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AH109酵母感受态细胞

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  • 2026年01月04日
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      干冰

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      100ul*10

    AH109酵母感受态细胞

    产品编号

    产品名称

    规格

    MCC0200

    AH109酵母感受态细胞

    100μl*10

    Carrier DNA

    5ug/μl;100 μl /-20℃

    PEG/LiAc

    5 ml /4℃

    保存条件:-80

    1.产品简介:

    AH109菌株来源于PJ69-2A酵母菌株,将lacZ报告基因引入PJ69- 2A诞生了AH109,此菌株是Clontech公司开发的GAL4系统酵母双杂实验用菌株,MATa型,可直接转化质粒或与MATa型酵母菌株Y187通过mating操作进行蛋白互作验证或筛库试验。Transformation marker为: trp1, leu2,报告基因为: lacZ,HIS3,ADE2,MEL1。 AH109 -GAL4酵母双杂系统需要两种质粒配套使用:PGBKT7和PGADT7。质粒PGBKT7的筛选标志为TRP1,用于表达DNA-BD(来自酵母转录因子GAL4N端1~ 174位氨基酸)与目标蛋白(Bait)的融合蛋白;质粒PGADT7的筛选标志为LEU,用于表达AD(GAL4 C端768^ 881 位氨基酸)与目标蛋白(Prey) 的融合蛋白。GAL4系统原理:一个完整的酵母转录因子GAL4可分为功能上相互独立的两个结构域:位于N端1~ 174位氨基酸 区段的DNA结合域(DNA-BD) 和位于C端768^ 881 位氨基酸区段的转录激活域(AD)。DNA-BD能够识别GAL4- responsive gene的上游激活序列UAS,并与之结合。而AD可以启动UAS下游的基因进行转录。BD和AD单独存在不能激活转录,但当二者接近时,则呈现完整的GAL4活性,使含有UAS的启动子下游基因转录表达。正常条件下,BD不与AD结合,将要检测的蛋白质分别与BD和AD融合,形成bait融合蛋白(bait -BD) 和prey融合蛋白(prey-AD) ,如果bait和prey发生相互作用,就会促使BD和AD的相互接近,形成完整的GAL4,从而激活报告基因的转录。AH109有 四个报告基因: lacZ, HIS3, ADE2, MEL1, 分别由三种不同的启动子(GAL1,GAL2, MEL1)启动,这三种启动子只有GAL4识别的17bp核心区相同,其余部分均不同,大大降低了酵母双杂假阳性发生的概率。AngYuBio Hi gh5TM系列AH109感受态细胞经特殊工艺制作,经PGADT7质 粒检测转化效率>104cfu/ug DNA。

    基因型:MATa,trp1-901, leu2- 3,112,ura3-52, his3-200,gal4 △,gal80△,LYS2 : :GAL1UAS- -GAL1TATA-HIS3,MEL1 GAL2UAS-GAL2TATA-ADE2,URA3: : MELIUAS-MEL1TATA-lacZ

    2.使用说明:

    1).取一支无菌的1.5ml EP管,依次加入预冷的目的质粒1-3μg, .Carrier DNA 10μl(95-100℃ 5min快速冰浴,重复一次),100μl冰.上融化的AH109感受态细胞,PEG/LiAc 500ul, 轻轻翻转混匀6-8次;

    2).30℃ 水浴30min,每10min轻轻翻转混匀6-8次;

    3).每支加入20ul的二甲基亚砜; (用于提高转化效率,可不做)

    4).42℃水浴15min,每5min轻轻翻转混匀6- 8次;

    5).12000rpm瞬时离心弃上清,每支加入1m1的YPD Plus于30℃复苏1h; (用于提高转化效率, 可不做)

    6).12000rpm瞬时离心弃上清,用100ul 0.9% NaCl 重悬,涂板,30℃培养48 - 96h。

    3.注意事项:

    1).感受态细胞最好在冰上融化, PEG溶液在低温环境下会析出,请于常温下完全溶解后使用。

    2).转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量。

    3).同时转化2-3种质粒时可增加质粒的用量。

    4).AHA109酵母菌株对高温敏感,最适生长温度为27-30℃;高于31℃,生长速度和转化效率呈指数下降。

    5).菌落变粉不是污染,是酵母细胞生长中一个常见现象。当细胞在平板培养几天后,平板上的Adenine被酵母消耗完毕,酵母试图通过自身代谢途径合成Adenine以供利用,然而,有些菌株的ADE2基因被破坏,Adenine合 成途径受阻;又由于其.ADE4,5, 6, 7, 8基因均正常,所以造成中间产物P-ribosylaminomidazole (AIR) 在细胞中积累而使菌落变为粉红色。

    6).酵母在缺陷培养基中生长速度比YPDA培养基慢,培养基中缺陷成分越多,生长越慢,以转化涂板为例:涂YPDA平 板29℃,48h培养可见直径1mm克隆;涂SD单缺平板29℃,48- 60h培养可见直径lmm克隆,涂SD双缺平板29℃,60- 80h培养可见直径1mm克隆,涂SD三缺或四缺平板平板29℃,80-90h培 养可见直径lmm克隆。

     

    *本试剂仅供实验室研究使用

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    • 毕氏酵母感受态细胞制备及转化

      1.5ml缓冲液B,彻底混匀; 30℃水浴孵育1h; 室温下2000g离心10min,去除上清液,菌体沉淀重悬于1.5ml缓冲液C中; 离心样品,去除上清液,轻微操作将样品重悬于0.2ml缓冲液C中; 将所有转化液铺于选择性平板,于30℃孵育3~4天后,鉴定; 3、毕氏酵母电转化法 (1)E.coli TOP10F’感受态细胞的制备 取10ul TOP10F’菌液,接种于200ml LB液体培养基中活化培养,37℃,200 rpm,16~18小时。取100ul菌液接种于200ml液体LB

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      酿酒酵母感受态细胞的制备 (1)从YPD平板上挑取一个新鲜的酿酒酵母EBY100单克隆至10 ml YPD液体培养基,30℃,250 rpm 培养过夜。 (2)测定过夜培养物的OD600值为3.0~5.0之间。 (3)将10 ml YPD过夜培养物稀释至OD600值为0.2~0.4。 (4)在28~30℃摇床中继续培养3~6 hr,使其OD600值达到0.6~1.0。 (5)于室温1500 g 离心5 min 收集酵母细胞,弃上清。 (6)用10 ml 洗液洗酵母

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