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- 烫伤动物模型制备
- 2026年01月23日
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- 技术资料
- 服务名称：
烫伤动物模型制备
- 提供商：
北京永欣康泰科技发展有限公司
- 【原理】 热水直接烫伤动物造成II度烫伤模型
- 【材料】 动物：Wistar大鼠，雄性，体重140~260g。器械：5cm×5cm、6cm×6cm纱布各一块，两块均厚2mm，两侧用长直钳夹闭。16个小瓶，每瓶均盛有4%甲醛2ml。水温计1个，直尺1把，剃刀若干。中性塑料、玻片16个、盖玻片16个。
- 【方法】
- 大鼠称重后腹腔注射麻醉，腹部备皮，备皮后固定大鼠实验台上切取对照组全层皮肤，大小1cm×1cm，用4%甲醛固定。第1组烫伤条件为99℃，持续3秒：第2组烫伤条件为99℃时，持续10秒。烫伤时，将大鼠移近加热自来水的烧杯，将纱布浸入热水中，待水温恒定于99℃时，取出纱布，立即平铺于待汤部位，长直钳方向与大鼠身体长轴平行，以纱布接触大鼠皮肤后计时，时间一到立即将纱布移去。切取烫伤部位全层皮肤1cm×1cm，用4%甲醛固定。大鼠烫伤、取皮后压迫止血，分别放置，同等条件下饲养，观察伤口愈合情况。皮肤组织经过梯度乙醇系列脱水、透明、60℃浸石蜡包埋后切片4μm，采用70℃烤箱烤片1h，常规HE染色，中性塑料封片后后光镜下观察。
- 烫伤前24h将大鼠背部剃毛。并禁食12h。大鼠于清醒状态下固定，背侧腹浸入100℃水中12s造成百分之30%总体积表面积II度烫伤，伤后立即经腹腔注射林格液40ml/kg抗休克，伤后单笼饲养。
实验室可构建的动物模型 ：
| 构建动物模型名称 | 适用范围 |
| 1、裸鼠肿瘤（皮下、原位）动物实验 | 胰腺、肝、胃原位接种、皮下接种 |
| 2、兔 腹主动脉、颈动脉硬化（球囊法）模型 | 稳定制备 颈动脉、腹主动脉硬化模型 |
| 3、心肌缺血、大、小鼠、兔、小型猪心电图、心脏超声、病理评价 | 心肌缺血及再灌注、心梗、血压测定（麻醉及清醒状态下）等 |
| 4、Ⅰ、Ⅱ型糖尿病大小鼠、兔动物模型 | 高脂诱导+STZ制备糖尿病模型及糖尿病并发症研究，药效评价 |
| 5、骨质疏松大鼠、小鼠实验（去势） | 老年性骨质疏松相关疾病临床前药效评价 |
| 6、股骨头坏死、骨缺损、鼠、兔模型 | 镇静、镇痛动物模型，行为学模型制作及药物筛选 |
| 7、Apoe小鼠动脉粥样硬化整体实验 | 高脂饲养、取材、病理实验、大体染色等 |
| 8、急性粒细胞白血病动物实验 | |
| 9、肾结石快速成模大鼠模型 | 乙二醇致大鼠肾脏草酸钙结石模型 |
| 10、眼科大小鼠模型、视网膜铺片、 玻璃体腔内注射 |
眼科疾病模型及相关检测方法 |
| 11、脑缺血、帕金森、脑出血动物模型 | 脑病实验、颅内注射、技术成熟稳定 |
| 12、肾脏缺血、肾移植、肾衰动物模型 | 肾脏缺血、肾移植、肾衰竭实验及检测平台 |
检测平台
| 服务项目 | 服务承诺 | 服务周期 | 样本种类 |
| 病理切片、免疫组化 | 染色结果照片 | 2-3周 | 组织 |
| Western blotting | 胶片 | 1-2周 | 蛋白样本或组织 |
| 流式细胞服务 | 散点图、分析数据、设备信息等 | 1-2周 | 血样、骨髓等 |
| 细胞凋亡检测 | 凋亡图、数据分析 | 细胞 | |
| RT-PCR | 扩增图 | 1-2周 | RNA或组织 |
| 血压监测（无创式） | 实时血压数据 | 大、小鼠 |
备注：以上只是常规制备的动物模型种类，如果有其他动物模型制备的需求，也可以按照方案进行定制
永欣康泰坚持：
上门取样、客服专人跟进项目进度、随时汇报实验进展、为您有效降低科研成本、缩短实验周期。
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文献和实验动物模型是现代生命科学研究的重要工具，特别是基因工程小鼠和大鼠，在基因功能研究、人类生理病理机制研究及新药研发中起着不可替代的作用。近几年来，制备动物模型的基因修饰技术层出不穷，这不仅包括传统 ES 打靶、TALEN、CRISPR/Cas9， 还有 TetraOneTM 基因敲除新技术。如此繁多的技术该如何选择？本文将对这四种技术的原理、特点、缺陷及未来发展趋势作系统的介绍和对比。 1、 传统 ES 打靶基因敲除——成熟、修饰准确、效果稳定，但制作周期长达一年 基于胚胎
方法：①通过在大鼠的黑质或内侧前脑束注射6羟多巴胺（6-OHDA）②通过对模型动物(如:猴、小鼠、猪等)进行1-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氢吡啶（MPTR）的管饲法和立体定位注射等方法。前者是较精典的模型制备的方法，也是在国内较早开展的，但是其存在：1)神经元的毁损出现的较早，这与临床PD病人的中脑黑质多巴胺能神经元的渐进性死亡不同2)近距离的毁损很难把握毁损的程度，这使得采用这种方法获取部分损毁的模型的成功率很低；较之前者采用MPTP管饲法和立体定位注射方法，在国内最近几年才运用到帕金森动物
胰腺炎动物模型是研究胰腺炎发病机制及探讨临床治疗的最好的方法,但是由于不同类型的胰腺炎间其发病机制不同,对胰腺炎的发病机制还不清楚,所以没有一种很好的动物模型可以模拟人的胰腺炎。但自1856年Busnar-do等以胆汁和橄榄油混合液注射犬胰管,成功地诱导急性胰腺炎模型以来,经过一个多世纪的探讨,胰腺炎动物模型的制备方法主要有以下几种:1.牛磺胆酸钠造模1）模型建立方法:大鼠于术前12h禁食,自由饮水,戊巴比妥溶液2mg/100g体质量行腹腔内麻醉,固定。经上腹正中切口入腹,提起十二指肠以小号
