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- 2025年12月04日
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武汉恒意赛生物科技有限公司
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PAS糖原染色
PAS糖原染色实验步骤
1、 石蜡切片脱蜡至水：依次将切片放入二甲苯Ⅰ20min-二甲苯Ⅱ20min-无水乙醇Ⅰ10min-无水乙醇Ⅱ10min-95%酒精5min-90%酒精5min-80%酒精5min-70%酒精5min-蒸馏水洗。
2、 自来水冲洗：流水冲洗2min，将玻片上水分甩干。
3、 过*碘*酸液氧化：入过*碘*酸水溶液氧化10min。
4、 自来水洗：流水冲洗5min，蒸馏水浸洗2*5min。
5、 Schiff氏液：玻片入schiff氏液避光浸染30min。
6、 硫代硫酸钠溶液分化：用0.5%硫代硫酸钠水溶液浸洗2次，每次1-2min。
7、 自来水冲洗：流水冲洗10min。
8、 苏木素染细胞核：切片入Harris苏木素染3-8min，自来水洗，1%的盐酸酒精分化数秒，自来水冲洗，0.6%氨*水返蓝，流水冲洗。
脱水封片：将切片依次放入95%酒精I 5min -95%酒精II 5min-无水乙醇Ⅰ5min -无水乙醇Ⅱ5min -二甲苯Ⅰ5min -二甲苯Ⅱ5min中脱水透明，将切片从二甲苯拿出来稍晾干，中性树胶封片。
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文献和实验用高碘酸氧化多糖时，醛基被游离出来，而显Schiff 阳性反应，这种 Schiff 反应称为 PAS （ Peri- odic Acid Schiff ）反应。自 J.E.A.McManus （ 1946.1948 ）、 R.D.Hotchkiss （ 1948 ）以来，一直被用作为多糖的组织化学检测方法。将固定好的切片用水及酒精洗涤后以 0.5 ％ HIO 4处理，待充分洗去 HIO 4后，浸于 Schiff 试剂中，含多糖部位就被染成红色。此反应基于 1 ， 2- 乙二醇
用 途 反应用来显示糖元和其它多糖物质操作步骤1、固定液用Carnoy液或75%酒精 Carnoy固定液: 纯酒精 60 ml 冰醋酸 10ml 氯仿 30ml2、染色液（1） 过碘酸酒清夜配法：过碘酸(HIO .2H O) 0.4g 95% 酒精 35ml M/5醋酸钠(2.72g+蒸馏水100ml) 5ml蒸馏水10ml保存于冰箱内,用棕色瓶,可用两周。（2） Schiff氏液：0.5克碱性品红加入100毫升蒸馏水中,时时摇动三角瓶5分钟,使之充分溶解.冷却至50℃后过滤,加入10
4. 标本运输：室温运输 5. 标本拒收的标准：溶血、稀释标本不能作测定 6. 试剂 6.1 试剂名称：血细胞PAS染色测定 6.2 试剂生产厂家：上海太阳生物技术公司 6.3 试剂组成 试剂1：PAS固定液，10％甲醛甲醇溶液。2℃-8℃避光保存，有效期六个月。 试剂2：PASⅠ液，10g/L（1％）过碘酸溶液。2℃
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