WE0154型BaldStar TaqMan Mixture

特别声明：本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品，严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

北京百奥莱博专注于生命科学和生物技术领域，致力于为客户提供包括WE0154型BaldStar TaqMan Mixture(dUTP+UNG酶)优惠价在内的一系列分子生物学试剂产品，并提供一系列相关的技术服务。

名称：WE0154型BaldStar TaqMan Mixture(dUTP+UNG酶)优惠价
编号：WE0154
规格：1ml|5ml
产地：国产|进口
品牌：百奥莱博
  本品是专用于探针法(TaqMan，Molecular Beacon等)实时荧光定量PCR的预混体系，浓度为2×，包含 BaldStar Taq DNA polymerase、PCR Buffer、dNTPs(dTTP全部被dUTP所取代)、UNG酶和Mg2+，操作简单方便。主要用于基因组DNA靶序列和RNA反转录后的cDNA靶序列的检测，如基因表达分析，拷贝数分析，SNP基因型分析等。本产品中运用了dUTP-UNG防污染系统，在PCR反应体系配制过程中加入了dUTP，因此就形成了含有dU碱基的扩增产物。而此产物可以在下次进行PCR反应前，由PCR体系中的UNG酶处理消除。这样就有效的去除了PCR产物的残留污染，大大降低了由于扩增产物污染而导致的假阳性。UNG酶在PCR循环中的预变性步骤即可被灭活，因此不会影响新的含dU碱基PCR产物的形成。本品含有的 BaldStar Taq DNA Polymerase是一种经化学修饰的、全新高效热启动酶，在常温下没有聚合酶活性，有效避免在常温条件下由引物和模板非特异性结合或引物二聚体而产生的非特异性扩增，酶的激活须在95℃下孵育10分钟。独特的 PCR缓冲体系与热启动酶的组合，显著提高了PCR的扩增效率，荧光信号更强，灵敏度更高，可以检测单拷贝的模板。使用本产品可以得到更广的线性范围，对目的基因定量更准确。

  ROX染料用于校正定量PCR仪孔与孔之间产生的荧光信号误差，一般用于ABI、Stratagene等公司的Real Time PCR 扩增仪。不同仪器的激发光学系统有所不同，因此ROX染料的浓度必须与相应的荧光定量PCR仪相匹配。
不需要ROX校正的仪器(WE0154)：
Roche LightCycler 480，Roche LightCyler 96，Bio-rad iCyler iQ，iQ5，CFX96等。
需要Low ROX校正的仪器(WE0155)：
ABI Prism7500/7500 Fast，QuantStudio® 3 System，QuantStudio® 5 System，QuantStudio® 6 Flex System，QuantStudio® 7 Flex System，ViiA 7 system，Stratagene Mx3000/Mx3005P，Corbett Rotor Gene 3000等。
需要High ROX校正的仪器(WE0156)：
ABI Prism7000/7300/7700/7900，Eppendorf，ABI Step One/Step One Plus等。

产品组成：

 

组份	WE0154-5ml	WE0155-5ml	WE0156-5ml
2×BaldStar TaqMan Mixture(UNG)	5×1ml	5×1ml	5×1ml
50×Low ROX	-	200μl	-
50×High ROX	-	-	200μl
ddH2O	5×1ml	5×1ml	5×1ml

注意事项：
1、使用前请上下颠倒轻轻混匀，尽量避免起泡，并经短暂离心后使用。
2、避免反复冻融本品，反复冻融可能使产品性能下降。本产品长期保存可置于-20℃，避光。如果在短期内需要频繁使用，可在2～8℃保存。


使用方法：
以下举例为常规PCR反应体系和反应条件，实际操作中应根据模板、引物结构和目的片段大小不同进行相应的改进和优化。

1、PCR反应体系

试剂	50μl反应体系	终浓度
2×BaldStar TaqMan Mixture(UNG)	25μl	1×
Forward Primer，10μM	1μl	0.2μM
Reverse Primer，10μM	1μl	0.2μM
Probe，10μM	1μl	0.2μM
Template DNA	2μl
50×Low ROX or High ROX(可选)	1μl	1×
ddH2O	up to 50μl

注意：
1)通常引物浓度以0.2μM可以得到较好结果，可以在0.1-1.0μM作为设定范围的参考。
2)使用的探针浓度，与使用的荧光定量PCR仪、探针种类、荧光标记物质种类有关，实际使用时请参照仪器说明书，或各荧光探针的具体使用要求进行浓度的调节。
3)通常DNA模板的量以10-100ng基因组DNA或1-10ng cDNA为参照，因不同物种的模板中含有的目的基因拷贝数不同，可对模板进行梯度稀释，以确定最佳的模板使用量。
4)不同仪器的激发光学系统有所不同，根据使用荧光定量的仪器选择加入50× Low ROX or 50×High ROX。

2、PCR反应程序
注意！本产品预变性反应必须在95℃ 10分钟下完成！

两步法PCR：

步骤	温度	时间	循环数
UNG酶消化	37℃/50℃	2-10 min
预变性	95℃	10 min
变性	95℃	15 s	35-40个循环
退火/延伸	60℃	1 min

注意：
1)本产品所采用的热启动酶须在预变性95℃、10 min条件下实现酶的活化。
2)建议采用两步法PCR反应程序，若因使用Tm值较低的引物等原因，得不到良好的实验结果时，可尝试进行三步法PCR扩增。

三步法PCR：

步骤	温度	时间	循环数
UNG酶消化	37℃/50℃	2-10 min
预变性	95℃	10 min
变性	95℃	15 s	35-40个循环
退火	55℃-65℃	30s
延伸	72℃	30s

储存条件：-20℃，避免反复冻融

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·PCR Mix(含染料)(滴瓶装)
编号：WE0100
英文名称：PCR Mix(With Dye)
规格：5ml
  本产品以滴瓶包装，集成了PCR反应所需各要素及稳定剂、增强剂，对PCR反应中各成份的浓度有较高的宽容度，无需加样工具，将本产品直接滴入加有模板、引物的PCR管即可完成反应准备。本产品热稳定性高，启封后置2～8℃保存，六个月内可随时取用。本产品使用高度封闭的热启动DNA聚合酶，可有效减少非特异PCR产物扩增，配制PCR反应体系可在室温进行，但须注意热循环程序的第一步必须包括至少10分钟的95℃热启动。本产品已加入染料(蓝色)，反应结束后可直接进行电泳检测。扩增得到的大部分PCR产物3"端附有一个“A”碱基，因此可直接用于T/A克隆。

质量控制：
1、经检验无外源核酸酶活性；
2、PCR方法检测无宿主残余DNA；
3、能有效地扩增多种基因组中的单拷贝基因；2～8℃存放六个月，活性无明显改变。

使用方法：
  本产品以滴瓶包装，使用时，取掉旋盖后将滴瓶倒置，滴塞口对准已加入适量模板和引物的PCR管口上方，以食指和拇指轻轻挤压滴瓶，滴入一滴反应液，即可完成PCR反应准备。正常挤压时，液滴平均体积约为25μl，可能会因挤压滴瓶用力不一，造成挤出液滴体积存在差异，但对多数PCR反应，均可获得良好扩增。

1、PCR反应体系：
 

试剂	反应体积
PCR Mix	1 滴
Forward Primer，10μM	1μl
Reverse Primer，10μM	1μl
Template DNA	≤4μl

注意：
1)引物浓度以10μM作为参考。扩增效率不高的情况下，可提高引物的浓度；发生非特异性反应时，可降低引物浓度，由此优化反应体系。
2)PCR模板的使用量应视DNA性质加以调整。一般而言，在每滴PCR反应中，当模板为质粒DNA时，以1 pg至10ng为宜；当模板为细菌基因组DNA时，以1ng至100ng为宜；当模板为真核生物基因组DNA时，以10ng至300ng为宜。需注意，PCR模板绝非越多越好。过多的模板会对PCR反应产生抑制作用，且容易增高其它抑制物水平，影响扩增效果。

2、PCR反应条件：
 

步骤	温度	时间	循环数
预变性	95℃	10 min
变性	94℃	30 s	30-40个循环
退火	55-65℃	30 s
延伸	72℃	60 s
终延伸	72℃	5 min

注意：
1)产品含有高度封闭热启动DNA聚合酶，须在预变性95℃，10 min条件下实现酶的活化。
2)一般实验中退火温度比扩增引物的熔解温度Tm低5℃，无法得到理想的扩增效率时，适当降低退火温度；发生非特异性反应时，提高退火温度，由此优化反应条件。
3)延伸时间应根据所扩增片段大小设定，本产品的扩增效率为1 kb/min。
4)可根据扩增产物下游应用设定循环数。如循环次数太少，扩增量不足；如循环次数太多，错配机率会增加，非特异性背景严重。所以在保证产物得率的前提下应尽量减少循环次数。

储存条件：-20℃，有效期2年


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·多彩预染蛋白Marker
编号：WE0282
英文名称：Multicolor Protein Marker
规格：20次(100μl)|100次(5×100μl)
  本品由10.5-175 kD范围的11条蛋白组成(10.5 kD、14 kD、22 kD、29 kD、42 kD、51 kD、62 kD、70 kD、95 kD、130 kD、175 kD)。由低到高的分子量范围可监测电泳过程中的蛋白分离情况、判断目标蛋白的分子量，并且可以监测Western Blot实验中的转膜效率。10.5 kD、42 kD、95 kD的三条带结合有蓝色染料更便于实时观察电泳进程、判断蛋白分子量。本产品推荐上样量为5μl。

注意事项：
1、本品已包含上样缓冲液，直接使用，不可在100℃加热或煮沸。
2、为避免反复冻融及污染，可将本产品分装后，-20℃保存。

操作步骤：
1、加样前在室温或37-40℃数分钟解冻后轻轻摇匀，以确保溶液混合均匀。
2、根据加样孔的大小，每泳道加5μl进行聚丙*(代"烯")酰胺凝胶电泳。

实验图例

15%的聚丙*(代"烯")酰胺凝胶电泳后结果

储存条件：-20℃保存，避免反复冻融。


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·磁珠法唾液DNA提取试剂盒
编号：WE0207
英文名称：Magbead Saliva DNA Extraction Kit
规格：96次
  本试剂盒提供了一种简单、快速、高效的唾液DNA提取方法，适用于从在保护液 中保存的唾液中提取DNA。在高盐存在时，DNA结合于硅基包被的Magbeads表面。 漂洗后，高纯度的DNA被洗脱于Buffer EB或去离子水中。DNA的得率与样品中细胞数 量，储存条件、时间有很大关系。纯化得到的DNA纯度好(A260/280在1.7-1.9之间， A260/230大于1.5)，完整度高(大于15 kb)，可用于二代测序、芯片检测、PCR检测等下游实验。

试剂盒组成：

组份	96次
Buffer ML	24ml
Buffer GW1(浓缩液)	80ml
Buffer GW2(浓缩液)	50ml
Buffer MW3	96ml
Buffer EB	30ml
蛋白酶K	2×25mg
蛋白酶K 储存液	2×1.25ml
Magbeads PN	1ml

自备仪器及试剂：

1、手动单管操提取：
1)恒温混匀仪
2)2/15ml磁力架
3)异丙醇、无水乙醇

2、手动96孔深孔板提取：
1)恒温混匀仪
2)废液抽吸系统
3)手动连续分液器
4)电动连续分液器
5)手动连续分液器分液管(25ml)
6)96孔深孔板磁力架
7)异丙醇、无水乙醇

实验前准备及重要注意事项/strong>：
1、向蛋白酶K 中加入指定用量(1.25ml/25mg)的蛋白酶K 储存液使其溶解，-20℃保存。配置好的蛋白酶K 勿长时间室温放置，避免反复冻融，以免影响其活性。
2、Magbeads严禁冰冻、高速离心。冰冻和高速离心可能会对Magbeads造成不可逆的损害。
3、第一次使用前应按照试剂瓶标签在Buffer GW1和Buffer GW2中加入无水乙醇并做好标记。
4、如Buffer ML中出现沉淀，请在56℃水浴锅中重新溶解，摇匀后即可使用。
5、实验过程中，磁珠在溶液中的充分混匀对提取的得率与纯度都有很大的影响。实验过程中务必使磁珠与溶液充分混匀。不同厂家生产的恒温混匀仪效果有一定差异，实验过程中请注意观察磁珠状态。如出现磁珠贴壁等未充分混匀的现象，请用移液器吹吸混匀或调整震荡频率。

操作步骤：

一、手动单管操作：
1、转移400μl唾液与保护剂的混合溶液至1.5ml离心管中，然后16000×g离心1分钟。
2、将离心管从离心机中取出，转移300μl上清液至新的1.5ml离心管中，之后向新的离心管加入20μl 蛋白酶K 和200μl Buffer ML。涡旋震荡混匀后，将新离心管放入56℃水浴锅中孵育1小时。此时可弃去旧离心管。
3、将离心管从水浴锅中取出，室温放置5分钟后短暂离心使溶液回流于离心管底部。向离心管中加入310μl充分混匀的异丙醇(300μl)与Magbeads(10μl)混合物，涡旋震荡5秒钟后立即放于25℃、1600 rpm的恒温混合仪上震荡混匀5分钟。
4、将离心管放于磁力架上静置1分钟，待Magbeads吸附于离心管侧壁后彻底弃去溶液(保持离心管固定于磁力架上)。
5、将离心管从磁力架上取下，加入750μl Buffer GW1(加入前请检查是否已加入无水乙醇)后涡旋点震1分钟或涡旋点震5秒钟后放于25℃、1600 rpm的恒温混合仪上震荡混匀2分钟(震荡过程确保Magbeads处于悬浮混匀状态)。之后将离心管放于磁力架上静置1分钟，待Magbeads吸附于离心管侧壁后轻轻颠倒磁力架将离心管盖上的杂质洗落后充分弃去溶液(保持离心管固定于磁力架上)。
6、重复步骤5。
7、将离心管从磁力架上取下，加入750μl Buffer GW2(加入前请检查是否已加入无水乙醇)后涡旋点震1分钟或涡旋点震5秒钟后放于25℃、1600 rpm的恒温混合仪上震荡混匀2分钟(震荡过程确保Magbeads处于悬浮混匀状态)。之后将离心管放于磁力架上静置1分钟，待Magbeads吸附于离心管侧壁后轻轻颠倒磁力架将离心管盖上的杂质洗落后充分弃去溶液(保持离心管固定于磁力架上)。
8、重复步骤7。
9、选择步骤：
1)保持离心管固定于磁力架上，用移液器去除离心管管底和管盖上的溶液，之后室温放置5-10分钟使乙醇充分挥发干净。如离心管侧壁上有液珠，可向离心管中加入750μl无水乙醇。盖盖后颠倒离心管，之后充分弃去溶液。
2)保持离心管固定于磁力架上，向离心管中加入750μl Buffer MW3，待悬起的磁珠重新吸附于磁力架上后立即充分弃去溶液。
10、将离心管从磁力架上取下，加入50-200μl Buffer EB。涡旋震荡使磁珠充分悬浮于洗脱液中后将其放于56℃、1600 rpm的恒温混合仪上震荡洗脱10分钟，或将离心管在56℃水浴锅中孵育10分钟，期间每隔3分钟涡旋震荡10秒钟。
11、将离心管放于磁力架上静置2分钟，待Magbeads充分吸附于离心管侧壁后用移液器将溶液转移至新的离心管中-20℃保存备用。

二、手动96孔板操作：
1、向2.0ml的96孔深孔板(简称“深孔板”)中加入500μl唾液与保护剂的混合溶液，然后在水平离心机上2000×g离心5分钟。
2、将深孔板从离心机中取出，取300μl上清液至新的深孔板中，之后向新的深孔板中加入20μl 蛋白酶K 和200μl Buffer ML。用硅胶盖将新的深孔板封闭后将其放于恒温混合仪上1500 rpm震荡2分钟，之后将新的深孔板放于56℃水浴锅中孵育1小时。此时可将旧的深孔板弃去。
3、将深孔板从水浴锅中取出，固定于25℃、1500 rpm的恒温混匀仪上震荡5分钟。
4、将深孔板从恒温混匀仪取下，短暂离心后打开硅胶盖。向深孔板中加入310μl充分混匀的异丙醇(300μl)与Magbeads(10μl)混合物，盖上硅胶盖后立即将深孔板固定于25℃、1500 rpm恒温混匀仪上震荡5分钟。
5、将深孔板从恒温混匀仪上取下放于96孔板磁力架上静置2分钟，之后用废液抽吸系统或8通道移液器弃去溶液，期间避免枪头接触磁珠。
6、用手动连续分液器向深孔板中加入500μl Buffer GW1(加入前检查是否已加入无水乙醇)，之后将深孔板固定于25℃、1500 rpm恒温混匀仪上震荡2分钟。
7、将深孔板从恒温混匀仪上取下放于96孔板磁力架上静置2分钟，之后用废液抽吸系统或8通道移液器弃去溶液，期间避免枪头接触磁珠。
8、重复步骤6-7。
9、用手动连续分液器向深孔板中加入500μl Buffer GW2(加入前检查是否已加入无水乙醇)，之后将深孔板固定于25℃、1500 rpm恒温混匀仪上震荡2分钟。
10、将深孔板从恒温混匀仪上取下放于96孔板磁力架上静置2分钟，之后用废液抽吸系统或8通道移液器弃去溶液，期间避免枪头接触磁珠。
11、重复步骤9-10。
12、将深孔板从恒温混匀仪上取下放于96孔板磁力架上静置2分钟，之后用废液抽吸系统或8通道移液器弃去溶液，期间避免枪头接触磁珠。
13、保持深孔板固定于96孔板磁力架上，将深孔板倒置于干净的吸水纸上放置2分钟。之后将深孔板放于100℃(由于深孔板未与加热模块直接接触，管底实际温度在50-60℃之间)的恒温混匀仪上静置5分钟。
14、用电动连续分液器或8通道移液器向深孔板中加入100-200μl Buffer EB，之后将深孔板放于100℃、1500 rpm恒温混匀仪上震荡10分钟。
15、将深孔板从恒温混匀仪上取下放于96孔板磁力架上静置2分钟，用8通道移液器将溶液转移至96孔板板中盖盖后-20℃保存备用。

储存条件：室温(15～30℃)

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