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DO Supplement-Ade-His-Leu-Trp

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  • 博尔森/BIOESN
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  • 中国
  • 2025年07月10日
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      50

    • 英文名

      DO Supplement-Ade-His-Leu-Trp

    • 供应商

      上海博尔森生物科技有限公司

    • 保存条件

      2-8℃

    • 规格

      20g

    DO Supplement-Ade-His-Leu-Trp

     

    储存条件:常温密封,长期不用建议 2-8 ℃储存

    运输温度:常温运输

    产品内容: 

    产品细节图片1

    注意:

    1. 附表内没有提供数据的培养基产品加入量参照产品标签。

    2. 培养基易吸潮,开封后务必密封保存。

    酵母培养基的配制:

    (1) Rich Liquid Media (Broth)

    1. 取 50 克YPD 或者YPDA( 添加了硫酸腺嘌呤)加 1 L 去离子水,搅拌溶解

    2. 调 pH 至6.5(可省步骤)。121℃高压灭菌十五分钟。

    3. 避光、室温条件下储存灭菌培养基。

    (2) Rich Plating Media with Agar

    1. 取 70 克YPD Agar 或者YPDA Agar(添加了硫酸腺 嘌呤)加 1 升去离子水,搅拌溶解(琼脂在高压灭菌过程中溶解)

    2. 调 pH 至6.5(可省步骤)。 121℃高压灭菌15分钟。

    3. 冷却到50℃把培养基倒入平板中,室温使其凝固。封口膜封好后倒置保存在4℃冰箱。

    (3) SD Media

    1. 根据下表,在1 L去离子水中加入相应量的 Minimal SD Base和 DropoutSupplements,搅拌溶解。或选择复配好的产品(独立包装,即拆即)。

    2. 无需调整pH值。121℃高压灭菌15分钟。

    3. 4℃冰箱避光储存已经灭菌的液体培养基。

    (4) SC Media

     

    1. 根据下表在900 mL去离子水中加入相应量的 YNB和DO Supplement(缺陷型氨基酸混合物),搅拌溶解。或选择复配好的产品。

    2. 调pH至5.8(复配好的产品无需调整)。121 ℃高压灭菌15分钟。

    3. 4 ℃冰箱避光储存已经灭菌的液体培养基。

    4. 使用前加入100 mL已过滤除菌的20%葡萄糖溶液(或其它碳源),混匀。

    5. 如需配制平板,应在第1步加入琼脂,20g/L。

    注:SC Media是不含葡萄糖的SD Media。葡萄糖高温灭菌会有碳化现象,控制好灭菌温度和时间,葡萄糖的微量碳化对实验影响并不大。没有特别要求一般建议用SD Media。

    (5) SD Agar Media

    1. 根据下表,在500 ml 去离子水中加入相应量 Minimal SD Agar Base和Dropout Supplements(缺陷型氨基酸混合物) 搅拌溶解(琼脂在高温灭菌过程中溶解)。或选择复配好的产品(独立包装,即拆即)。

    2. 无需调整pH值。121℃高压灭菌15分钟。

    3. 冷却到50℃把培养基倒入平板中,室温使其凝固。封口膜封好后倒置保存在4℃冰箱。

    注意事项:

    1. 全系SD/SC Media无需调整 pH 值,与其它品牌搭配做固体培养基使用时,建议调整pH值至5.8。

    2. GAL1启动子诱导表达要选用 Minimal SD Agar Base Gal/Raf 培养基。

    3. 在配制酵母缺陷培养基时,建议配成 SD Media 或SD Agar Media ,虽然葡萄糖在灭菌时会有炭化变色现象,培养基变为浅黄到深褐色不等,但对酿酒酵母的生长不会产生严重影响。

    4. 若实验要求不能出现糖的炭化现象,也可选择 SC Media ,在灭菌后加入过滤除菌的葡萄糖

    5. Minimal SD Agar Base Gal/Raf 培养基高温高压下可能对诱导效果产生抑止,尤其是在做表达调节介导的功能互补实验需特别注意!

    常见问题:

    1.如果诱饵蛋白对酵母细胞是有毒的,该怎么办?

    在某些情况下,在液体培养基中培养不好的菌珠可以在固体培养基上生长得很好。首先重悬克隆于1ml 的 SD/–Trp,接着将重悬液平铺于5 个100mm的SD/–Trp 平板,在30℃下温浴,直至平板上的克隆相互粘在一起。用5ml 0.5× YPDA 刮下每块板上的克隆,并收集到一管中,这样就可以使用这个细胞重悬液进行正常的杂交反应。

    2.如果诱饵蛋白能直接激活报告基因的表达,该如何处理?

    该蛋白很可能有转录激活域,是个转录因子。可以通过基因重组切掉转录激活域,然后重新检测其是否自激活,但要注意重组也有可能破坏蛋白之间的互作。

    3.转化效率太低怎么办?

    1)检测一下 DNA 的纯度,如果可以的话,重新用乙醇纯化。

    2)DNA-BD/诱饵蛋白很可能是有毒的。

    3)不适当的培养基,重新配制培养基,并做对照转化。

    4)检测 pGBT9 对照载体的转化效率,放置于 SD/-Trp 平板上,转化效率应该在1×105colonies/μg DNA 以上。

    4.杂交效率不高,该如何处理?

    在杂交中,预转化的诱饵细胞的数量可能不够。当对诱饵菌株进行液体培养过夜时,应挑选大的、新鲜的克隆进行培养,经过离心和重悬后,再使用血球计对细胞进行计数。密度应该在1 x109/ml。一个甚至两个融合蛋白对酵母细胞有毒。你可以通过重组方法来减轻毒性,同时又能保证蛋白的相互作用。或者使用表达水平较低的载体。也可以在琼脂平板或滤膜上进行杂交。但同时必须作杂交对照实验。

    DO Supplement-Ade-His-Leu-Trp

     

    储存条件:常温密封,长期不用建议 2-8 ℃储存

    运输温度:常温运输

    产品内容: 

    产品细节图片2

    注意:

    1. 附表内没有提供数据的培养基产品加入量参照产品标签。

    2. 培养基易吸潮,开封后务必密封保存。

    酵母培养基的配制:

    (1) Rich Liquid Media (Broth)

    1. 取 50 克YPD 或者YPDA( 添加了硫酸腺嘌呤)加 1 L 去离子水,搅拌溶解

    2. 调 pH 至6.5(可省步骤)。121℃高压灭菌十五分钟。

    3. 避光、室温条件下储存灭菌培养基。

    (2) Rich Plating Media with Agar

    1. 取 70 克YPD Agar 或者YPDA Agar(添加了硫酸腺 嘌呤)加 1 升去离子水,搅拌溶解(琼脂在高压灭菌过程中溶解)

    2. 调 pH 至6.5(可省步骤)。 121℃高压灭菌15分钟。

    3. 冷却到50℃把培养基倒入平板中,室温使其凝固。封口膜封好后倒置保存在4℃冰箱。

    (3) SD Media

    1. 根据下表,在1 L去离子水中加入相应量的 Minimal SD Base和 DropoutSupplements,搅拌溶解。或选择复配好的产品(独立包装,即拆即)。

    2. 无需调整pH值。121℃高压灭菌15分钟。

    3. 4℃冰箱避光储存已经灭菌的液体培养基。

    (4) SC Media

     

    1. 根据下表在900 mL去离子水中加入相应量的 YNB和DO Supplement(缺陷型氨基酸混合物),搅拌溶解。或选择复配好的产品。

    2. 调pH至5.8(复配好的产品无需调整)。121 ℃高压灭菌15分钟。

    3. 4 ℃冰箱避光储存已经灭菌的液体培养基。

    4. 使用前加入100 mL已过滤除菌的20%葡萄糖溶液(或其它碳源),混匀。

    5. 如需配制平板,应在第1步加入琼脂,20g/L。

    注:SC Media是不含葡萄糖的SD Media。葡萄糖高温灭菌会有碳化现象,控制好灭菌温度和时间,葡萄糖的微量碳化对实验影响并不大。没有特别要求一般建议用SD Media。

    (5) SD Agar Media

    1. 根据下表,在500 ml 去离子水中加入相应量 Minimal SD Agar Base和Dropout Supplements(缺陷型氨基酸混合物) 搅拌溶解(琼脂在高温灭菌过程中溶解)。或选择复配好的产品(独立包装,即拆即)。

    2. 无需调整pH值。121℃高压灭菌15分钟。

    3. 冷却到50℃把培养基倒入平板中,室温使其凝固。封口膜封好后倒置保存在4℃冰箱。

    注意事项:

    1. 全系SD/SC Media无需调整 pH 值,与其它品牌搭配做固体培养基使用时,建议调整pH值至5.8。

    2. GAL1启动子诱导表达要选用 Minimal SD Agar Base Gal/Raf 培养基。

    3. 在配制酵母缺陷培养基时,建议配成 SD Media 或SD Agar Media ,虽然葡萄糖在灭菌时会有炭化变色现象,培养基变为浅黄到深褐色不等,但对酿酒酵母的生长不会产生严重影响。

    4. 若实验要求不能出现糖的炭化现象,也可选择 SC Media ,在灭菌后加入过滤除菌的葡萄糖

    5. Minimal SD Agar Base Gal/Raf 培养基高温高压下可能对诱导效果产生抑止,尤其是在做表达调节介导的功能互补实验需特别注意!

    常见问题:

    1.如果诱饵蛋白对酵母细胞是有毒的,该怎么办?

    在某些情况下,在液体培养基中培养不好的菌珠可以在固体培养基上生长得很好。首先重悬克隆于1ml 的 SD/–Trp,接着将重悬液平铺于5 个100mm的SD/–Trp 平板,在30℃下温浴,直至平板上的克隆相互粘在一起。用5ml 0.5× YPDA 刮下每块板上的克隆,并收集到一管中,这样就可以使用这个细胞重悬液进行正常的杂交反应。

    2.如果诱饵蛋白能直接激活报告基因的表达,该如何处理?

    该蛋白很可能有转录激活域,是个转录因子。可以通过基因重组切掉转录激活域,然后重新检测其是否自激活,但要注意重组也有可能破坏蛋白之间的互作。

    3.转化效率太低怎么办?

    1)检测一下 DNA 的纯度,如果可以的话,重新用乙醇纯化。

    2)DNA-BD/诱饵蛋白很可能是有毒的。

    3)不适当的培养基,重新配制培养基,并做对照转化。

    4)检测 pGBT9 对照载体的转化效率,放置于 SD/-Trp 平板上,转化效率应该在1×105colonies/μg DNA 以上。

    4.杂交效率不高,该如何处理?

    在杂交中,预转化的诱饵细胞的数量可能不够。当对诱饵菌株进行液体培养过夜时,应挑选大的、新鲜的克隆进行培养,经过离心和重悬后,再使用血球计对细胞进行计数。密度应该在1 x109/ml。一个甚至两个融合蛋白对酵母细胞有毒。你可以通过重组方法来减轻毒性,同时又能保证蛋白的相互作用。或者使用表达水平较低的载体。也可以在琼脂平板或滤膜上进行杂交。但同时必须作杂交对照实验。

    本产品只适用于科研,不能用于临床诊断。严禁用于临床医疗及其他非科研用途!

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