大鼠糖尿病模型定制

大鼠 SCI 模型

大鼠麻醉后，背部脱毛，于 T9-T11 胸椎区域消毒，划约 2-3cm 纵行切口，咬除椎板，暴露硬脊膜，将大鼠固定于多功能鼠固定台，应用脊髓打击器撞击骨髓（打击高度 12mm，重量 10g）大鼠出现尾部痉挛性摆动，表明造模成功。造模后，对各组大鼠进行脊髓损伤的行为学评分，利用斜板实验评测动物脊髓损伤后神经功能恢复情况，分析在脊髓损伤不同时期的变化规律。

大鼠帕金森模型

麻醉好的大鼠绑定在多功能脑立体定位仪上，沿正中线切开头部皮肤，暴露出骨膜，轻轻切开骨膜。纯双氧水擦拭骨面，以前囟为准，采用两点注射：右侧黑质致密部(SNc)、中脑腹侧被盖区(VTA)。 SNc：前囟后(5.0)毫米, 矢状缝右侧(1.5)毫米, 硬脑膜下(7.8)毫米； VTA：前囟后(4.6)毫米, 中线右侧(0.9)毫米, 硬脑膜下(7.3)毫米。 用牙科钻钻开颅骨，用5μL微量进样器将药物注入右侧纹状体(速度为1.0 mm/min)，每孔4μL，注射速度为1μL/min，注射完毕后留针

大鼠三叉神经模型

大鼠俯卧位固定到手术台上，持续低剂量麻醉。消毒，沿右后肢大腿后外侧股骨干作一切口，暴露坐骨神经干及其远端分支，钝性分离肌肉，用玻璃分针分离出胫神经、腓总神经，分别用6-0丝线双重结扎胫神经、腓总神经，切断结扎远端，同时将神经断端远端剪掉2mm，注意保留腓肠神经，手术过程中应避免牵拉腓肠神经及其伴行的血管。操作结束后逐层缝合组织，再次碘伏消毒。