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- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
充足
- 英文名:
Hyperactive DNA Spike-in Control for CUT&Tag
- 供应商:
诺唯赞
- 保存条件:
-30 ~ -15℃保存,≤0℃运输。
- 规格:
48 rxns

蛋白质-DNA互作

兼容性好
校正效率高
Hyperactive DNA Spike-in Control for CUT&Tag是适用于CUT&Tag文库数据校正的参照标准DNA片段,主要用于不同样本间测序数据相互标准化,以达到不同样本间可相互比较的目的,可减少从样本制备到数据分析的操作流程中产生的误差。



-30 ~ -15℃保存,≤0℃运输。
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文献和实验,将 CUT&RUN 技术升级到单细胞水平,并应用于早期胚胎研究。 2019 年 Henikoff 等发明 CUT&Tag ,使用带有接头的 Tn5 转座酶替代 MNase ,简化实验操作,将细胞量从 104 级别降到 60 个细胞甚至单细胞。 2.蛋白质-DNA 互作技术概述 ✦染色质免疫共沉淀(ChIP): ChIP 是全基因组范围内检测蛋白-DNA 互作的标准方法,该技术由 Orlando 等于 1997 年创立[1]。 图 1:ChIP 基本原理图[1] ✦ ChIP
干货 | CUT and Tag 让 ChIP-Seq更简单高效!
CUT&Tag 技术原理及应用 CUT&Tag(Cleavage Under Targets and Tagmentation)是替换传统的 ChIP-Seq 用以研究蛋白质-基因组互作的新技术,与后者相比,它具有信噪比高、可重复性好、实验周期短(1 天实现从细胞到文库构建)、细胞投入量低等显著优势,尤其适用于早期胚胎发育、干细胞、肿瘤以及表观遗传学等研究领域。 图 1. CUT&Tag 实验原理 CUT
CUT&RUN是ChIP的“升级版”?一个容易被忽略的认知误区
单细胞水平; ·追求最短实验流程; ·靶蛋白丰度较高、结合较稳定。 简而言之, 样本少、DNA和蛋白结合强、预算充足、可摸索条件就选CUT&RUN/CUT&Tag; 靶点结合弱、需对标公共数据、求稳就选传统ChIP-seq。 五、结语:技术升级从来不是全方位碾压 梳理这三种技术的过程中,最值得修正的一个思维惯性是:新技术不等于旧技术的全面替代。 CUT&RUN以“无交联+原位切割”换取了低背景、少细胞、低成本,同时也放弃了交联带来的弱结合捕捉能力,以及十余年积累的公共数据与标准化体系。它在某些维度
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