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细胞转染
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凯基生物
| 细胞转染 | |
| 实验目的:将质粒携带的目的基因导入真核细胞,是目的基因表达蛋白 实验原理:脂质体为人工膜泡,可作为体内,体外物质转送载体。将需转移的DNA或RNA包裹于质脂体,由于质脂体具有磷脂双层与胞膜相似,因此,可与 细胞膜融合,将DNA转入宿主细胞。 实验材料:试剂:Lipofectamine 2000 仪器:超净工作台、CO2培养箱、生物倒置显微镜 实验内容与方法: 瞬时转染:1.细胞准备:细胞接入6孔板,待细胞汇合至80,更换不完全培养基,饥饿24h; 2.转染液制备:分别稀释质粒和转染试剂; 3.转染制备:混合质粒和转染试剂; 4.转染。 稳定转染:瞬时转染后筛选单克隆,筛选出高表达的细胞株。 实验信息(客户):1.生长状况良好的宿主细胞株,并提供细胞特性、培养条件及相关注意事项。 2.提供质粒,并说明质粒大小,浓度,抗性,拷贝数等相关背景资料。 服务周期:瞬时转染:2周;稳定转染:2月 结果提交:提交实验报告书(实验试剂与设备、实验过程、结果分析、原始数据、细胞图片等);转染细胞株 瞬时转染绿色荧光蛋白的B16F10 |
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文献和实验转染是否成功的影响因素很多,如需要转染的细胞类型(对于困难的细胞系尤其如此),需要被转染的分子(DNA、RNA、寡核苷酸、蛋白质),转染试剂等。但无论在何种情况下,转染的成功均取决于转染效率、低细胞毒性以及重现性这几个要素。 细胞 分裂细胞相比较非分裂细胞——分裂细胞往往要比静止细胞更易于摄取并表达外源 DNA。因此对大多数转染操作而言,细胞都在转染当天或前一天种板。同样重要的是细胞在种板进行转染时不应处于过度生长的状态;此外,还常用促有丝分裂刺激物(如,病毒转化,生长因子,条件
到细胞完全从壁上脱落下来为止。 (4) 加入1ml的含血清培养基终止反应。 (5) 用Tip头多次吹吸,使细胞完全分散开。 (6) 将培养液装入离心管中,1000rpm离心5min。 (7) 用培养液重悬细胞,细胞计数后选择0.8X106个细胞加入一个35mm培养皿。 (8) 将合适体积完全培养液加入离心管中,混匀细胞后轻轻加入培养皿中,使其均匀分布。 (9) 将培养皿转入CO2培养箱中培养,第二天转染。 2、细胞转染 (1)转染试剂的准备 A. 将400ul去核酸酶水加入管中
细胞转染的方法主要有三种,分别是磷酸钙-DNA 共沉淀法、DEAE-葡聚糖转染、脂质体介导 DNA 转染法,今天师兄就先从磷酸钙-DNA共沉淀法讲起。 磷酸钙-DNA共沉淀法 核酸以磷酸钙-DNA 共沉淀物的形式出现时,可使 DNA 附在细胞表面,这回利于细胞吞入摄取核酸,或通过细胞膜脂相收缩时裂开的空隙进入细胞内,进入细胞的DNA,仅有1%~5%可以进入细胞核中,其中仅有不到1%的DNA可以与细胞 DNA 整合,在细胞中进行稳定表达,基因转导的频率大约为10-4,这项技术
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