建立CPPSML嵌合mCRPC模型
获得可在原位免疫完整背景下高效测试联合治疗的mCRPC模型。
将CPPSML基因型mESC(JH61、JH58)显微注射入C57BL/6NTac-Tyrtm1Arte囊胚,植入假孕雌鼠,获得嵌合鼠;经MRI确认前列腺肿瘤后行去势及enzalutamide混饲诱导CRPC。
Effective combinatorial immunotherapy for castration-resistant prostate cancer.
含嵌合小鼠mCRPC模型、体外细胞实验、CyTOF免疫分析、人前列腺活检样本验证、机制通路实验
CPPSML嵌合小鼠mCRPC模型 CPPSML来源前列腺癌细胞系 CRPC肿瘤分离的Gr-MDSCs与CD8+ T细胞 人前列腺癌细针穿刺活检样本
ICB为抗CTLA4(clone 9H10)与抗PD1(clone RMP1-14)联合,200μg/次,每周3次腹腔注射 Cabo 30 mg/kg、BEZ235 45 mg/kg口服,周一至周五每日给药 联合治疗持续4周后终点分析 MRI筛选前列腺肿瘤体积>150mm3且<18周龄的嵌合鼠入组 ADT方案为去势后enzalutamide混饲(50 mg/kg diet)3周
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得可在原位免疫完整背景下高效测试联合治疗的mCRPC模型。
将CPPSML基因型mESC(JH61、JH58)显微注射入C57BL/6NTac-Tyrtm1Arte囊胚,植入假孕雌鼠,获得嵌合鼠;经MRI确认前列腺肿瘤后行去势及enzalutamide混饲诱导CRPC。
比较ICB、靶向药物单药及联合方案对mCRPC原发瘤和转移的疗效。
将MRI确认的mCRPC嵌合鼠随机分组,分别接受靶向药物单药、ICB单药或联合治疗4周,检测前列腺肿瘤重量、淋巴结转移评分和肺微转移数。
评估各治疗对肿瘤浸润免疫细胞组成和功能的影响。
采用CyTOF分析治疗终点肿瘤内免疫细胞,定量Gr-MDSC频率和CD8+/Treg比值;并用抗Gr1中和抗体联合ICB验证MDSC对ICB耐药的作用。
比较Cabo、BEZ和Dasa对MDSCs、CD8+ T细胞和肿瘤细胞的差异作用。
从CRPC肿瘤分离Gr-MDSCs、CD8+ T细胞和GFP+肿瘤细胞,进行WST-1活力检测计算IC50;共培养进行T细胞增殖抑制实验,检测IFN-γ和IL-2分泌。
验证Cabo/BEZ是否通过抑制PI3K信号和调节细胞因子分泌影响MDSCs。
磷酸化RTK抗体阵列和Western blot检测肿瘤信号;共转染活性ERK2和p70S6K rescue MDSC存活;细胞因子阵列和qRT-PCR检测肿瘤及条件培养基中细胞因子和MDSC抑制相关基因。
评估人PCa中Gr-MDSC与CD8+ T细胞的相互关系。
使用32抗体CyTOF panel分析10例初治PCa患者的12份新鲜细针穿刺活检样本,SPADE分析免疫细胞群并分析Gr-MDSC与CD8+ T细胞频率相关性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 小鼠胚胎干细胞培养 | 敲除血清替代物 | Invitrogen | 10828010 |
| 敲除DMEM培养基 | Invitrogen | 10829-018 | |
| Glutamax添加剂 | Invitrogen | 35050079 | |
| 非必需氨基酸 | Invitrogen | 11140050 | |
| 青霉素-链霉素 | Invitrogen | 15140-122 | |
| 胰岛素 | Sigma-Aldrich | 12643 | |
| 白血病抑制因子 | Millipore | ESG1107 | |
| 丝裂原活化抑制剂 | Stemgent | PD0325901 | |
| 糖原合酶激酶抑制剂 | Stemgent | CHIR99021 | |
| 小鼠胚胎干细胞传代 | 0.25%胰蛋白酶-EDTA | Invitrogen | 25200-056 |
| 超排卵处理 | 人绒毛膜促性腺激素 | Sigma-Aldrich | C1063 |
| 囊胚培养 | M16培养基 | Millipore | MR-016-D |
| 药物处理(ADT) | 恩杂鲁胺 | MedKoo Biosciences | 201821 |
| 体内药物治疗 | BEZ235 | Selleck Chemicals | S1009 |
| 卡博替尼 | Selleck Chemicals | S1119 | |
| 达沙替尼 | Selleck Chemicals | S1021 | |
| PI-3065 | MedKoo | 407192 | |
| GSK2636771 | MedKoo | 205844 | |
| 免疫检查点阻断 | 抗PD1抗体(克隆RMP1-14) | BioXcell | BE0146 |
| 抗CTLA4抗体(克隆9H10) | BioXcell | BE0131 | |
| MDSC中和 | 抗Gr1抗体(克隆RB6-8C5) | BioXcell | BE0075 |
| 人前列腺肿瘤单细胞分离 | 人肿瘤解离试剂盒 | Miltenyl Biotec | 130-095-929 |
| CyTOF样本制备 | Fc受体阻断试剂 | Miltenyl Biotec | 130-059-901 |
| CyTOF活死染色 | Cell-ID顺铂 | Fluidigm | 201064 |
| CyTOF核染色 | Cell-ID铱嵌入剂 | Fluidigm | 201192A |
| MDSC分离 | Lympholyte-M细胞分离介质 | Cederlane | CL5031 |
| 小鼠MDSC分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-094-538 | |
| CD8+ T细胞分离 | 小鼠CD8a+ T细胞分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-104-075 |
| 细胞活力检测 | 细胞增殖试剂WST-1 | Sigma-Aldrich | 11644807001 |
| MDSC迁移实验 | 重组小鼠IL-1α | BioLegend | 575002 |
| 重组小鼠IL-1β | BioLegend | 575102 | |
| 重组小鼠IL-1ra | VWR | 10006-448 | |
| 小鼠IL-1ra中和抗体 | R&D Systems | AF-480-NA | |
| ELISA | IFN-γ酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioLegend | 430804 |
| IL-2酶联免疫吸附测定试剂盒 | BioLegend | 431004 | |
| 磷酸化RTK检测 | Proteome Profiler小鼠磷酸化RTK阵列试剂盒 | R&D Systems | ARY014 |
| 细胞因子检测 | Proteome Profiler小鼠XL细胞因子阵列 | R&D Systems | ARY028 |
| 条件培养基细胞因子检测 | Proteome Profiler小鼠细胞因子阵列试剂盒-Panel A | R&D Systems | ARY006 |
| 蛋白转染 | Chariot蛋白递送试剂 | Active Motif | 30025 |
| 重组活性ERK2 | R&D Systems | 1230-KS-010 | |
| 重组活性p70S6K | R&D Systems | 896-KS-010 | |
| 转染效率检测 | β-半乳糖苷酶染色试剂盒 | Clontech | 631780 |
| 条件培养基浓缩 | Amicon Ultra-15超滤离心管(Ultracel-3膜) | Millipore | UFC900324 |
| 支原体检测 | MycoAlert支原体检测试剂盒 | Lonza | -- |
| Western blot | RIPA裂解缓冲液 | Boston BioProducts | -- |
| vinculin抗体 | Millipore | 05-386 | |
| 磷酸化Met抗体 | Cell Signaling Technology | 3077 | |
| 磷酸化VEGFR2抗体 | Cell Signaling Technology | 3770 | |
| 磷酸化Erk1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 4370 | |
| 磷酸化Akt抗体 | Cell Signaling Technology | 4060 | |
| 磷酸化mTOR抗体 | Cell Signaling Technology | 5536 | |
| 磷酸化p70 S6K抗体 | Cell Signaling Technology | 9234 | |
| 磷酸化S6抗体 | Cell Signaling Technology | 4856 | |
| 免疫组化 | CK5抗体 | Covance | PRB-160P |
| CK8抗体 | Covance | MMS-162P | |
| Ki67抗体 | Fisher | RM-9106-S1 | |
| cleaved caspase 3抗体 | Cell Signaling Technology | 9661 | |
| 免疫荧光 | Gr-1抗体 | BioLegend | 108401 |
| 磷酸化S6抗体 | Cell Signaling Technology | 4858 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| CPPSML嵌合mCRPC模型建立与ADT诱导 | mESC克隆(JH61/JH58)基因型;囊胚显微注射细胞数约12个;MRI入组标准>150mm3且<18周龄;去势后enzalutamide 50 mg/kg diet 3周 阅读提示:Methods“Chimera Cohort Development”“Targeted Pathway Inhibitors”及Extended Data Fig. 2b–d |
| 体内联合治疗给药方案 | 各药物剂量:Cabo 30 mg/kg、BEZ235 45 mg/kg、Dasa 30 mg/kg、PI-3065 50 mg/kg、GSK2636771 30 mg/kg,口服周一至周五;SX-682 50 mg/kg每日两次;ICB抗体200μg/次每周3次;治疗4周 阅读提示:Methods“Targeted Pathway Inhibitors”及Fig. 1d–f、Fig. 4a–b图注 |
| 随机分组与盲法 | 随机分组以同笼小鼠接受不同药物;未设盲;各组样本量见图注 阅读提示:Methods“Chimera Cohort Development”及Fig. 1、Fig. 4图注 |
| MDSC与T细胞体外药物敏感性实验 | Cabo 1.5μM、BEZ 0.15μM用于耐药实验;Cabo/ BEZ用于条件培养基预处理浓度为1μM;MDSC与T细胞1:1共培养;CFSE检测72h;部分实验补充10ng/mL GM-CSF 阅读提示:Methods“Cell Isolation and In Vitro Survival and Migration Assay”“T Cell Suppression Assay”及Fig. 2、Fig. 3图注 |
| 人前列腺癌样本CyTOF分析 | 12份细针穿刺样本来自10例初治患者;32抗体CyTOF panel;SPADE分析与线性回归 阅读提示:Methods“CyTOF of Human Specimens and Mouse Tumors”、Fig. 4c–e及Extended Data Table 1b–c |
| 统计设计 | 样本量基于前期研究以80%把握检测效应;两组比较用双尾Student's t检验或Mann-Whitney检验;P<0.05为显著 阅读提示:Methods“Statistical Analysis” |