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Knockdown(基因敲低)细胞系

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    RNA干扰是指在进化过程中高度保守的、由双链RNA诱发的、同源mRNA高效特异性降解的现象。现今发现的主要起干扰作用的主要有两类小分子RNA:一类是microRNA;另一类是siRNA。siRNA制备的方法一般有:化学合成siRNA,哺乳动物细胞载体shRNA克隆和慢病毒载体shRNA克隆。shRNA需通过载体导入细胞后,然后利用细胞内的酶切机制得到siRNA而最终发挥 RNA干扰作用。

    在细胞水平上,利用RNA干扰技术来抑制目标基因的表达,从而获得knockdown的基因敲低细胞系,已广泛应用于研究基因功能,设计疾病模型和药物研发中。安必奇凭借先进的实验技术,完善的实验平台可以针对各种目标基因设计高效的shRNA,并利用shRNA的慢病毒表达载体,构建种类齐全的各种基因knockdown稳定细胞系。
    安必奇生物科技提供的knockdown基因敲低细胞系服务不受基因位点、细胞种类的限制,可以在任何基因、任何位点、各种哺乳细胞上实现基因敲低。我们最终会提供给客户高质、稳定的细胞系以及全面的检测报告,包括mRNA水平、蛋白质水平、细胞表型水平检测报告。Knockdown(基因敲低)细胞系服务

    技术流程Knockdown(基因敲低)细胞系服务服务内容

    • 筛选有效的shRNA- 针对靶基因设计和筛选作用高效的shRNA。
    • shRNA表达载体构建- 将shRNA克隆入慢病毒载体。
    • 细胞转导和克隆筛选- 由慢病毒介导的shRNA表达载体,可以感染各种细胞,甚至是难转染的细胞。我们已经在H1299、2F-2B、4T1、786-O、9607、THP-1、MCF7/ADR、A549、V79、CHO、HepG2 等多个种属细胞中成功构建了knockdown的稳定细胞系。
    • 鉴定- 全面可靠的检测报告,如qRT-PCR 、 Western blot 等检测报告。

    我们的优势

    • 无基因序列、细胞、物种限制,几乎可敲低任意基因。
    • 实验设计简单准确、实验周期短、成本低。
    • 毒性低、脱靶情况少;成功率很高。
    • 可识别任意目标基因序列,且不受上下游序列影响。
    • lentivirus-shRNA经过慢病毒包装后,可用于感染依靠传统转染试剂难于转染的细胞系如原代细胞、悬浮细胞和处于非分裂状态的细胞,并且在感染后可以整合到受感染细胞的基因组,进行长时间的稳定表达。

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    • 【求助】实验设计中RNA干扰封闭某基因表达后能否在转入表达该基因的载体

      loyalty 如题。 准备做有关肿瘤细胞信号转导机制的研究。疾病模型中A对B的作用。对象:人的肿瘤细胞系。 思路:某处理因素作用下,A升高,检测B的升高。 A knockdown, B无改变。 A knockdown cell 转入携带有外源基因的表达载体,检测B升高。 问题1: 因为没有查到与该研究相关的直接相关文献,无法参考,但是我认为信号转导途径的研究大致应该如此。然而,关于Knockdown的方法,如选择RNA

    • 慢病毒RNAi干扰

      (1)原理 慢病毒是逆转录病毒的一种,具有逆转录病毒的基本结构,但也有不同于逆转录病毒的组份和特性,作为基因治疗载体发展起来,最近已用于转基因动物制备。利用慢病毒构建的shRNA/miRNA载体,与化学合成的siRNA和基于瞬时表达载体构建的shRNA相比。一方面可以扩增替代瞬时表达载体使用,另一方面,lentivirus-shRNA/miRNA克隆经过慢病毒包装系统包装后,可用于感染依靠传统转染试剂难于转染的细胞系如原代细胞、悬浮细胞和处于非分裂状态的细胞,并且在感染后可以整合到受

    • BMDC 的诱导分化和完全成熟实验指南

      余均无一致表型,则可判定该表型极大概率源于脱靶效应。 ·CRISPR 敲除 + RNA 干扰双重验证 联合使用 CRISPR 介导的基因敲除(DNA 水平)与慢病毒 shRNA 介导的基因敲低(RNA 水平)。若两种方法所得表型不一致,提示存在脱靶效应。 ·全基因组脱靶测序(CIRCLE-seq / Digenome-seq) 在体外及细胞内水平高通量扫描全基因组潜在错配切割位点,直接定位脱靶基因,是目前公认的“金标准”正交验证方法。 ·转录组测序(RNA-seq)差异基因比对 比较干预组(药物

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