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  • 2026年01月21日
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    相关实验
    • Western 实验步骤

      样本准备 蛋白提取 所需仪器:匀浆器、RIPA 裂解液、PMSF(蛋白酶抑制剂)、磷酸酶抑制剂、剪刀、镊子,消毒酒精、PBS、移液器、离心机。 裂解液配制——RIPA 裂解液:PMSF=100:1。 1) 组织处理:首先用酒精消毒剪刀和镊子,取适量的组织于匀浆器中,用剪刀剪碎加适量的裂解液冰水中匀浆 1-4 min。匀浆结束后吸取溶液于 EP 管中保存备用。(含血液较多的组织可先用 PBS 清洗后再匀浆) 2) 细胞处理: A、 贴壁细胞处理:去掉培养基用 PBS 清洗后加入适量的裂解

    • 胶体电泳法方法步骤

      立刻产生无数细微气泡,是通电的特征。10) 追踪染料很快进入胶体,开始焦集成蓝色细线,并向下泳动,大约1 h 可泳动到底边,中止电泳,除去电源盖。有些分子量较大的样本,或使用浓度较高的胶片,可以等到蓝色细线泳出胶体才停止。胶片染色法:11) 取出胶片组合,使玻璃板向上,先除去两侧间隔条,再以扁形药匙轻轻撬起玻璃,胶片则留在板上。切除焦集胶体,并在分离胶片的右上方截角做记号 (区别胶片的左右)。12) 取染色盘 (大约比胶片稍大),倒入CBR染色液,在染色盘上方把上述白板倒翻过来,挑起胶片一角

    • western-blot实验方法

      缓冲液的铝盒中。 (6)SDS-PAGE 结束后,小心地剥下两块凝胶,一块用于考马斯亮兰染色观察电泳情况,另一块浸泡在转膜缓冲液中预平衡。海绵垫、滤纸、PVDF 膜及凝胶的预平衡时间在15 min - 1 hr 之间。 (7)将转膜夹子打开,使黑的一面保持水平。按照海绵垫、滤纸、凝胶、膜、滤纸和海绵垫的先后顺序铺垫,制备凝胶转移夹层。将膜与凝胶对齐。用玻璃棒赶走气泡。 (8)将夹子夹起来,扣紧,小心不要移动内层。放入电转槽中。使夹子的黑面对槽的黑面,夹子的面对槽的红面。 (9)将电转槽放在冰水盒

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