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金黄色葡萄球菌毒性休克综合征毒素荧光PCR检测试剂盒(TSS

T-1)品牌
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  • ¥4200 - 5800
  • 百奥莱博
  • SYA038-WAD
  • 北京
  • 2025年07月09日
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      916

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      长期

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

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      阴凉干燥

    特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

    北京百奥莱博生产销*(代"售")的金黄色葡萄球菌毒性休克综合征毒素荧光PCR检测试剂盒(TSST-1)品牌,是高品质的细菌PCR检测试剂盒产品,欢迎的您垂询订购。


    名称:金黄色葡萄球菌毒性休克综合征毒素荧光PCR检测试剂盒(TSST-1)品牌
    编号:SYA038
    品牌:百奥莱博
    规格:48次/盒
    等级:科研试剂
    产地:国产|进口

    想要了解更多关于金黄色葡萄球菌毒性休克综合征毒素荧光PCR检测试剂盒(TSST-1)品牌的价格、品牌、厂家、说明书、促销信息,请和我们联*(代"系")。此外我公司还销*(代"售")下面的产品:

    ·猪伪狂犬野毒(gE)抗体ELISA检测试剂盒
    编号:SYA644
    等级:科研实验专用
    规格:192次/盒

    ·幽门螺旋杆菌(HP)单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA095
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒
    一、简介
    本试剂盒用一对幽门螺旋杆菌特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光PCR技术对幽门螺旋杆菌核酸进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

    二、用途
    该试剂盒适用于检测水样粪便、疑似污染的水、食物等样本中的幽门螺旋杆菌,用于幽门螺旋杆菌(HP)的辅助诊断,其检测结果仅供临床参考。

    三、试剂盒组成(48T)
    组份 数量 规格
    HP反应液(HP-qPCR MIX) 1管 672μL/管
    DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
    酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
    阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
    HP阳性对照(HP-PTC) 1管 50μL/管

    四、荧光PCR仪器适用范围
    ABI系列、MJ系列、Roche系列,博日系列及其他荧光定量PCR检测仪。

    五、储存条件及有效期:
    本试剂盒于-20℃以下保存,有效期为6个月。

    六、样品采集、前处理与DNA提取
    6.1 样品采集
    水样便取0.5-1mL;疑似污染的食物取1g。
    6.2 样本前处理:
    水样便1300rpm离心2min,去尽上清;疑似污染的食物用手术剪剪碎混匀后取0.05g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至1.5mL灭菌离心管中,8000rpm离心2min,取上清液100μL于1.5mL灭菌离心管中;疑似污染的水直接取100μL。
    6.3 DNA提取
    可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液,按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
    6.3.1液体培养物:取液体培养物100μL加到1.5mL无菌离心管中,8000rpm离心3min,尽量吸弃上清,加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
    6.3.2固体培养物:挑取单克隆菌落与50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
    6.3.3 粪便样品:挑取米粒大小粪便于灭菌离心管中,加入0.5mL生理盐水,振荡混匀,13000rpm离心3分钟,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
    6.3.4 其他液体标本:取标本2-3mL,13000rpm离心3min,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
     注:建议采用相关标准方法进行前增菌,并按照6.3.1方法进行提取。阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高,建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

    七、检测步骤:
    7.1 试剂的准备
    从试剂盒中取出荧光PCR反应液(HP-qPCR MIX)、酶混合液(Enzymes MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm离心10s。
    设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
    试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
    荧光PCR反应液 14µL N×14µL
    酶混合液 1µL N×1µL
    总量 15µL N×15µL
    计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液,向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(HP-PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。
    7.2 qPCR反应条件
    将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
    推荐循环条件:
    1循环 50℃ for 2 min
    预变性 1循环 95℃ for 10 min
    PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
    60℃ for 60 sec
    在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM。淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。

    八、结果分析
    8.1 结果分析条件设定
    直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
    8.2 试验成立判定
    (1) 阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
    (2) 阳性对照(HP-PTC):均产生扩增曲线。
    (3) 以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
    8.3 结果判定
    (1) 在试验成立的条件下,Ct值≤35的样本为阳性,表明幽门螺旋杆菌核酸阳性。
    (2) Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明幽门螺旋杆菌核酸阴性。
    (3) 如果35<Ct值≤40,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
    (4) 对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行幽门螺旋杆菌qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明幽门螺旋杆菌核酸阳性;否则判为样本阴性。

    九、注意事项:
    (1) 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
    (2) 所有使用的离心管应高压灭菌,而且必须不含DNA酶。
    (3) PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
    (4) 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
    (5) 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。



    金黄色葡萄球菌毒性休克综合征毒素荧光PCR检测试剂盒(TSST-1)品牌关键词:SYA038,百奥莱博,金黄色葡萄球菌毒性休克综合征毒素荧光PCR检测试剂盒(TSST-1)


    ·单增李斯特氏菌单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA004
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒
    本试剂盒适用于增菌培养物、疑似病料及食品中单增李斯特氏菌(Lm)的检测,其检测结果仅供参考。

    本试剂盒用一对单增李斯特氏菌特异性引物,结合一条特异性荧光探针,用一步法荧光PCR技术对单增李斯特氏菌DNA进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染

    者的病原学诊断。本试剂盒中单增李斯特氏菌的探针报告基团为FAM。

    试剂盒组成:

     

     
    组份 数量 规格
    单增李斯特氏菌荧光qPCR反应液(Lm-qPCR MIX) 1

    720μL/管
    DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
    阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
    阳性对照(Lm-PTC) 1管50μL/管


    储存条件:-20℃,有效期6个月。

    使用方法:

    一、样品采集:
    ➤食品样品:样品的采集与预培养按照《食品安全国家标准食品微生物学检验单核细胞增生李斯特氏菌检验》(GB 4789.30-2010)要求进行。
    ➤粪便样品:取粪便置于灭菌的收集管中送检。
    ➤病灶部位样品:取发病部位新鲜渗出物、粘液脓血送检。
     注:上述样品建议经过增菌后,收集培养物用于检测。

    二、DNA提取:
    可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液,按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的

    商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
    ➤液体培养物:取液体培养物100μL加到1.5mL无菌离心管中,8000rpm离心3min,尽量吸弃上清,加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm

    离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
    ➤固体培养物:挑取单克隆菌落与50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
    ➤粪便样品:挑取米粒大小粪便于灭菌离心管中,加入0.5mL生理盐水,振荡混匀,13000rpm离心3分钟,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃

    恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
    ➤其他液体标本:取标本2-3mL,13000rpm离心3min,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR

    反应。
     注:建议采用相关标准方法进行前增菌,并按照6.2.1方法进行提取。阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5µL加入到反应体系中即可。

    由于阳性对照浓度较高,建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

    三、检测步骤:
    1.试剂的准备
    从试剂盒中取出荧光PCR反应液(Lm-qPCR MIX),室温融化并振荡混匀后,10000rpm离心10s。
    设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:

     
    试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
    荧光PCR反应液15µL N×15µL

    计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL,向每管中加入处理后样品/阴

    性对照(NTC)/阳性对照(Lm-PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。
    2.qPCR反应条件
    将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件:

     
      1循环 50℃ for 2 min
    预变性1循环 95℃ for 10 min
    PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
    60℃ for 60 sec

    在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM,淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。

    四、结果分析:
    1.结果分析条件设定
    直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
    2.试验成立判定
    ➤阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
    ➤阳性对照(Lm-PTC):均产生扩增曲线,且Ct值≤30。
    ➤以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
    3.结果判定
    ➤在试验成立的条件下,Ct值≤30的样本为阳性,表明Lm核酸阳性。
    ➤Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明Lm核酸阴性。
    ➤如果30<Ct值≤35,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
    ➤对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行Lm qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,则判为样本阳性,表明Lm核酸阳性;否则判为样本阴性。

    五、注意事项:
    ➤初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
    ➤所有使用的离心管应高压灭菌,而且必须不含DNA酶。
    ➤PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
    ➤样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
    ➤试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。


    金黄色葡萄球菌毒性休克综合征毒素荧光PCR检测试剂盒(TSST-1)品牌关键词:SYA038,百奥莱博,金黄色葡萄球菌毒性休克综合征毒素荧光PCR检测试剂盒(TSST-1)


    ·腮腺炎/乙脑/肠道病毒三重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA223
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·副溶血性弧菌耐热直接溶血素(TDH)单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA069
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒
    一、简介:
    本试剂盒用一对副溶血性弧菌耐热直接溶血素特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光PCR技术对副溶血性弧菌耐热直接溶血素的核酸进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

    二、用途:
    该试剂盒适用于检测水样粪便、疑似污染的水、食物等样本中的副溶血性弧菌耐热直接溶血素(TDH),用于副溶血性弧菌耐热直接溶血素(TDH)感染的辅助诊断,其检测结果仅供临床参考。

    三、试剂盒组成:(48T)
    组份 数量 规格
    TDH反应液(TDH-qPCR MIX) 1管 672μL/管
    DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
    酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
    阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
    TDH 阳性对照(TDH -PTC) 1管 50μL/管


    四、荧光PCR仪器适用范围:
    ABI 系列、MJ 系列、Roche 系列,博日系列及其他荧光定量PCR 检测仪。

    五、储存条件及有效期:
    本试剂盒于-20℃以下保存,有效期为6 个月。

    六、样品采集、前处理与DNA提取
    6.1 样品采集
    水样便取0.5-1 mL;疑似污染的食物取1g。
    6.2 样本前处理:
    水样便13000rpm离心2min,去尽上清;疑似污染的食物用手术剪剪碎混匀后取0.05g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至1.5mL灭菌离心管中,8000rpm离心2min,取上清液100μL于1.5mL灭菌离心管中;疑似污染的水直接取100μL。
    6.3 DNA提取
    可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液,按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
    对上述处理好的样本加入50uL核酸提取液,100℃恒温处理10min,13000rpm离心5min,取上清液转移至新的1.5mL EP管,-20℃保存;
     注:阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5μL加入到反应体系中即可。
    由于阳性对照浓度较高,建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

    七、检测步骤:
    7.1 试剂的准备
    从试剂盒中取出荧光PCR 反应液(TDH-qPCR MIX)、酶混合液(Enzymes MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm 离心10s。
    设所需要的PCR 反应管管数为N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
    试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
    荧光PCR反应液 14µL N×14µL
    酶混合液 1µL N×1µL
    总量 15µL N×15µL

    算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm 离心10s,向设定的N 个PCR 反应管中分别加入15μL 荧光PCR 反应液,向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(TDH-PTC)5μL,10000rpm 瞬时离心10秒。
    7.2 qPCR反应条件
    将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件:
      1循环 50℃ for 2 min
    预变性 1循环 95℃ for 10 min
    PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
    60℃ for 60 sec

    在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM。淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。

    八、结果分析:
    8.1 结果分析条件设定
    直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
    8.2 试验成立判定
    (1)阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
    (2)阳性对照(TDH-PTC):均产生扩增曲线。
    (3)以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
    8.3 结果判定
    (1)在试验成立的条件下,Ct值≤35的样本为阳性,表明副溶血性弧菌耐热直接溶血素核酸阳性。
    (2)Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明副溶血性弧菌耐热直接溶血素核酸阴性。
    (3)如果Ct值>35,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
    (4)对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行副溶血性弧菌耐热直接溶血素qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明副溶血性弧菌耐热直接溶血素核酸阳性;否则判为样本阴性。

    九、注意事项:
    (1)初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
    (2)所有使用的离心管应高压灭菌,而且必须不含DNA 酶。
    (3)PCR 操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR 扩增区等),防止实验室污染。
    (4)样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
    (5)试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。



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