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TGX Stain-Free™ FastCast™ Acrylamide Starter Kit, 7.5%
- 规格:
kit
| WB制胶试剂盒 | |||
| 1610180 | 7.5% 快速免染制胶试剂盒 | 1610180 | 7.5% TGX Stain-Free FastCast Starter Kit |
| 1610181 | 7.5% 免染制胶试剂盒 | 1610181 | 7.5% TGX Stain-Free FastCast Kit |
| 1610182 | 10% 快速免染制胶试剂盒 | 1610182 | TGX Stain-Free FastCast Acrylamide Starter Kit, 10% |
| 1610183 | 10% 免染制胶试剂盒 | 1610183 | 10% TGX Stain-Free FastCast Kit |
| 1610184 | 12% 快速免染制胶试剂盒 | 1610184 | 12% TGX Stain-Free FastCast Starter Kit |
| 1610185 | 12% 免染制胶试剂盒 | 1610185 | 12% TGX Stain-Free FastCast Kit |
| 4561085 | 浓度 4-15% 12孔 20 µl, pkg 10 | 4561085 | 4-15% MP TGX Gel 12W 20 µl, pkg 10 |
| 4561086 | 浓度 4-15% 15孔 15 µl, pkg 10 | 4561086 | 4-15% MP TGX Gel 15W 15 µl, pkg 10 |
| 4561091 | 浓度 4-20% 7 cm IPG/prep 250µl x10 | 4561091 | 4-20% MP TGX Gel 7 cm IPG/prep 250µl x10 |
| 4561093 | 浓度 4-20% 10孔 30 µl | 4561093 | 4-20% MP TGX Gel 10W 30 µl |
| 4561094 | 浓度 4-20% 10孔 50 µl, pkg 10 | 4561094 | 4-20% MP TGX Gel 10W 50 µl, pkg 10 |
| 4561095 | 浓度 4-20% 12孔 20 µl, pkg 10 | 4561095 | 4-20% MP TGX Gel 12W 20 µl, pkg 10 |
| 4561096 | 浓度 4-20% 15孔 15 µl, pkg 10 | 4561096 | 4-20% MP TGX Gel 15W 15 µl, pkg 10 |
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文献和实验的失败。而当失败后,往往又因为步骤太多,不能明确到底是哪里出了问题。 因此,如果能够正确判读实验结果,便能精准找到犯错原因,避开 WB 实验的坑了。今天我特意整理了我的 WB 经验,对不同实验结果进行了原因分析,希望可以帮助师妹和大家把「玄学」变为有迹可循的科学。 WB 实验结果分析 1、跑出来的条带奇形怪状,微笑带?皱眉带?拖尾….. 出现这种情况,主要是仪器和样品的锅,在实验中要小心制胶、合理上样、正确使用电泳仪、正确转膜就能很好的避免。 2、WB 结果中背景较高
接下来为大家介绍一些 WB电泳部分的注意事项。 1. 制胶 小编建议大家直接用制胶试剂盒,价格不贵,质量不错。如果自己配置母液,就请注意 pH 值。 制胶部分最重要的是在配浓缩胶前不要着急将分离胶上面的水弃掉,先配好浓缩胶,在加 TEMED 之前再弃掉水。小编虽然没有亲自试过,但是如果弃掉水后 5 分钟之内还没有加上浓缩胶,这块胶最好还是不要用了。 2. 上样 小编的经验是上样的总蛋白量一般是 20-70ug,这个要根据检测蛋白的含量而定,需要摸索
Western Blot实验可以说是生物专业最基础的实验了,然而,虽然WB实验天天做,但是正常高清的结果图并不是你想有就能有。 WB 实验出现最多问题的,应该就是各种背景问题了。 你想一下,好不容易实验过五关斩六将做到最后一步,扫描结果出了,是这样的: 为什么明明跑出了想要的趋势,但就是背景脏?怎么让自己的条带不因脏脏的背景而毁了呢? 这里要清楚一点,背景脏不一定是因为仪器不干净造成的,也有可能是蛋白降解或者整个实验过程中条件不合适造成的,有可能是以下的环节出了问题
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