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- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
试剂
- 保质期:
试剂
- 英文名:
-
- 库存:
有
- 供应商:
福州木辰
- CAS号:
60-23-1
- 规格:
M9768-25G
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文献和实验分子量大小:(36、45、55、66、84、97、116、205KD)宽范围蛋白质分子量标准(6.5-205KD)M4038-120次Sigma280元宽范围蛋白质分子量标准(6.5-205KD)M4038-15×20次Sigma1266元分子量大小:(6.5、14.2、20、24、29、36、45、55、66KD)预染的低范围蛋白质分子量标准(18-80KD) 20次自产320元预染的低范围蛋白质分子量标准(18-80KD) 50次自产680元分子量大小: 80, 60, 39, 23, 18
液洗脱下来的收集液,发现酶活居然有100IU/50ul,我想是不是初始缓冲液的离子强度就太高了呢,0.011M柠檬酸-氢氧化钠,PH5.5?然后就用的是手工步进式洗脱,0.05M,0.1M,0.15M,0.2M,0.25MNaCl,直到后来的0.5M,1M. 另外,我还想请教您: 阳离子层析柱用完后如何保存?先用1M氢氧化钠溶液,然后再用含硫柳汞的缓冲液,行吗?可不可以用其他的防腐剂呢?如有,可否推荐一下?硫柳汞我这里包装大,25g,又不能分装,需要避光保存,先谢谢了! 那用更高点的盐洗脱
原创:Chromatography weixingui@263.net,推荐书籍:《蛋白纯化与实验鉴定指南》、《生物工程下游技术》、《酶工程》、《酶制剂工业》1)我现在手头有个融合蛋白,纯化的时候用助溶剂溶解后做了GST亲和层析,之后用蛋白酶切割后却发现目的蛋白没有活性。请问有哪些可能会出现这种原因?怎么解决?测过基因序列,没有问题。细胞破碎后,融合蛋白在沉淀里,我用助溶剂提取后,可以用GST做亲和层析,但效率只有50~60%左右。洗脱完融合蛋白不需要助溶剂,但这样的条件下切割完后目的蛋白会
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