Cyclin D-CDK4二硫键减弱肺血管细胞增殖

Cyclin D-CDK4 Disulfide Bond Attenuates Pulmonary Vascular Cell Proliferation

作者信息Hannah Knight, Giancarlo Abis, Manpreet Kaur, Hannah L H Green, Susanne Krasemann, Kristin Hartmann, Steven Lynham, James Clark, Lan Zhao, Clemens Ruppert, Astrid Weiss, Ralph T Schermuly, Philip Eaton, Olena Rudyk
PMID37955182
期刊Circ Res
发布时间2023-12-08
DOI10.1161/CIRCRESAHA.122.321836

实验完整度

包含体外细胞实验(HPASMC、HPAEC、HAP1、MCF7)、定点突变与质谱鉴定、体外激酶活性测定、计算机结构建模、C135A敲入小鼠及多种PH动物模型(缺氧、Sugen/缺氧)和患者样本,验证了机制和功能。

主要模型

人肺动脉平滑肌细胞(HPASMCs) 人肺动脉内皮细胞(HPAECs) CDK4敲除HAP1细胞系 C135A CDK4敲入小鼠 Sugen/缺氧小鼠及大鼠PH模型

重点核对

HPASMCs和HPAECs的H2O2处理浓度(如50、100、200 μmol/L)和处理时间(15分钟) CDK4 C135A/C135S突变对激酶活性和增殖的影响 C135A CDK4敲入小鼠在Sugen/缺氧模型中的表型(RVSP、RV肥大、肺血管肌化) 金诺芬的给药剂量和途径(小鼠10 mg/kg/day腹腔注射,大鼠8 mg/kg/day) 患者肺动脉样本中CDK4二硫键水平(PAH vs 对照)

摘要

背景:肺动脉高压(PH)是一种慢性血管疾病,其特点包括平滑肌细胞过度增殖以及细胞氧化还原和代谢平衡紊乱。氧化剂诱导细胞周期阻滞以停止增殖;然而,介导这些过程的氧化还原调控效应蛋白知之甚少。在此,我们报道了细胞周期蛋白D-CDK4(细胞周期蛋白依赖性激酶4)中的一个新的激酶抑制性二硫键,并研究其在细胞增殖和PH中的作用。方法:在人肺动脉平滑肌细胞和人肺动脉内皮细胞中检测了cyclin D-CDK4的氧化修饰。利用定点突变、串联质谱、细胞实验、体外激酶活性测定、计算机结构建模以及一种新型氧化还原失活的组成型敲入小鼠,来研究CDK4半胱氨酸修饰的性质并明确其在肺血管细胞增殖中的重要性。此外,在肺动脉高压患者的肺动脉和分离的人肺动脉平滑肌细胞以及3种PH临床前模型中,评估了cyclin D-CDK4的体内氧化。结果:Cyclin D-CDK4在体外细胞和体内肺动脉中形成可逆的氧化剂诱导的异源二聚体二硫键,分别位于C7/8和C135,抑制cyclin D-CDK4激酶活性,降低Rb(视网膜母细胞瘤)蛋白磷酸化,并诱导细胞周期阻滞。CDK4 C135突变导致激酶受损表型,降低细胞增殖速率,并减轻实验性小鼠PH模型的疾病表型,表明该半胱氨酸对cyclin D-CDK4激酶活性不可或缺。来自肺动脉高压患者的肺动脉和人肺动脉平滑肌细胞显示CDK4二硫键水平降低,与CDK4在人类肺动脉高压中过度活跃一致。此外,金诺芬治疗可诱导cyclin D-CDK4二硫键,通过减轻肺血管重塑减轻实验性PH模型的疾病严重程度。结论:cyclin D-CDK4中的一个新型二硫键作为快速开关抑制激酶活性并停止细胞增殖。这种氧化修饰发生在CDK4特有的关键半胱氨酸残基上,为设计选择性共价抑制剂提供了潜力,预计对PH有益。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
氧化还原修饰如何调控细胞周期蛋白D-CDK4的激酶活性,并在肺动脉高压(PH)中影响肺血管细胞增殖?
核心机制
氧化剂诱导cyclin D-CDK4在CDK4 C135与cyclin D C7/8(或C5/6)之间形成分子间二硫键,导致激酶结构域(铰链区、αC-螺旋、催化环)刚性化,抑制激酶活性,减少Rb磷酸化,诱导G1期细胞周期阻滞,从而抑制细胞增殖。
主要证据
体外激酶实验显示氧化条件下Rb磷酸化显著降低;LC-MS/MS鉴定出CDK4 C135与cyclin D3 C5/6的二硫键;C135A突变导致激酶受损并降低HAP1细胞和敲入小鼠肺血管细胞增殖;Sugen/缺氧模型中敲入小鼠疾病严重程度减轻;PAH患者肺动脉中CDK4二硫键水平降低。
研究意义
该研究揭示了一种新的CDK4氧化还原调控机制,为设计选择性共价CDK4抑制剂提供理论基础,并支持金诺芬等促氧化药物在肺动脉高压中的潜在治疗应用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

鉴定cyclin D-CDK4的氧化还原敏感性和二硫键形成

探究H2O2等氧化剂是否能诱导cyclin D-CDK4形成二硫键。

用H2O2处理HPASMCs和HPAECs,通过非还原性免疫印迹检测CDK4和cyclin D的高分子量复合物;使用PEG-switch实验确认CDK4的半胱氨酸氧化。

2

定位二硫键的具体半胱氨酸残基

确定cyclin D-CDK4二硫键形成的具体半胱氨酸位点。

通过定点突变(C135A、C7/8A、C5/6A等)和LC-MS/MS分析,鉴定二硫键连接位置为CDK4 C135与cyclin D1 C7/8或cyclin D3 C5/6。

3

验证二硫键对激酶活性的影响

检验二硫键形成是否抑制cyclin D-CDK4激酶活性。

进行体外激酶活性实验,比较氧化(H2O2)和还原(DTT)条件下Rb磷酸化水平;使用烷化剂NEM/maleimide处理;并用AlloSigMA计算模拟二硫键引起的结构变化。

4

评估二硫键对细胞周期和增殖的影响

验证氧化诱导的cyclin D-CDK4二硫键是否导致细胞周期阻滞和增殖抑制。

用H2O2处理HPASMCs,通过流式细胞术分析细胞周期,通过xCELLigence实时细胞分析测定增殖率。

5

确定CDK4 C135对激酶活性和细胞增殖的必要性

证明CDK4 C135是激酶活性和细胞增殖所必需的关键残基。

在HAP1细胞中过表达WT或C135A突变体,检测激酶活性和增殖;构建C135A CDK4敲入小鼠,分离肺血管细胞检测增殖。

6

在PH动物模型中评估C135A突变的影响

验证CDK4 C135A突变是否能减轻PH病理。

将C135A KI小鼠和WT小鼠置于Sugen/缺氧PH模型,评估血流动力学、右心室肥大、肺血管肌化等指标。

7

检测PAH患者样本中CDK4二硫键水平

评估PAH患者肺动脉和血管细胞中cyclin D-CDK4二硫键是否减少。

通过非还原性免疫印迹检测患者肺动脉组织和HPASMCs中二硫键CDK4的水平,并比较其增殖能力。

8

评估金诺芬在PH模型中的治疗效果

测试促氧化药物金诺芬是否能通过增强cyclin D-CDK4二硫键来减轻PH疾病严重程度。

在3种PH模型(慢性缺氧小鼠、Sugen/缺氧小鼠、Sugen/缺氧大鼠)中给予金诺芬或对照,评估血流动力学、右心室肥大、肺血管肌化等指标。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Thermo Fisher Scientific11965092
胎牛血清ScienCell0500
青霉素/链霉素----
平滑肌细胞生长培养基-2PromoCellC-39262
内皮细胞生长培养基-2PromoCellC-22211
IMDM培养基--12440053
过氧化氢MerckH1009
金诺芬Enzo Life SciencesBML-EI206
CDK4抗体Cell Signaling Technology12790
细胞周期蛋白D1抗体Cell Signaling Technology2922
细胞周期蛋白D3抗体Cell Signaling Technology2936
Rb抗体Cell Signaling Technology9309
pRb S780抗体Cell Signaling Technology8180
pRb S795抗体Cell Signaling Technology9301
pRb S807/811抗体Cell Signaling Technology8516
Vinculin抗体Cell Signaling Technology13901
GAPDH抗体Cell Signaling Technology2118
FLAG标签抗体Cell Signaling Technology2368
HA标签抗体Cell Signaling Technology3724
抗鼠HRP标记二抗Cell Signaling Technology7076
抗兔HRP标记二抗Cell Signaling Technology7074
CDK4 (H-22)抗体Santa Cruzsc-601
xCELLigence RTCA E-板----
Sugen (SU5416)----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养和处理
H2O2处理浓度(如50、100、200 μmol/L)和时间(15分钟);细胞类型(HPASMCs、HPAECs)
阅读提示:Methods: Cell Culture and Treatments
定点突变和二硫键鉴定
突变位点(CDK4 C135A/C135S,cyclin D1 C7/8A,cyclin D3 C5/6A);过表达系统
阅读提示:Results: A Heterodimeric Disulfide Bond Forms Between CDK4 C135 and Cyclin D1 C7/8
体外激酶活性实验
氧化条件(H2O2或空气)和还原条件(DTT)的浓度;孵育时间(10、30、60分钟)
阅读提示:Results: Oxidation of Cyclin D-CDK4 Inhibits Kinase Activity and Induces G1 Phase Cell Cycle Arrest; Figure 3 legends
细胞周期和增殖实验
细胞同步化条件(血清饥饿40小时);H2O2浓度(50 μmol/L);FBS刺激浓度(10%);检测时间点
阅读提示:Results: Oxidation of Cyclin D-CDK4 Inhibits Kinase Activity and Induces G1 Phase Cell Cycle Arrest; Figure 4 legends
动物模型
小鼠品系(C57BL/6J);缺氧浓度(10% O2);Sugen剂量(20 mg/kg,皮下注射);缺氧持续时间(3周)
阅读提示:Methods: Animal Studies; Results: CDK4 C135 Is Critical for Optimal Cyclin D-CDK4 Kinase Activity and Cell Proliferation
C135A KI小鼠
基因型确认(C135A点突变);年龄和性别匹配
阅读提示:Methods: Generation of Constitutive C135A CDK4 KI Mice
金诺芬治疗
给药剂量(小鼠10 mg/kg/day,大鼠8 mg/kg/day);给药途径(腹腔注射或皮下渗透泵);治疗持续时间
阅读提示:Results: Therapeutic Implications of the Cyclin D-CDK4 Disulfide In Vivo; Figure 8 legends
患者样本分析
患者诊断标准(WHO指南);样本量(IPAH n=9,对照n=8);样本处理
阅读提示:Methods: Human Idiopathic PAH Samples
统计分析
统计方法(t检验、ANOVA等)及依据;样本量计算;P值阈值
阅读提示:Methods: Statistical Analysis