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蛋白L纯化预装柱5ml(Protein L 4FF Chro

matography Column)
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  • 36416ES03
  • 上海
  • 2025年10月16日
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    • 英文名

      Protein L 4FF Chromatography Column, 5 mL

    • 保质期

      有效期2年

    • 供应商

      翌圣生物科技(上海)股份有限公司

    • 保存条件

      4℃保存

    • 规格

      5ml

    产品信息
    产品名称 产品编号 规格 储存 价格(元)
    Protein L 4FF Chromatography Column, 5 mL 蛋白L纯化预装柱,5 mL 36416ES03 5 mL 4 3528.00
    36416ES08 5 mL×5 4 14088.00

    产品描述
    天然蛋白LProtein L)是从马格努斯消化链球菌分离出来的能和免疫球蛋白特异性结合的蛋白质,分子量为36 KD。本产品使用的是基因改造后的蛋白L ,既保留了与抗体k链结合的特性,同时也不会影响抗体的抗原结合位点。与 protein A Protein G 相比,Protein L 更能广泛地结合各种来源及亚类的抗体,包括人、小鼠、大鼠、兔和鸡,但不结合牛、山羊或绵羊来源的免疫球蛋白。
    Protein L Agarose Resin 4FF是用于分离和纯化单克隆抗体的通用性亲和层析介质,产品以高度交联的琼脂糖凝胶为基质,重组Protein L为配基,具有很高的物理化学稳定性,可以在相对较高的流速下进行抗体的纯化,适用于工业客户。利用本产品经过一步亲和层析,可从腹水、血清和培养液等样品中得到高纯度的抗体,使用方便,应用广泛。
    本品Protein L 4FF Chromatography Column1mL是一种装填了Protein L Agarose Resin 4FF的中压预装柱,规格5mL,预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA 等,方便客户操作。

    产品性质
    产品细节图片1
    基质(Matrix 高度交联的4%琼脂糖微球
    配体(Ligand 重组蛋白L
    孔径(Bead size 45-165 µm
    最大流速(Flowmax 0.3 MPa,3 bar
    储存缓冲液(Buffer 20%乙醇的1×PBS
    载量(Capacity 30 mg human IgG/mL基质
    pH范围(pH range 3-10

    运输与保存方法
    冰袋运输。4保存,2年有效。

    需准备试剂
    【注】:建议以下缓冲液在使用前用0.22 μm0.45 μm滤膜过滤。
    结合/洗杂缓冲液:0.15 M NaCl, 20 mM Na2HPO4, pH 7.0
    洗脱缓冲液:0.1 M甘氨酸,pH 3.0
    中和液:1 M Tris-HClpH 8.5

    使用方法
    【注】上柱之前要确保样品溶液有合适的离子强度和pH值,可以用结合/洗杂缓冲液对血清样品、腹水或细胞培养液稀释,或者样品用结合/洗杂缓冲液透析。
    1样品纯化(以Akta系统为例)
    1准备:将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。
    2清洗3-5倍柱体积去离子水冲洗层析柱中储存液。
    3平衡:5倍柱体积的结合Buffer平衡层析柱,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。
    4上样:将样品加到平衡好的层析柱中,推荐流速1-5 ml/min,保证目的蛋白与树脂充分接触,提高目的蛋白的回收率,收集流出液,待检测。
    【注】样品的粘度增加使得即使上样体积很少,也会导致层析柱很大的反压。上样量不要超过柱子的结合能力。大量的样品体积也可能造成很大的反压,使得进样器更难使用。
    5洗杂:10-15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,直到紫外吸收达到一个稳定的基线,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液,待检测。
    6洗脱:用洗脱Buffer 采用一步法或线性梯度洗脱。一步洗脱中,通常5倍柱体积洗脱液足够将目的蛋白洗脱下来。也可以用一个小的梯度,例如20倍柱体积或更多,来分离不同结合强度的蛋白质。
    7清洗及保存:依次使用3倍柱体积的结合Buffer5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4℃保存,防止填料被细菌污染。
    2 SDS-PAGE检测
    将纯化过程中得到的样品(包括原始样品、流出组分、洗杂及洗脱组分等)利用SDS-PAGE进行检测,判定其纯化效果。
    3 树脂清洗
    随着一些变性物质的沉淀和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量下降,影响柱子的性能,这时需对柱子进行清洗:
    1)去除沉淀或变性物质
    2倍柱体积的6 M盐酸胍溶液进行清洗;
    5倍柱体积的PBSpH 7.4 清洗。
    2)去除由于疏水性吸附造成的非特异吸附物质
    3-4倍柱体积的70%乙醇或2倍柱体积的1% Triton™ X-100清洗;
    5倍柱体积的PBS, pH 7.4 清洗
    注意事项
    1)请勿冷冻保存本产品。
    2)所有操作过程中,样本需要在4或冰上操作。
    3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

     
    附录1 常见问题与解答
    问题 可能原因 推荐解决方法
    柱子反压过高 填料被堵塞 清洗填料
    裂解液中含有微笑的固体颗粒,建议上柱前使用0.22 µm/0.45 µm滤膜过滤。
    样品纯化过程中曲线不稳 样品或 buffer 中有气泡 赶出气泡
    样品和buffer进行脱气
    洗脱组分中没有目的蛋白 样品中抗体浓度太低 使用其抗原做配体的介质
    抗体被降解 适当的提高洗脱pH
    样品与Protein L结合力低 换用Protein AProtein A/G树脂纯化
    回收率逐渐减低 上样量太多 减少上样量
    柱子太脏,载量降低 清洗树脂

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