软骨染色液(番红O法)

软骨染色液(番红O法)

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  • 百奥莱博
  • 北京
  • 2025年07月14日
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    • 保质期

      长期

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

    • 保存条件

      室温

    • 规格

      2×100ml

    特别提示:包括软骨染色液(番红O法)在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!


    产品名称:软骨染色液(番红O法)
    产品货号:GL0415
    产品规格:2×100ml

    用途:
    软骨染色

    注意事项:
    主要由番红O染色液和分化液组成。染色时,注意分化时间,否则容易导致过染或脱色

    储存条件:室温,避光,12个月

    除了软骨染色液(番红O法),,我公司还供应以下相关产品:



    名称:姬姆萨染液(10×)
    货号:KFS121
    规格:25ml
    姬姆萨染料为天青色素、伊红、次甲蓝的混合物,本染色液最适于血液涂抹标本、血球、疟原虫、立克次体以及骨髓细胞、脊髓细胞等的染色。

    染前用蛋白酶等进行处理,然后再用姬姆萨染液染色,在染色体上,可以出现不同浓淡的横纹样着色。姬姆萨染液可将细胞核染成紫红色或蓝紫色,胞浆染成粉红色,在光镜下呈现出清晰的细胞及染色体图像。

    试剂盒组份:
    10×姬姆萨染色原液 25mL
    10×姬姆萨稀释液 25mL

    染色步骤1.根据需要量,取8ml 双蒸水,加入姬姆萨原液1ml,再加入姬姆萨稀释液1ml,混匀即为工作液,此工作液常温可保存两周(如果无法短期用完,请确保姬姆萨原液不要见到水或者其他缓冲液)。2.按常规方法制备血涂片,待血膜干后,用甲*固定2~3 分钟;3.将血涂片或骨髓涂片放置染色架上,滴加2~3 滴染色工作液,使覆盖全部血膜(具体用量视样品大小而定),室温染色15~30 分钟。4.用自来水缓慢从玻片一端冲洗(注意勿先倒去染液或直接对血膜冲洗),凉干后镜检。

    四、注意事项1.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。2.如果染色过浓或者过淡,请调整姬姆萨原液加入量(姬姆萨原液最常用的稀释比例是10 倍,但有时候可能会稀释5 倍或者15 倍)。3.姬姆萨原液采用常规方法配制(姬姆色素:甘油:甲*=1:66:66),请在使用时小心不要接触到水。否则时间长了会失效。

    储存:2~8℃,避光,有效期12个月。

    名称:细胞脂质染色试剂盒
    货号:HR8591
    规格:1000T/5000T
    细胞脂质染色试剂盒(Nile Red)是用一种亲脂性的红色荧光探针进行细胞中性脂质染色。Nile Red对环境非常敏感,在以水为介质的环境中,其荧光强度非常弱,在脂质丰富的环境中具有强烈的荧光。
    Nile Red 是非常卓越的活体染料,它对细胞质中的脂质体具有更好的选择性,在进入细胞膜之前荧光非常弱,当与细胞脂质结合后其荧光强度大大增强。它进入细胞膜后,在整个细胞扩散,最佳浓度时可以使整个细胞染色,将细胞内脂质体染成红色。Nile Red被激发后可以发出红色的荧光,具有很高的淬灭常数和激发态寿命。通过荧光显微镜和流式细胞
    术来检测细胞内脂质。
    Nile Red通常不会明显影响细胞的活力,因此被广泛用于正向或逆向的,活的或固定的神经等细胞或组织的示踪剂或长期示踪剂(long-term tracer)。除了最简单的细胞脂质荧光标记外,还可以用于检测细胞的融合和粘附,检测发育或移植过程中细胞迁移,通过FRAP(Fluorescence Recovery After Photobleaching)检测脂在细胞膜上的扩散,检测细胞毒性和标记脂蛋白等。

    储存条件:Nile Red染色液2-8℃避光保存;长期不用-20℃保存;试剂B 2-8℃保存。
    有效期:一年。

    ※ ※ ※ 使用前请仔细阅读产品说明书 ※ ※ ※
    使用限制:本试剂盒仅供科学研究使用,不可用于诊断或治疗。
    产品更新:我公司会更新或升级产品,以优化和增强其使用性能,产品说明书会进行相应的版本更新。使用产品时,请参照随产品附带的说明书,不要参照网上下载的说明书,可能是不同的版本。需要最新电子版说明书时可以在收到产品后发邮件索取。
    使用安全:使用时需要合适的实验室外套,一次性手套。避免皮肤或粘膜与试剂接触。如果试剂不小心接触皮肤或眼睛,应立即用水冲洗。

    注意事项:
    ● 螺旋盖微量试剂管装的试剂在开盖前请短暂离心,将盖和管内壁上的液体离心至管底,避免开盖时试剂损失。
    ● 禁止与其他品牌的试剂混用,否则会影响使用效果。
    ● 样品或试剂被细菌或真菌污染或试剂交叉污染可能会导致错误的结果。
    ● 最好使用一次性吸头、管、瓶或玻璃器皿,可重复使用的玻璃器皿必须在使用前清洗并彻底清除残留清洁剂。
    ● 实验后完成后所有样品及接触过的器皿应按照规定程序处理。
    试剂盒以外自备试剂耗材和仪器:
    ● PBS ● 吸头、离心管 ● 移液器 ●冰盒 ●离心机 ● 涡旋振荡器 ●冰箱

    使用方法:

    使用注意事项:
    ● 螺旋盖微量试剂管装的试剂在开盖前请短暂离心,将盖内壁上的液体收集至管底,避免开盖时液体洒落。
    ● 细胞处理需要小心操作,尽量避免人为的损伤细胞。
    ●染色后立即进行分析。
    ●染色时间根据不同样本的实际染色结果做相应调整。
    ●本染色液可用于细胞涂片、细胞的检测。
    A:染色工作液的配制:
    根据样品数用纯水将试剂B 进行10倍稀释,放入37℃培养箱预热。用稀释后的试剂B将Nile Red 进行200-1000倍稀释,配制成染色工作液。
    【注】:工作液最佳最终浓度建议根据不同细胞系和实验体系做预实验来优化。
    B:悬浮细胞染色
    1.用PBS 洗涤细胞2次。
    2.加入适量体积的染色工作液重悬细胞,使其密度大约为1×106/mL。
    3.37 ℃孵育细胞 5~20min,不同的细胞最佳培养时间不同。可以20min 作为起始孵育时间,之后优化体系以得到均一的标记结果。
    4.孵育结束,500 X g离心5min。
    5.倾倒上清液,再次缓慢加入37℃预热的培养液重悬细胞。
    6.重复(4),(5)步骤两次以上
    C:贴壁细胞染色
    1.用PBS 洗涤细胞2次。
    2.细胞培养板中或细胞爬片上加入适量体积的染色工作液。
    3.37 ℃孵育细胞 5~20min,不同的细胞最佳培养时间不同。可以20min 作为起始孵育时间,之后优化体系以得到均一的标记结果。
    4.吸干染色工作液,用培养液洗培养板或盖玻片2~3次,每次用预热的培养基覆盖所有细胞,孵育5~10min,然后吸干培养基。
    D:用荧光显微镜或流式细胞仪检测
    最大激发波长为553nm,最大发射波长为530/636nm。

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