MACF1相分离与IDR2驱动区域鉴定
确定MACF1是否发生相分离以及哪个结构域驱动凝聚。
纯化mCherry-MACF1-CT、GAR、IDR及IDR1/2/3重组蛋白,进行浊度实验、DIC成像、FRAP和相图分析;在细胞中使用OptoDroplet系统、1,6-己二醇处理和MACF1ΔIDR细胞验证IDR2的凝聚能力。
MACF1 condensates serve as molecular rheostats translating mechanical stress into bone adaptation.
包含体外相分离与细胞实验、多细胞类型验证、蛋白质组学、分子动力学模拟及小鼠HLU模型体内功能验证,覆盖功能与机制验证。
MC3T3-E1成骨细胞系 MLO-Y4骨细胞样细胞 C28/I2人软骨细胞 3月龄雄性C57BL/6J小鼠后肢卸载模型
MACF1ΔIDR细胞中IDR缺失经Sanger测序、RT-qPCR和IDR靶向/非IDR靶向抗体免疫印迹验证 MU处理使用桌面随机定位仪3D随机模式0–8 rpm,处理0–24 h,静态对照同条件不旋转 软/硬基质使用4 kPa和50 kPa聚丙烯酰胺凝胶,经sulfo-SANPAH固定0.1 mg/mL大鼠尾I型胶原 骨靶向rAAV9-DSS经关节腔注射10 μL(滴度>10^11 vg/mL),在Day -1、Day 10、Day 20给药 HLU采用尾悬吊法28天,约30°头低倾斜,每组6只小鼠,随机分配
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定MACF1是否发生相分离以及哪个结构域驱动凝聚。
纯化mCherry-MACF1-CT、GAR、IDR及IDR1/2/3重组蛋白,进行浊度实验、DIC成像、FRAP和相图分析;在细胞中使用OptoDroplet系统、1,6-己二醇处理和MACF1ΔIDR细胞验证IDR2的凝聚能力。
验证IDR2驱动的凝聚是否影响成骨输出。
在WT和MACF1ΔIDR细胞中进行成骨诱导,检测ALP染色及Runx2、Col1a1、Alpl、Osx表达;在MU条件下用IDR1/2/3回补并评估成骨恢复。
确定MACF1如何通过IDR2与G3BP1互作并调控应激颗粒组装。
在成骨细胞、骨细胞和软骨细胞中检测MU/Soft/FSS下MACF1与G3BP1共定位和PLA;进行co-IP、分子对接和10 ns分子动力学模拟;构建R5353H和R5370A突变体并进行功能回补。
明确MACF1-IDR是否介导PIEZO1、PXN和CTNNB1进入应激颗粒。
在MU/Soft条件下分离SG核心并进行质谱和KEGG分析;比较WT与MACF1ΔIDR的SG蛋白质组;用免疫荧光、co-IP和PLA检测PIEZO1、PXN、CTNNB1与G3BP1及MACF1的定位和邻近。
确定凝聚体形成本身而非仅蛋白相互作用是否足以支持SG货物招募。
设计IDR2-Mut3(R19K/R32K/F52L)等组合突变体,通过MD模拟筛选保留G3BP1互作的突变体;用PLA、细胞裂解液招募实验、双通道FRAP和免疫荧光检测凝聚体形成及SG定位。
验证SG招募是否保护PIEZO1、PXN和CTNNB1免受泛素-蛋白酶体降解。
在MU条件下进行CHX chase、泛素化IP和MG132处理,检测PIEZO1、PXN、CTNNB1蛋白稳定性;用ISRIB抑制SG组装并检测成骨输出;用IDR2回补检测蛋白恢复。
在体内评估MACF1-IDR-FL或IDR2对机械卸载骨丢失的保护作用。
使用3月龄雄性C57BL/6J小鼠HLU模型,经关节腔注射AAV-DSS-MACF1-IDR-FL/IDR2,检测GFP靶向、骨组织形态、钙黄绿素双标、micro-CT、三点弯曲和机械敏感蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | α-最低必需培养基 | VivaCell | -- |
| 胎牛血清 | Opcel | -- | |
| 成骨诱导 | 抗坏血酸 | Sigma-Aldrich | -- |
| β-甘油磷酸 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 质粒纯化与转染 | 无内毒素质粒小量提取试剂盒I | Omega | -- |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 聚丙烯酰胺凝胶功能化 | 磺基-SANPAH | Sigma-Aldrich | -- |
| 大鼠尾I型胶原 | Corning | -- | |
| RNA提取 | 总RNA提取试剂盒 | Omega | -- |
| cDNA合成 | Evo M-MLV逆转录预混液 | AG | -- |
| RT-qPCR | ChamQ SYBR qPCR预混液 | Vazyme | -- |
| ALP染色 | BCIP/NBT碱性磷酸酶显色试剂盒 | Beyotime | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Solarbio | -- | |
| Immobilon-FL PVDF膜 | Millipore | -- | |
| RUNX2抗体 | CST | 12556 T | |
| 靶向IDR区的MACF1抗体 | Proteintech | 13058-1-AP | |
| 靶向非IDR区的MACF1抗体 | Abcam | ab117418 | |
| COL1A1抗体 | Proteintech | 66761-1-Ig | |
| PIEZO1抗体 | Proteintech | 15939-1-AP | |
| PXN抗体 | Proteintech | 10029-1-Ig | |
| CTNNB1抗体 | Proteintech | 51067-2-AP | |
| G3BP1抗体 | Proteintech | 66486-1-Ig | |
| GFP抗体 | Genuinbiotech | T005 | |
| 泛素抗体 | Proteintech | 10201-2-AP | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| HRP标记二抗 | Proteintech | SA00001-1, SA00001-2 | |
| ECL化学发光底物 | Applygen | -- | |
| 免疫荧光染色 | α-微管蛋白抗体 | Proteintech | 66031-1-Ig |
| 兔抗G3BP1抗体 | Proteintech | 13057-2-AP | |
| HA标签抗体 | Vazyme | RA1004-01 | |
| FITC标记山羊抗小鼠IgG | Proteintech | SA00003-1 | |
| FITC标记山羊抗兔IgG | Proteintech | SA00003-2 | |
| Cy3标记山羊抗小鼠IgG | Proteintech | SA00009-1 | |
| Cy3标记山羊抗兔IgG | Proteintech | SA00009-2 | |
| DAPI | Beyotime | -- | |
| 免疫共沉淀 | Protein A/G磁珠 | Beyotime | -- |
| 活细胞成像 | 无CO2培养基 | Gibco | 18045-088 |
| 应激颗粒抑制 | ISRIB | -- | -- |
| 邻近连接实验 | NaveniFlex细胞红色检测系统 | Navinci | 60025 |
| 小鼠抗MACF1抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-377532 | |
| 泛素化实验 | N-乙基马来酰亚胺 | Sigma-Aldrich | E3876 |
| 蛋白酶体抑制 | MG132 | Sigma-Aldrich | M7449 |
| 骨组织学 | 钙黄绿素 | Sigma-Aldrich | -- |
| AAV浓缩 | 5×慢病毒浓缩试剂 | GeneCarer | GC230100548 |
| 重组蛋白表达 | 异丙基-1-硫代-β-D-半乳糖苷 | Sangon | -- |
| 重组蛋白纯化 | Ni-NTA亲和层析 | Qiagen | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| MACF1-IDR敲除细胞构建 | sgRNA靶向Macf1外显子96-98,双sgRNA切割;电穿孔3×10^5个MC3T3-E1细胞;单细胞稀释后2-4周筛选克隆;PCR和Sanger测序验证 阅读提示:Methods中CRISPR/Cas9-mediated MACF1-IDR knockout小节及Supplementary Information |
| 机械卸载(MU)体外模拟 | 桌面随机定位仪3D随机模式0–8 rpm,37°C、5% CO2;处理0–24 h;静态对照同条件不旋转;培养容器填满培养基并密封 阅读提示:Methods中In vitro simulation of mechanical unloading小节 |
| 软/硬基质培养 | 聚丙烯酰胺凝胶终硬度4 kPa(软)和50 kPa(硬);sulfo-SANPAH UV 365 nm激活10 min;0.1 mg/mL大鼠尾I型胶原37°C过夜 阅读提示:Methods中Polyacrylamide (PA) gels和Functionalization of PA gels with collagen小节 |
| 骨细胞流体剪切应力 | 平行板流动腔宽度1.0 cm、垫片厚度0.127 mm;壁面剪切应力2 Pa处理10 min;流量Q=4.61 mL/min;静态对照0 Pa 阅读提示:Methods中Osteocyte fluid shear stress (FSS) stimulation小节 |
| 小鼠HLU与AAV递送 | 3月龄雄性C57BL/6J小鼠,每组6只,随机分配;尾悬吊28天,约30°头低倾斜;AAV-DSS经关节腔注射10 μL(滴度>10^11 vg/mL),Day -1、Day 10、Day 20给药 阅读提示:Methods中In vivo simulation of mechanical unloading和Generation of bone-targeting rAAV9 vector小节及Fig. 8a |
| 蛋白稳定性与泛素化检测 | CHX 10 μg/mL,在0、4、8和16 h收集;MG132 10 μM处理8 h;泛素化检测在MU 8 h进行;NEM 10 mM新鲜加入 阅读提示:Methods中Cycloheximide (CHX) chase assay和Ubiquitination assays and proteasome dependency小节 |