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        WB 实验背景很脏是什么原因?该如何解决?

        Elabscience

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          Western Blot实验可以说是生物专业最基础的实验了,然而,虽然WB实验天天做,但是正常高清的结果图并不是你想有就能有。

          WB 实验出现最多问题的,应该就是各种背景问题了。

          你想一下,好不容易实验过五关斩六将做到最后一步,扫描结果出了,是这样的:

        WB 实验背景很脏是什么原因?该如何解决?

          为什么明明跑出了想要的趋势,但就是背景脏?怎么让自己的条带不因脏脏的背景而毁了呢?

          这里要清楚一点,背景脏不一定是因为仪器不干净造成的,也有可能是蛋白降解或者整个实验过程中条件不合适造成的,有可能是以下的环节出了问题:

          1、实验准备

          提取蛋白所需的研磨器材,以及制胶的玻璃板、梳子要清洗干净;

          若长期不使用,建议器材在实验前再行清洗一次以杜绝相应的污染。

          2、提取蛋白

          选择合适的蛋白裂解液,充分去除一些干扰因素,比如核酸,多糖,脂类等;

          建议蛋白在测量浓度后变性分装保存,避免反复冻融使蛋白发生降解;

          注意 Loading buffer 在保质期内,蛋白加入 Loading buffer 后充分混匀,再煮沸变性。

          3、制胶

          玻璃板夹紧之后,有些人习惯性加水试一下是否漏胶,建议用蒸馏水而不是自来水测试,测试结束后要将玻璃板之间的水倒干净,用滤纸吸干残留的水;

          灌胶之前要将配好的试剂充分混匀,灌胶的过程中要掌握好速度,缓慢加入,避免产生气泡;

          灌注好分离胶后,缓缓加入无水乙醇封胶,该步操作时速度一定要慢,防止胶面被冲变形;在等待分离胶凝固的过程中,不要总去摇晃观察;

          温度较高的情况下,30min 左右就会凝固,冬天气温较低可能需要较长时间;

          若分离胶液面不平,会影响后期蛋白电泳的效果。

          4、转膜

          转膜前需在转膜板两侧各放置3-4张滤纸(两侧数量相同);

          切记不要用手直接接触 PVDF 膜和滤纸,手上的油脂会对其造成污染,务必佩戴干净的手套,全程尽量使用镊子夹取;

          转膜过程中海绵-滤纸-凝胶-PVDF 膜-滤纸-海绵每一层的气泡要排空;

          转膜时要使整个电转仪置于冰水混合物中,常用 220V 或者其他高电压进行;

          机器温度升高,会使蛋白降解,也就是转膜后,用丽春红染色发现条带跑糊,发光后条带和背景也会脏的一塌糊涂。

         5、孵育抗体

          孵育一抗的时间大多会选择 4 ℃过夜,也可以室温封闭 2 小时,4 ℃过夜效果会比室温好,4 ℃过夜具体多长时间算合适,其实没有硬性规定;

          二抗孵育的时间不宜过长,一般是室温下摇床孵育 1~2 小时,抗体孵育完成后要清洗干净,特别是二抗孵育完成后,否则可能导致显影结果出现高背景。

          6、发光液配置

          大部分实验室使用的 ECL 发光液,A 液和 B 液按照 1:1 的比例配置;

          发光液要求现用现配,每次根据使用量合理配置用液量;

          发光液配置时间过长同样会引起发光效果不好,背景脏或者漆黑一片。

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