多组学鉴定Norrin/β-catenin下游靶点
寻找Norrin/β-catenin信号通路抑制后共同下调的关键下游基因。
对HRECs分别敲低CTNNB1、FZD4、TSPAN12或LRP5后进行bulk RNA-seq,结合WGCNA、KEGG和PPI网络分析鉴定核心下调基因KIF11,并用RT-qPCR和Western blot验证。
KIF11 prevents retinal endothelial ferroptosis in familial exudative vitreoretinopathy by inhibiting phosphorylation-driven PRDX1 phase separation.
包含体外HRECs/HEK293T/HT1080模型、内皮特异性基因敲除小鼠模型及FEVR患者样本,并有功能回补和机制验证。
人视网膜微血管内皮细胞(HRECs) HEK293T细胞与HT1080细胞 内皮细胞特异性Ctnnb1/Kif11条件敲除小鼠 FEVR患者外周血基因组DNA样本
HRECs中CTNNB1、FZD4、TSPAN12或LRP5敲低后KIF11的mRNA和蛋白下调(n=3) Ctnnb1 cKO小鼠经视网膜后眶静脉窦注射KIF11过表达慢病毒(20 μL,1×10^9 TU/mL)后视网膜血管进展部分恢复(n=8) KIF11敲低HRECs中GPX4、xCT、PCBP1、SLC3A2蛋白下调及ACSL4、HO-1上调(n=3) KIF11敲低HRECs中PRDX1 Tyr194磷酸化升高及HMW二聚体增加,PP1(100 μM)或larotinib(100 μM)处理可逆转(n=3) Kif11 cKO和Ctnnb1 cKO小鼠从P2至P6每日腹腔注射Fer-1(30 mg/kg)后P7视网膜血管缺陷部分挽救(n=8)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
寻找Norrin/β-catenin信号通路抑制后共同下调的关键下游基因。
对HRECs分别敲低CTNNB1、FZD4、TSPAN12或LRP5后进行bulk RNA-seq,结合WGCNA、KEGG和PPI网络分析鉴定核心下调基因KIF11,并用RT-qPCR和Western blot验证。
明确Kif11在视网膜内皮细胞亚群及Norrin/β-catenin失活条件下的表达特征。
对P6 WT、Ctnnb1 cKO和Tspan12 KO小鼠视网膜血管细胞进行scRNA-seq,整合公共数据集,分析Kif11在内皮细胞亚群中的表达;并用RT-qPCR和Western blot检测不同发育时间点视网膜KIF11水平。
检验恢复KIF11能否挽救Ctnnb1 cKO小鼠的视网膜血管缺陷。
通过视网膜后眶静脉窦注射KIF11过表达慢病毒,观察P7 Ctnnb1 cKO小鼠视网膜血管进展和血管密度。
确定KIF11缺失对HRECs增殖、死亡及铁死亡相关通路的影响。
用shRNA慢病毒敲低HRECs中KIF11,进行RTCA、EdU、TUNEL、TEM、转录组和蛋白质组分析,检测GPx活性、亚铁离子、MDA、BODIPY、CellROX及铁死亡相关蛋白;并用Fer-1处理验证挽救效应。
探究KIF11是否通过结合PRDX1调控其相分离。
在KIF11-FLAG过表达HRECs中进行免疫沉淀-质谱鉴定结合蛋白,Co-IP验证KIF11-PRDX1互作;免疫荧光观察PRDX1斑点,FRAP和1,6-HD处理验证液-液相分离,非还原SDS-PAGE检测PRDX1二聚体。
验证KIF11通过竞争性结合抑制Src对PRDX1 Tyr194的磷酸化,进而影响PRDX1相分离。
检测KIF11敲低后PRDX1 Tyr194磷酸化水平;过表达Y194Q突变体观察PRDX1斑点和二聚体变化;使用larotinib(100 μM)和PP1(100 μM)抑制磷酸化;miniTurboID邻近标记检测Src-PRDX1互作及KIF11过表达的影响。
验证PRDX1缺失是否模拟KIF11缺失表型,以及CTNNB1缺失是否通过PRDX1磷酸化/相分离诱导铁死亡。
在HRECs中敲低PRDX1或CTNNB1,检测增殖、死亡、自噬和铁死亡指标;用Fer-1处理观察挽救效果;检测CTNNB1敲低后PRDX1磷酸化和相分离变化。
在体内验证内皮细胞Kif11缺失对 retinal 血管发育和铁死亡/自噬信号的影响。
构建Kif11 cKO小鼠,观察P7和P10视网膜血管进展、血管密度、血管渗漏及TEM超微结构;检测肺组织PRDX1 Tyr194磷酸化、自噬和铁死亡相关蛋白。
检验抑制铁死亡或恢复PRDX1功能能否挽救FEVR相关小鼠模型的血管缺陷。
对Kif11 cKO和Ctnnb1 cKO小鼠从P2至P6每日腹腔注射Fer-1;或通过后眶静脉窦注射表达PRDX1-WT或PRDX1-Y194Q的慢病毒,观察P7视网膜血管。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 人视网膜微血管内皮细胞 | Cell-systems | ACBRI-181 |
| 完全经典培养基 | Cell-systems | 4Z0-500 | |
| DMEM培养基 | Gibco | 11995040 | |
| 胎牛血清 | VivaCell | C04001-500 | |
| 青霉素/链霉素 | Thermo Fisher Scientific | 15070063 | |
| 动物实验 | 他莫昔芬 | Topscience | T6906 |
| 铁死亡抑制剂Fer-1 | Med Chem Express | HY-100579 | |
| 细胞处理 | 铁死亡抑制剂Fer-1 | Med Chem Express | HY-100579 |
| Norrin蛋白 | R&D | 3014-NR-025 | |
| 脂质过氧化检测 | 脂质过氧化荧光探针 | Thermo Fisher Scientific | B3939 |
| 细胞死亡检测 | Annexin V | Thermo Fisher Scientific | A35122 |
| 碘化丙啶 | Med Chem Express | HY-D0815 | |
| EdU检测 | EdU成像试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | C10339 |
| TUNEL检测 | TUNEL凋亡检测试剂盒 | YEASEN | 40308ES20 |
| ROS检测 | CellROX深红ROS探针 | Life Technologies | C10422 |
| 亚铁离子检测 | 亚铁离子荧光探针 | DOJINDO | F374 |
| LDH释放检测 | 细胞毒性LDH检测试剂盒 | MedChenExpress | HY-K1090 |
| MDA检测 | 丙二醛检测试剂盒 | Beyotime | S0131S |
| GPx活性检测 | 谷胱甘肽过氧化物酶活性检测试剂盒 | Beyotime | S0055S |
| 质粒转染 | 脂质体3000转染试剂 | Invitrogen | L3000015 |
| 相分离破坏 | 1,6-己二醇 | Sigma | 240117 |
| 核染色 | Hoechst核染料 | Beyotime | C1027 |
| RNA提取 | RNA提取试剂 | Transgen Biotech | ET101-01-V2 |
| RT-PCR | 一步法RT-PCR预混液 | TransGen Biotech | AT411-02 |
| RT-qPCR | qPCR预混液 | TransGen Biotech | AQ142-21 |
| Western blot | RIPA裂解液 | Solarbio | R0010 |
| 上样缓冲液 | Solarbio | P1040 | |
| 化学发光底物 | Thermo Fisher Scientific | 34075 | |
| 免疫荧光 | Isolectin GS-IB4 | Invitrogen | I21413 |
| Isolectin GS-IB4 | Invitrogen | I21411 | |
| Alexa Fluor 488链霉亲和素 | Thermo Fisher Scientific | S11223 | |
| 水性封片剂 | Merck | F4680 | |
| 血管渗漏检测 | Sulfo-NHS-生物素 | Thermo Fisher Scientific | 21217 |
| 单细胞测序 | CD31磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-097-418 |
| CD11b磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-126-725 | |
| 单细胞3'文库构建试剂盒 | 10× Genomics | -- | |
| 靶向测序 | DNA提取试剂盒 | Qiagen | -- |
| 捕获试剂盒 | MyGenostics | OT004/OT021A | |
| Co-IP | 抗FLAG磁珠 | Med Chem Express | HY-K0207 |
| 邻近标记 | 链霉亲和素磁珠 | Med Chem Express | HY-K0208 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠模型构建与诱导 | Kif11-flox(S-CKO-03251, Cyagen)和Ctnnb1-flox(VSM4101958, Viewsolid)品系;Pdgfb-iCre-ER诱导;他莫昔芬50 μg每日腹腔注射,P1起连续3天 阅读提示:Methods-Mice小节 |
| 慢病毒后眶静脉窦注射 | 慢病毒20 μL,滴度1×10^9 TU/mL;P1小鼠异氟烷麻醉;31 G针约40°角;GFP荧光判断转导效率 阅读提示:Methods-Mice小节及Supplementary Fig. 3j |
| Fer-1体内处理 | Fer-1 30 mg/kg,每日腹腔注射,P2至P6;对照DMSO;P7检测视网膜血管 阅读提示:Methods-Mice小节及Fig. 9a |
| HRECs培养与敲低 | HRECs(ACBRI-181)培养于完全经典培养基(4Z0-500);shRNA慢病毒来自Genechem;shRNA序列见Supplementary Table 4 阅读提示:Methods-Cell culture小节及Supplementary Table 4 |
| 铁死亡/相分离抑制剂处理 | Fer-1 4 μM(慢病毒感染后24 h加入);larotinib 100 μM;PP1 100 μM;1,6-HD 10% 阅读提示:Methods-Cell culture、FRAP及相应Figure legends |
| scRNA-seq样本与数据分析 | P6 WT、Ctnnb1 cKO、Tspan12 KO每窝5只小鼠视网膜;CD31/CD11b磁珠富集;10× Genomics 3’ v3.1建库;公共数据集GSE175895、GSE213887、GSE125708;质控标准(<250基因、<500 UMI、>15%线粒体reads剔除) 阅读提示:Methods-Retinal vascular cell isolation and Single-cell RNA-sequencing小节 |
| 患者样本与基因测序 | FEVR患者6例(5男1女,4–53月龄);诊断标准;QIAamp DNA Mini Kit提取外周血gDNA;Illumina Nextseq 500测序;Sanger验证引物见Supplementary Table 3 阅读提示:Methods-Patient recruitment and clinical evaluation、Targeted gene sequencing and Sanger sequencing小节 |