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- GeneCopoeia科研团队现提供定制AAV包装服务，可包装长度低于3 kb的目标基因；同时也提供多种常用报告基因的预制AAV病毒，满足多种科研需求，适用于体外、活体实验研究。
- 中国
- 2025年07月15日
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 提供商：
GeneCopoeia
- 服务名称：
GeneCopoeia
- 规格：
100ul-200ul
产品介绍
GeneCopoeia全新推出的AAVPrime™腺相关病毒（Adeno-associated virus, AAV）可高效介导外源基因感染多种不同类型的分裂或非分裂细胞，对人体无致病性，是理想的基因转导研究工具。AAVPrime™包装系统是由非致病性的野生型腺相关病毒改造优化而成，不需应用腺病毒即可完成包装过程，进一步降低潜在致病性，使用过程更安全。
GeneCopoeia科研团队现提供定制AAV包装服务，可包装长度低于3 kb的目标基因；同时也提供多种常用报告基因的预制AAV病毒，满足多种科研需求，适用于体外、活体实验研究。
针对不同细胞、组织类型，现有23种血清型可供选择，合适的血清型可进一步提高实验效率，详情可点击上方[可选血清型及载体]按钮查询。
产品优势
- 高滴度：纯化型AAV病毒滴度高达10^14 GC/ml (genome copies/ml)
- 适用性广泛：广泛适用于多种分裂及非分裂宿主细胞/组织
- 低细胞毒性：AAV为非整合型病毒，不对宿主细胞基因组产生负面影响
- 低免疫原性：进行活体实验时，实验动物免疫反应小
- 生物安全级别高：对人体无致病性
AAVPrime™预制AAV病毒 – eGFP表达
| 0.005 μl | 0.05 μl | 0.5 μl |
 |  |  |
图1. 于24孔板中，使用上图所示用量的纯化型AAV病毒感染HT1080细胞(ATCC)表达绿色荧光蛋白eGFP。感染后，使用荧光显微镜观察荧光蛋白表达情况。 (曝光时间：400 ms)
不同血清型的GFP-AAV感染H1299细胞
图2. 不同血清型的GFP-AAV感染H1299细胞，如图所示。
携带GFP的AAV-9、MyoAAV和AAV-MG感染细胞
图3. MyoAAV和AAV-MG在体外感染中表现出组织特异性。用携带GFP的AAV-9、MyoAAV和AAV-MG感染横纹肌肉瘤(RD)细胞系(左)或人小胶质细胞细胞系(HmC3)(右)。
可选AAV血清型
GeneCopoeia提供多种适用性最广泛的血清型以供科研工作者选择。血清型是腺相关病毒的一个重要概念，不同血清型的差异主要在于衣壳蛋白的不同，外源基因在特定细胞/组织的表达效率和组织亲和性往往和所选择的血清型密切相关。
选择合适靶细胞的血清型，对基因在特定宿主的高效表达非常重要。您可通过以下表格的建议进行血清型的初步选择，也可来电咨询技术支持。
| 血清型 | 主要适用组织 | 血清型描述 |
| AAV-1 | 肌肉 | 对心肌、骨骼肌、神经元、神经胶质细胞组织的效果较好。 |
| AAV-2 | 肌肉、肝脏、视网膜 | 使用历史最长，同时也是适用性较广泛的血清型，对神经细胞、肌肉、肝脏、脑组织的效果较好。 |
| AAV-3 | 巨核细胞 | 对巨核细胞、肌肉、肝脏、肺脏、视网膜组织的效果较好。 |
| AAV-4 | 视网膜 | 对神经元、肌肉、脑、视网膜组织的效果较好。 |
| AAV-5 | 肺脏 | 对肺脏、神经元、滑膜关节、视网膜、胰腺组织的效果较好。 |
| AAV-6 | 肌肉、肺脏 | 对肺脏、肝脏、心脏的效果较好。 |
| AAV-7 | 肌肉、视网膜、神经元 | 对肌肉、神经元、肝脏的效果较好。 |
| AAV-8 | 肝脏 | 对肌肉、脑、肝脏、视网膜的效果较好。 |
| AAV-9 | 广泛适用 | 对肌肉、心脏、肺脏、肝脏、脑的效果较好。 |
| AAV-10 | 胸膜、中枢神经系统 | 对肺脏、肌肉、心脏、中枢神经系统的效果较好。 |
| AAV-11 | 脊神经 | 有效的逆行靶向投射神经元和增强星形细胞定向转导。 |
| AAV-12 | 唾液腺、骨骼肌 | 转导不依赖细胞表面的硫酸肝素或唾液酸，可感染唾液腺、骨骼肌。 |
| AAV-13 | 中枢神经 | 适用于精确标记，如针对大脑中的小核 |
| AAV-DJ | 广泛适用 | 该血清型是8种天然存在的血清型的优化混合，对多种人源组织及器官有较好的感染效果。其中，AAV-DJ对肝源细胞的导向性较强。 |
| AAV-DJ/8 | 广泛适用 | 该血清型由AAV-DJ进一步改造所得。通过删除AAV-DJ的HBD位点(heparin binding domain)，降低该血清型在活体实验中对肝导向性干扰，从而相对提高在非肝源细胞的感染效率。 |
| MyoAAV | 肌肉组织 | 对肌肉组织的特异性较好。 |
| AAV-MG | 小胶质细胞 | 对大脑中小胶质细胞的特异性较好。 |
| AAV-PHP.eB | 中枢神经系统 | 穿过血脑屏障（BBB）并增强中枢神经系统趋向性。 |
| AAV-BI30 | 中枢神经系统 | 特异、高效地转导整个中枢神经系统的内皮细胞。 |
| AAV-PHP.S | 周围神经系统 | 有效感染全外周神经。 |
| AAV2.7m8 | 视网膜，内耳 | 有效感染视网膜细胞、内耳耳蜗毛细胞。 |
| AAV2-QuadYF | 视网膜，内皮细胞 | 有效感染视网膜细胞、血管内皮细胞。 |
| AAV2-retro | 脊神经 | 逆向非跨突触转导。 |
可选载体
GeneCopoeia提供以下ORF AAV病毒载体，所有载体均适用于搭配不同血清型进行包装。载体可包装的最大片段长度为3 kb。
| 载体名称 | 启动子 | 启动子介绍 | 报告基因 | 可包装片段长度 |
| pEZ-AV01 | CMV | 强启动子，应用范围较广。 | N/A | 2.5 kb |
| pEZ-AV02 | EF-1α | 也是应用范围较广的启动子。在活体实验的表现基本优于CMV。 | N/A | 3.2 kb |
| pEZ-AV04 | CAG | 在活体实验中常用的强启动子。 | N/A | 2.0 kb |
| pEZ-AV06 | CBH | 强启动子，且表达时间较长。 | N/A | 2.8 kb |
| pEZ-AV07 | CMV | 强启动子，应用范围较广。 | IRES-eGFP | 1.3 kb |
| pEZ-AV08 | EF-1α | 也是应用范围较广的启动子。在活体实验的表现基本优于CMV。 | IRES-eGFP | 2.1 kb |
| pEZ-AV09 | CAG | 在活体实验中常用的强启动子。 | IRES-eGFP | 0.9 kb |
| pEZ-AV11 | CBH | 强启动子，且表达时间较长。 | IRES-eGFP | 1.7 kb |
| pEZ-AV12 | CAMKlla | 在大脑皮层和海马体中的兴奋性神经元有特异性表达。 | N/A | 2.4 kb |
| pEZ-AV13 | hSYN | 人源synapsin-1基因启动子，是神经元特异启动子。 | N/A | 3.2 kb |
| pEZ-AV15 | MHC | 一种人源的心肌细胞特异启动子。 | N/A | 3.3 kb |
* 更多载体将陆续推出！
GeneCopoeia提供以下CRISPR AAV病毒载体，所有载体均适用于搭配不同血清型进行包装。
| 载体名称 | CRISPR | 载体介绍 | 报告基因 |
| pCRISPR-AD01 | SaCas9 & sgRNA | All-in-one AAV vector with SaCas9 and sgRNA | N/A |
| pCRISPR-AV20 | sgRNA only | AAV vector expressing sgRNA driven by U6 promoter | N/A |
GeneCopoeia提供以下shRNA AAV病毒载体，所有载体均适用于搭配不同血清型进行包装。
| 载体名称 | 启动子 | 启动子介绍 | 报告基因 |
| psi-AV03 | U6 | Pol III promoter-driven shRNA | N/A |
| psi-AVE001 | CMV | Pol II promoter-driven shRNA | eGFP |
| psi-AVE002 | CMV | Pol II promoter-driven shRNA | mCherry |
| psi-AVE003 | EF1a | Pol II promoter-driven shRNA | eGFP |
| psi-AVE004 | EF1a | Pol II promoter-driven shRNA | mCherry |
GeneCopoeia提供以下miRNA/inhibitor AAV病毒载体，所有载体均适用于搭配不同血清型进行包装。
| 载体名称 | 启动子 | 筛选标记 | 报告基因 |
| pEZX-MR14 | CMV | Puromycin | eGFP |
| pEZX-MR15 | CMV | Puromycin | mCherry |
| pEZX-AM06 | H1 | Hygromycin | mCherry |
| pEZX-AM07 | U6 | Hygromycin | mCherry |
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文献和实验-
Hasan, K.M., et al. (2023). Fatty Acid Excess Dysregulates CARF to Initiate the Development of Hepatic Steatosis. Cells doi: 10.3390/cells12071069 [AAVPrime™ AAV particles expressing CARF and AAV-empty vector; OMICSLINK™ CARF Lentiviral ORF expression clone]
Hasan, M.N., et al. (2023). Combining ASBT inhibitor and FGF15 treatments enhances therapeutic efficacy against cholangiopathy in female but not male Cyp2c70 KO mice. J Lipid Res doi: 10.1016/j.jlr.2023.100340 [OMICSLINK™ Fgf15 ORF expression clone; AAVPrime™ AAV particles expressing Fgf15]
Gannon, A-L., et al. (2022). A Novel Model Using AAV9-Cre to Knockout Adult Leydig Cell Gene Expression Reveals a Physiological Role of Glucocorticoid Receptor Signalling in Leydig Cell Function Int J Mol Sci doi: 10.3390/ijms232315015 [AAVPrime™ AAV particles expressing CRE and GFP]
Chen, X., et al. (2022). Pitx3 deficiency promotes age-dependent alterations in striatal medium spiny neurons. Front Aging Neurosci doi: 10.3389/fnagi.2022.960479 [AAV-hSyn1-eGFP]
Hogan, T.B., et al. (2022). Caveolin-1 Peptide Regulates p53-microRNA-34a Feedback in Fibrotic Lung Fibroblasts. iScience doi: 10.1016/j.isci.2022.104022 [AAVPrime™ AAV particles expressing microRNA inhibitors]
Yang, B., et al. (2022). Evaluation of Early Biomarkers of Atherosclerosis Associated with Polychlorinated Biphenyl Exposure: An in Vitro and in Vivo Study. Environmental Health Perspectives doi: 10.1289/EHP9833 [AAVPrime™ AAV particles expressing HDAC7]
Xia, Y., et al. (2022). Neuronal C/EBPb/AEP pathway shortens life span via selective GABAnergic neuronal degeneration by FOXO repression. Science Advances doi: 10.1126/sciadv.abj8658 [AAVPrime™ AAV particles expressing FOXO1, shRNA targeting FOXO1]
Song, M-Y., et al. (2022). Sirt6 reprograms myofibers to oxidative type through CREB-dependent Sox6 suppression. Nature Communications doi: 10.1038/s41467-022-29472-5 [AAVPrime™ AAV particles expressing Sirt6, shRNA targeting Sirt6]
Lio, J., et al. (2022). C/EBPβ/AEP signaling couples atherosclerosis to the pathogenesis of Alzheimer’s disease. Molecular Psychiatry doi: 10.1038/s41380-022-01556-0 [AAVPrime™ AAV particles expressing shRNA targeting ApoE]
Toan, N.K., et al. (2021). Choline Acetyltransferase Induces the Functional Regeneration of the Salivary Gland in Aging SAMP1/Kl -/- Mice. International Journal of Molecular Sciences doi: 10.3390/ijms22010404 [AAVPrime™ AAV particles expressing shRNA targeting ChAT]
Zhang, W-B., et al. (2021). Activation of Nrf2 by miR-152 Inhibits Doxorubicin-InducedCardiotoxicity via Attenuation of Oxidative Stress, Inflammation,and Apoptosis. Oxidative Medicine and Cellular Longevity doi: 10.1155/2021/8860883 [AAVPrime™ AAV particles expressing mir-152 miRNA; AAVPrime™ AAV particles expressing shRNA targeting Nrf2]
Kang, S.S., et al. (2021). ApoE4 inhibition of VMAT2 in the locus coeruleus exacerbates Tau pathology in Alzheimer’s disease. Acta Neuropathologica doi: 10.1007/s00401-021-02315-1 [AAVPrime™ AAV particles expressing ApoE4]
Quan, D.N. and Shiloach, J. (2021). rAAV production and titration at the microscale for high- throughput screening. Human Gene Therapy doi: 10.1089/hum.2021.080 [AAVPrime™ AAV particles expressing EGFP]
Han, L., et al. (2020). Homocysteine-induced electrical remodeling via the mediation of IP3R1/Nav1.5 signaling pathway. Am J Transl Res. 2020; 12(7): 3822–3841 [AAVPrime™ AAV particles expressing shRNA targeting IP3R1]
Luo, Y., et al. (2020). Upregulation of circ_0000199 in circulating exosomes is associated with survival outcome in OSCC. Scientific Reports doi: 10.1038/s41598-020-70747-y [AAVPrime™ AAV particles expressing shRNA targeting circ_0000199]
Luo, Y., et al. (2020). A novel epigenetic regulation of circFoxp1 on Foxp1 in colon cancer cells. Cell Death & Disease doi: 10.1038/s41419-020-03007-6 [AAVPrime™ AAV particles expressing shRNA targeting circ_FoxP1]
Millett, P.J., et al. (2020). Gene Editing to Impove Joint Function. United States Patent Applicaitons doi: 20200360454K [AAVPrime™ AAV particles expressing GFP]
Zhao, Y. and Ren, J. (2019). MODIFIED IMMUNE CELLS HAVING ENHANCED FUNCTION AND METHODS FOR SCREENING FOR SAME. United States Patent Application 20190345491 [AAVPrime™ AAV particles expressing DNMT3A]
技术、TALEN技术和CRISPR/Cas9技术的基因敲除研究。 实验流程1. 基因组DNA的准备：提取野生型和突变型细胞的基因组DNA。Genloci公司专为阳性克隆筛选设计的TNA抽提试剂盒也能帮您的忙，只需500个左右的细胞即可提取全基因组DNA。 2. 杂交DNA的准备：a) PCR引物设计：一般扩增产物长度为300~600 bpb) PCR扩增：获得杂交DNA 3. Cruiser™酶筛选阳性克隆：无需纯化DNA，直接使用PCR产物，混合体系后45℃下反应15~20 min K562细胞中
NEB 发布：GenomONE™ 为诱导 iPSC 形成「保驾护航」
间充质干细胞（MSC, mesenchymal stem cells）是干细胞家族的重要成员，属于多能干细胞，因其具有多向分化潜能、造血支持和促进干细胞植入、免疫调控和自我复制等特点而日益受到人们的关注。诱导性多能性的间充质干细胞（iPMSCs）是药物筛选、再生医学和细胞治疗的新型候选药物。然而，用于生成骨髓间充质干细胞的诱导性多能性间充质干细胞（iPSC），在导入编码基因的转录因子中，往往伴随有在靶细胞基因组的插入时发生突变的风险。 由于近年来对骨髓间充质干细胞认知地深入，在造血系统、免疫
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