前列腺癌模型对BH3模拟物的敏感性筛选
确定哪些前列腺癌模型对BCL-XL、BCL-2或MCL-1抑制敏感。
在PDX来源2D/3D培养、患者来源类器官和细胞系中,用navitoclax、venetoclax或S63845进行剂量范围处理,评估细胞回收率和IC50。
BH3 mimetics targeting BCL-XL have efficacy in solid tumors with RB1 loss and replication stress.
包含患者来源3D类器官、多种细胞系、异种移植瘤模型及体内药物联合验证,并有siRNA/免疫印迹机制验证。
前列腺癌患者来源异种移植(PDX)来源的3D球体及类器官(BIDPC1、BIDPC5等) 前列腺癌细胞系LNCaP LNCaP和ZR75皮下异种移植瘤小鼠模型
BIDPC1和BIDPC5 PDX来源3D球体经navitoclax处理4天后的细胞回收率及IC50值(BIDPC5为100 nM,BIDPC1为125 nM) LNCaP细胞经RB1 siRNA或shRNA敲低后navitoclax诱导的caspase活性和凋亡标志物(cleaved PARP、cleaved caspase 3) LNCaP异种移植瘤随机分组后raltitrexed(50 mg/kg q4天)和navitoclax(50 mg/kg q2天)联合治疗的肿瘤体积变化及生存期 ZR75异种移植瘤随机分组后capecitabine(200 mg/kg每日)和navitoclax(50 mg/kg q2天)联合治疗的肿瘤体积变化及生存期 TCGA前列腺癌数据库RB1拷贝数与ATR复制应激反应基因集富集分析
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定哪些前列腺癌模型对BCL-XL、BCL-2或MCL-1抑制敏感。
在PDX来源2D/3D培养、患者来源类器官和细胞系中,用navitoclax、venetoclax或S63845进行剂量范围处理,评估细胞回收率和IC50。
验证RB1缺失是否增加对BCL-XL的依赖。
对RB1缺失和RB1完整PDX来源类器官进行navitoclax处理,检测caspase活性和细胞活力;在LNCaP细胞中用siRNA或shRNA敲低RB1,检测navitoclax诱导的凋亡;利用GDSC数据库分析RB1改变与BCL-XL抑制剂IC50的关系。
筛选可增敏前列腺癌细胞对navitoclax响应的小分子药物。
LNCaP细胞在navitoclax或DMSO存在下培养2天,加入ICCB-Longwood Mechanism of Action文库(约1245种药物,4个浓度,双复孔)处理2天,Cell Titer-Glo评估细胞活力。
确认胸苷酸合成酶抑制剂通过破坏脱氧核苷酸池引起复制应激和DNA损伤反应。
LNCaP细胞用nolatrexed或raltitrexed处理,通过DNA纤维实验检测复制叉速度,通过COMET实验检测DNA损伤,通过免疫印迹检测RPA32和H2A.X磷酸化,并通过胸苷补充验证特异性。
验证胸苷酸合成酶抑制剂或其他复制应激诱导剂是否增敏BCL-XL抑制诱导的凋亡。
LNCaP及多种细胞系(ZR75、A549、A375P、RKO)用nolatrexed、raltitrexed、5-FU或BML-277处理,随后加入navitoclax、AZD4320、PZ18753B或DT2216,检测caspase 3/7活性和凋亡标志物。
确定复制应激增敏BCL-XL抑制是否由Survivin下调介导,并验证TP53/CDKN1A依赖性。
用siRNA敲低BAX、BAK、PUMA、BIRC5、TP53或CDKN1A,检测nolatrexed+navitoclax诱导的凋亡;用YM-155或nutlin-3a下调Survivin或激活p53,检测对navitoclax和AZD4320的增敏;免疫印迹检测p53、p21、Survivin、MCL-1等蛋白。
评估BCL-XL抑制剂与胸苷酸合成酶抑制剂联合在体内的疗效。
在免疫缺陷小鼠中建立LNCaP和ZR75皮下异种移植瘤,随机分组给予vehicle、raltitrexed、navitoclax或联合治疗,监测肿瘤体积和生存期,并通过免疫印迹检测肿瘤凋亡标志物和Survivin表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 含L-谷氨酰胺的RPMI 1640培养基 | Corning | MT10040CV |
| 胎牛血清 | Gibco | A3160401 | |
| 支原体检测 | MycoAlert支原体检测试剂盒 | Lonza | LT07-218 |
| 细胞活力检测 | Cell Titer-Glo 3D细胞活力检测试剂盒 | Promega | -- |
| Cell Titer-Glo细胞活力检测试剂盒 | Promega | -- | |
| 免疫印迹 | RIPA裂解液 | Fisher Scientific | PI89900 |
| 蛋白酶抑制剂 | Fisher Scientific | PI78437 | |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | Fisher Scientific | PI78426 | |
| 抗RPA32/RPA2(磷酸化S33)抗体 | Abcam | ab211877 | |
| 抗H2A.X磷酸化Ser139抗体(克隆20E3) | Cell Signaling Technology | 9718 | |
| 抗p53抗体 | Cell Signaling Technology | 9282 | |
| 抗p21抗体(克隆EPR3993) | Abcam | ab109199 | |
| 抗Survivin抗体 | Cell Signaling Technology | 2808 | |
| 抗RB1抗体(克隆4H1) | Cell Signaling Technology | 9309 | |
| 抗Bad抗体 | Cell Signaling Technology | 9239 | |
| 抗BAK抗体 | Cell Signaling Technology | 12105 | |
| 抗BAX抗体 | Cell Signaling Technology | 5023 | |
| 抗β-actin抗体 | Abcam | ab6276 | |
| 抗BCL2抗体 | Cell Signaling Technology | 4223 | |
| 抗BCL-XL抗体 | Cell Signaling Technology | 2764 | |
| 抗BIM抗体 | Cell Signaling Technology | 2933 | |
| 抗cleaved caspase 3抗体 | Cell Signaling Technology | 9664 | |
| 抗MARCH5抗体 | EMD Millipore | 06-1036 | |
| 抗MCL1抗体 | Cell Signaling Technology | 5453 | |
| 抗NOXA抗体 | Abcam | ab13654 | |
| 抗PARP抗体 | Cell Signaling Technology | 9532 | |
| 抗磷酸化eIF2α Ser51抗体 | Cell Signaling Technology | 9721 | |
| 抗PUMA抗体 | Cell Signaling Technology | 12450 | |
| 抗vinculin抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-73614 | |
| 抗兔二抗 | Promega | W401B | |
| 抗小鼠二抗 | Promega | W402B | |
| 彗星实验 | 彗星实验高通量试剂盒 | Trevigen, R&D | 4252-040-K |
| SyBr Gold核酸染料 | Thermo Fisher | S11494 | |
| DNA纤维实验 | CIdU | Sigma | C6891 |
| IdU | Sigma | 17125 | |
| 抗CIdU抗体 | Abcam | ab6326 | |
| 抗IdU抗体 | BD | 347580 | |
| siRNA转染 | SignalSilence Survivin siRNA II | Cell Signaling Technologies | 6546 |
| 靶向RB1的siRNA | Horizon Discovery Biosciences Ltd/Dharmacon | L-003296-02-0005 | |
| 靶向BAK的siRNA | Horizon Discovery Biosciences Ltd/Dharmacon | L-003305-00-0005 | |
| 靶向BAX的siRNA | Horizon Discovery Biosciences Ltd/Dharmacon | L-003308-01-0005 | |
| 靶向PUMA的siRNA | Horizon Discovery Biosciences Ltd/Dharmacon | L-004380-00-0005 | |
| 靶向TP53的siRNA | Horizon Discovery Biosciences Ltd/Dharmacon | E-003329-00-0005 | |
| 靶向CDKN1A的siRNA | Horizon Discovery Biosciences Ltd/Dharmacon | L003471-00-0005 | |
| 类器官培养 | Accumax细胞解离液 | ThermoFisher | -- |
| 基质胶(生长因子减少型) | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| BH3模拟物敏感性筛选 | 细胞模型来源及代数、navitoclax/venetoclax/S63845浓度范围、处理时间(4天)、技术重复和生物学重复数 阅读提示:Methods中PCa in vitro models和Cell lines and RNAi小节;Fig. 1a和Fig. 1b图注 |
| RB1缺失与BCL-XL敏感性验证 | RB1缺失PDX模型鉴定(IHC H-score)、navitoclax处理浓度和时间、siRNA/shRNA敲低效率验证 阅读提示:Results中Tumors with loss of RB1 activity have increased dependency on BCL-XL小节;Fig. 2图注;Supplementary Fig. S1b |
| 药物增敏筛选 | ICCB-L MoA文库版本(1245化合物)、navitoclax浓度(500 nM)、化合物浓度数(4个)、筛选终点(Cell Titer-Glo)及z-score阈值 阅读提示:Methods中Mechanism of Action library drug screening小节;Fig. 3a图注 |
| 复制应激和DNA损伤检测 | 胸苷酸合成酶抑制剂浓度(nolatrexed 2或4 μM,raltitrexed 1 μM)、处理时间(16-48小时)、DNA纤维实验脉冲标记浓度和时间、COMET实验电泳条件 阅读提示:Methods中Comet assay和DNA fiber spreading小节;Fig. 4b和Supplementary Fig. S5 |
| 体内联合治疗实验 | 小鼠品系和周龄、肿瘤接种细胞数、随机化时肿瘤体积、药物剂量和给药频率(raltitrexed 50 mg/kg q4天,navitoclax 50 mg/kg q2天,capecitabine 200 mg/kg每日)、给药途径和持续时间、每组动物数 阅读提示:Methods中Animal models小节;Fig. 7a和Fig. 7g图注 |
| Survivin下调机制验证 | siRNA敲低TP53或CDKN1A的效率、5-FU处理浓度和时间、免疫印迹抗体稀释比例、DREAM复合体相关验证条件 阅读提示:Results中Decreased Survivin is dependent on p53 activation小节;Fig. 6图注 |