淋巴毒素β受体信号直接控制气道平滑肌失调和哮喘性肺功能障碍

Lymphotoxin beta receptor signaling directly controls airway smooth muscle deregulation and asthmatic lung dysfunction

作者信息Haruka Miki, William B Kiosses, Mario C Manresa, Rinkesh K Gupta, Gurupreet S Sethi, Rana Herro, Ricardo Da Silva Antunes, Paramita Dutta, Marina Miller, Kai Fung, Ashu Chawla, Katarzyna Dobaczewska, Ferhat Ay, David H Broide, Alexei V Tumanov, Michael Croft
PMID36473503
发布时间2023-04
DOI10.1016/j.jaci.2022.11.016

实验完整度

包含条件性敲除小鼠体内实验、人ASM体外功能实验(收缩、增殖、迁移、信号通路)及转录组数据分析等多个独立证据层级,并明确功能与机制验证。

主要模型

人原代气道平滑肌细胞(健康与哮喘供体) 平滑肌特异性LTβR条件性敲除小鼠(smMHCCreLTβRfl/fl) 平滑肌特异性HVEM条件性敲除小鼠(smMHCCreHVEMfl/fl) 屋尘螨诱导的哮喘小鼠模型

重点核对

LTβR在ASM上的表达是否被有效敲除(流式细胞术验证) 过敏原(HDM)给药方案:200 μg第0天,100 μg第7、14天,之后50 μg每周两次,共6周 LIGHT给药方案:气管内注射10 μg重组LIGHT(第1、2天),第3天分析 AHR测量:不同浓度乙酰甲胆碱诱导的肺阻力,通过FlexiVent系统记录

摘要

背景:气道平滑肌细胞(ASM)的失调是哮喘严重程度的核心。在哮喘患者中,哪些分子主导控制ASM尚不清楚。细胞因子LIGHT(TNFSF14)的高水平与哮喘严重程度和较低的基线FEV1%预测值相关,提示通过其受体的信号可能直接控制ASM功能障碍。目的:确定LIGHT通过LTβR或HVEM的信号是否主导驱动过敏原诱导的ASM高反应性。方法:使用平滑肌细胞中条件性敲除LTβR或HVEM的小鼠,确定它们在体内ASM失调和气道高反应性(AHR)中的作用。使用人ASM研究LTβR诱导的信号。结果:与几种其他与平滑肌失调有关的受体相比,LTβR在正常和哮喘受试者的ASM中强烈表达。相应地,仅在平滑肌细胞中条件性删除LTβR(smMHCCreLTβRfl/fl小鼠)可最小化屋尘螨过敏原在严重哮喘模型中诱导的ASM数量和质量的改变以及AHR。气管内给予LIGHT可独立诱导ASM肥大和体内AHR,这依赖于ASM上的直接LTβR信号。LIGHT在体外促进人ASM的收缩性、肥大和增生。与IL-13、TNF和IL-17的受体(这些受体也涉及平滑肌失调)不同,LIGHT在体外促进ASM中NIK依赖的非经典NF-κB信号,导致F-肌动蛋白持续积累、肌球蛋白轻链激酶磷酸化和收缩活性。结论:LTβR信号直接且主导性地驱动气道平滑肌高反应性,这与重度哮喘气道重塑的发病机制相关。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
LIGHT通过LTβR或HVEM的信号是否直接且主导地驱动过敏原诱导的气道平滑肌功能障碍和气道高反应性?
核心机制
LTβR信号通过NIK依赖的非经典NF-κB通路,导致F-肌动蛋白持续积累、肌球蛋白轻链激酶磷酸化,从而增强ASM收缩活性、肥大和增生。
主要证据
平滑肌细胞特异性LTβR敲除小鼠在过敏原暴露后ASM质量、数量和AHR显著降低;人ASM中LIGHT通过LTβR诱导非经典NF-κB信号,介导收缩、增殖和肥大。
研究意义
该研究首次证明单一细胞因子受体(LTβR)在平滑肌细胞上的直接信号对过敏原诱导的ASM重塑和AHR至关重要,提示靶向LIGHT-LTβR或非经典NF-κB信号可能成为重度哮喘的潜在治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

受体表达分析

确定LTβR和HVEM在人及小鼠ASM上的表达水平及其与哮喘的相关性。

通过分析公开RNA-seq数据和流式细胞术,比较健康与哮喘ASM中LTβR、HVEM及其他细胞因子受体的表达。

2

动物模型建立与表型分析

在体内评估ASM特异性LTβR或HVEM缺失对过敏原诱导的ASM重塑和AHR的影响。

使用smMHCCreLTβRfl/fl和smMHCCreHVEMfl/fl小鼠,经屋尘螨提取物慢性攻击6周,通过共聚焦显微镜、流式细胞术和FlexiVent系统评估ASM质量、数量和AHR。

3

重组LIGHT体内作用验证

确定LIGHT是否通过LTβR直接驱动ASM肥大和AHR。

向对照和条件性敲除小鼠气管内注射重组LIGHT,3天后分析ASM质量和AHR。

4

人ASM体外功能实验

验证LIGHT-LTβR信号对人ASM收缩、增殖和肥大的直接作用。

培养人原代ASM,用LIGHT刺激,进行胶原凝胶收缩实验、BrdU增殖实验和细胞体积测量。

5

信号通路机制研究

阐明LIGHT-LTβR诱导的非经典NF-κB信号在ASM功能障碍中的作用。

通过Western blot、免疫沉淀、共聚焦显微镜和凝胶收缩实验,检测非经典NF-κB(p100/p52)激活,以及下游Rac1/PAK1、MLC磷酸化和F-肌动蛋白聚合。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
C57BL/6J小鼠Jackson Laboratory--
smMHC(Myh11)/Cre/eGFP转基因小鼠Jackson LaboratoryB6.Cg-Tg(Myh11-cre,-EGFP)2Mik/J
屋尘螨提取物Greer Laboratories--
重组LIGHTR&D Systems--
平滑肌细胞培养基ScienCell--
人气道平滑肌细胞ScienCell3400
人气道平滑肌细胞Lonza00194850
NIK抑制剂MedChemExpress--
BAY11-7082MedChemExpress--
NSC 23766Tocris--
ON-TARGETplus siRNADharmacon--
siRNA寡核苷酸双链体Origene--
HiPerFect转染试剂Qiagen--
胶原收缩检测试剂盒Cell Biolabs--
鬼笔环肽-AlexaFluor 568Thermo Fisher Scientific--
Hoechst 33342BD Bioscience--
抗α-平滑肌肌动蛋白抗体Abcam--
抗p-NFκB p65一抗Cell Signaling Technology3033
抗NFκB p65一抗Cell Signaling Technology8242
抗NFκB p100/52一抗Cell Signaling Technology3017
抗PAK1一抗Cell Signaling Technology2602
抗p-MYPT(Thr696)一抗Cell Signaling Technology5163
抗p-MLC2一抗Cell Signaling Technology3672
抗MLC2一抗Cell Signaling Technology8505
抗p-PAK1一抗Santa Cruz135755
抗MYPT一抗Santa Cruz514261
HRP标记的抗小鼠IgG二抗Santa Cruz516102
HRP标记的抗兔IgG二抗Santa Cruz2357
ECL Prime Western印迹检测试剂GE Health Care--
Restore Western印迹剥离缓冲液Thermo Fisher Scientific--
GAPDH抗体Santa Cruz--
Active Rac1检测试剂盒Cell Signaling Technology--
RNeasy试剂盒Qiagen--
SuperScript IV逆转录酶试剂盒Thermo Fisher Scientific--
PowerUp SYBR Green预混液Applied Biosystems--
LightCyclerRoche--
抗小鼠CD45单克隆抗体BD Biosciencesclone:30-F11
抗小鼠CD11b单克隆抗体BD Biosciencesclone:M1/70
抗小鼠CD11c单克隆抗体BD Biosciencesclone:HL3
抗小鼠SiglecF单克隆抗体BD Biosciencesclone:
抗小鼠EpCAM单克隆抗体BioLegendclone:G8.8
抗小鼠CD31单克隆抗体BioLegendclone:390
抗小鼠PDGFRα单克隆抗体BioLegendclone:1A4/asm-1
抗小鼠Mcam单克隆抗体BioLegendclone:ME-9F1
抗小鼠波形蛋白单克隆抗体R&Dclone:280618
抗小鼠αSMA单克隆抗体Novusclone:1A4/asm-1
Fixable Aqua死细胞染色试剂盒Thermo Fisher--
Foxp3转录因子染色缓冲液套装eBioscience--
Fortessa流式细胞仪BD Biosciences--
FlowJo软件FlowJo, LLCversion
抗人LTβR单克隆抗体BioLegendclone:31G4D8
抗人HVEM单克隆抗体BioLegendclone:122
小鼠IL-4 ELISA试剂盒R&D--
小鼠IL-5 ELISA试剂盒R&D--
小鼠IL-13 ELISA试剂盒R&D--
gentleMACS解离器Miltenyi Biotec--
肺解离试剂盒Miltenyi Biotec--
OCT包埋剂----
DAPI----
I型胶原溶液Sigma-Aldrich--
NIK抑制剂MedChemExpress--
BAY11-7082MedChemExpress--
NSC 23766Tocris--
RIPA裂解液----
蛋白酶抑制剂Roche--
WedgeWell 8-16% Tris-甘氨酸梯度凝胶Novex--
硝酸纤维素膜Bio-Rad--
牛血清白蛋白Sigma-Aldrich--
脱脂奶粉R&D--
凝胶成像系统Bio-Rad--
FITC BrdU流式试剂盒BD Bioscience--
蔡司780激光扫描共聚焦显微镜Zeiss--
蔡司880 Airyscan激光扫描共聚焦显微镜Zeiss--
imaris软件Bitplane--
ImageLabBio-Rad Laboratories--
ImageJ软件----
Zen软件----
Image Pro Premier 10Media Cybernetics--
FlexiVent系统SCIREQ Inc--
flexiWare软件V8Scireq--
GAPDH引物----
HVEM引物----
LTβR引物----
人MAP3K14设计引物Bio-Rad--
Prism 8软件GraphPad Prism--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系、年龄、性别:C57BL/6J背景,6-8周龄雌性;smMHCCreLTβRfl/fl和smMHCCreHVEMfl/fl小鼠的构建与基因型确认
阅读提示:Methods - Mice
过敏原诱导哮喘模型
HDM给药方案:200 μg第0天,100 μg第7、14天,之后50 μg每周两次,共4周(总6周);给药途径:鼻内
阅读提示:Methods - Mouse models of airway remodeling and acute airway inflammation
LIGHT处理
重组LIGHT剂量:10 μg/只,气管内注射第1、2天,第3天分析;对照:PBS
阅读提示:Methods - Mouse models of airway remodeling and acute airway inflammation
AHR测量
乙酰甲胆碱剂量梯度;FlexiVent系统测量肺阻力;峰值气道阻力分析
阅读提示:Methods - Airway hyperresponsiveness
ASM形态定量
共聚焦显微镜参数:Zeiss 780/880,40x(1.4na)物镜,0.421 μm步长,2048×2048帧;分析15-20 μm厚肺组织,平均35层;每只小鼠10-15个三级支气管
阅读提示:Methods - Confocal microscopy of lung tissue
人ASM体外实验
ASM来源:ScienCell(cat:3400)、Lonza(cat: 00194850)或尸体肺组织;培养条件:平滑肌细胞培养基,2-4代;刺激浓度:100 ng/ml LIGHT;血清饥饿16小时或7天
阅读提示:Methods - ASM culture and analysis
胶原凝胶收缩实验
细胞密度:0.5-1×10^6细胞/孔;胶原凝胶制备;LIGHT刺激浓度:100 ng/ml;观察时间点:24、48、72小时
阅读提示:Methods - ASM gel contraction assay
信号通路研究
抑制剂浓度:NIK-SMI(25 nM)、BAY11-7082(1 nM)、Rac1抑制剂(10 nM);siRNA敲低LTβR、HVEM、NIK(50 nM);Western blot检测p100/p52、p-MLC等
阅读提示:Methods - ASM intracellular protein analysis, Western Blotting, RT-PCR