- ￥140
- AMEKO
- 国产
- RC61854-3×100ml
- 2026年05月28日
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- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件：
室温,12个月
- 库存：
现货
- 供应商：
鹿森生物
- 规格：
3×100ml
注意事项：主要由弱酸、DEPC处理水、乙醇等组成。
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文献和实验个细胞。考虑到我们后续还要对酶切用量进行优化，实际准备了足量细胞（每组约 1.5×107 个细胞）。在我们实验前，我们仔细观察了细胞的状态和密度，细胞状态很健康，贴壁良好，也达到了 80% 左右的汇合率，一切都符合 ChIP 实验的要求。拿出试剂盒，我们首先对各种标配试剂置于冰浴中进行了标记。由于试剂盒标配的 DTT 为干粉，因此我们需要配制 1M DTT 溶液（具体地，192.8 mg DTT#7016 加 1.12 ml dH2O，确保 DTT 完全溶解）。然后，我们取出并室温预热 200
）、塑料盖玻片或封口膜、吸管、各种规格的加样器及枪头等；试剂：试剂盒含TdT 10×、荧光素标记的dUTP 1×、标记荧光素抗体的HRP；自备试剂：PBS、双蒸水、二甲苯、梯度乙醇（100、95、90、80、70%）、DAB工作液（临用前配制，5 μl 20×DAB+1μL 30%H2O2+94 μl PBS）、Proteinase K工作液（10-20 μg/ml in 10 mM Tris/HCl， pH 7.4-8）或细胞通透液（0.1% Triton X-100 in 0.1% sodium
液等。这些固定液都有不同的优缺点因此要根据具体的实验对象，选择最佳的固定液。 4． 固定方法 组织标本取材后，迅速放入固定液中2～4h，取材组织大小为1cm×1cm×0.5cm，不宜太大。必要时，动物组织可进行灌流固定，然后将组织按要求取材放入20%蔗糖中，4℃过夜，次日可行冰冻切片。 (二)切片及细胞标本的制备 1． 载玻片的处理 因为原位杂交一般在载玻片上进行，所以载玻片必须保持清洁且不能有任何核酸酶的污染。一般载玻片可先经洗衣粉浸泡过夜，用流水冲洗、酸中浸泡
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