储存条件:4℃(长期保存请置于-20℃)
条带组成
500、1000、1500、2000、2500、3000、4000、5000、6000、8000、12000
5x Loading Buffer成分
| 10mM Tris-HCl | 5mM EDTA, pH7.6 | 0.03% 溴酚蓝 |
| 0.03%二甲苯青 | 30%甘油 |
使用建议
- 建议点样量 5ul,宽胶孔适当增加上样量。
- 建议用0.7-1.2% Agarose, 电压4-10v/cm, 1xTAE(注意:不建议用0.5xTBE,条带不能充分分离)缓冲液电泳。注意及时更换电泳缓冲液并使用新制备的凝胶,以达到理想的结果。
- 通过 EB 进行染色,或者用其他的核酸染料进行染色,在紫外灯下观察电泳条带。
注意事项
- 本产品已保存在 1xLoading Buffer 中,可直接进行电泳,使用方便,电泳图像清晰。
- 使用含有 EB 的琼脂糖凝胶进行电泳检测时,将溴酚蓝的条带电泳到约2/3 的距离时即可,否则小片段部分由于EB 脱离DNA,会导致条带变暗。
- 随附 5xLoading buffer 可用于检测样品时使用。
- 本产品仅供科研使用,请勿用于医药、临床治疗、食品及化妆品等用途。
- 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
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文献和实验以λ/Hind III为代表的λDNA酶切片段用作电泳分析中的分子量标准,会发现电泳后分子量条带不对的问题。 解释原因如下:在Lambda DNA分子的左右臂存在着12个碱基组成的具有互补顺序的单链突出端-COS位点,COS位点的退火复性,在λDNA片段电泳分离时会出现问题,含左右臂片段在胶上应出现的地方条带会减弱或完全看不到,而复性的左右臂片段会结合成大的片段,即在较大的分子量区域内产生一个额外的条带,这就造成了不正常的带型。 解决以上问题的办法
【求助】492bp片段跑胶比500的marker要大(如图)!为何?
stb1986 PCR产物492bp(经过测序验证),可是多次琼脂糖电泳条带却明显比500的marker要大(如图),不知原因是什么呢?GC比例为30%,可是G+C与A+C的分子量差别不大啊,请问有战友试过类似情况不?原因何在?谢谢! liupeiyanxiaohai 我也遇到过, 认为是maker不准,可以换个marker试试 qst1981 我也遇到过一样的问题 我想
1 μg l phage DNA (48,502 bp) = 0.06 pmol ends2.核苷酸的换算:(1)分子量:MW (Da) = 333 × N (number of bases)(2)浓度:C (μmol/L or pmol/ml) = OD260 / (0.01 × N)C (ng/ml) = OD260´ MW / (0.01 × N)MW -- molecular weightN -- number of basesOD260 -- absorbance at 260 nm








