IAV感染后肺泡巨噬细胞动态的单细胞转录组分析
解析IAV感染后肺泡CD11c+细胞的组成、亚群动态和转录特征。
在IAV感染后多个时间点流式分选BALF CD11c+细胞进行scRNA-seq,鉴定TR-AM、BMDM1、BMDM2等8个转录簇,分析动力学和基因表达。
Alveolar macrophage-expressed Plet1 is a driver of lung epithelial repair after viral pneumonia.
包含scRNA-seq、BMDM/TR-AM过继转移、条件性基因敲除小鼠、肺类器官及人源样本验证等多层级证据,并进行功能与机制验证。
IAV感染的C57BL/6小鼠 Ccr2-/-小鼠过继转移模型 Cx3cr1iCre-Plet1flx/flx条件性敲除小鼠 支气管肺泡肺类器官(BALO)
IAV毒株PR8(A/PR/8/1934(H1N1))感染剂量2.5-5×10^2 pfu/ml,气管内接种 BMDM1(CD40hiCD206lo)和BMDM2(CD40loCD206hi)流式分选纯度≥95% 过继转移:50,000个细胞于D3 p.i.气管内转移至Ccr2-/-小鼠 重组Plet1治疗:5 μg于D3 p.i.气管内给药 条件性敲除:他莫昔芬饲料(0.4 g/kg)预处理Cx3cr1iCre-Plet1flx/flx小鼠
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
解析IAV感染后肺泡CD11c+细胞的组成、亚群动态和转录特征。
在IAV感染后多个时间点流式分选BALF CD11c+细胞进行scRNA-seq,鉴定TR-AM、BMDM1、BMDM2等8个转录簇,分析动力学和基因表达。
建立BMDM亚群分选策略并验证其炎症 vs 再生表型。
用CD40和CD206流式分选BMDM1/2,进行cDNA微阵列和qPCR验证表型,并体外共培养AEC和BALO检测凋亡、增殖和类器官生长。
验证BMDM2在体内是否减轻上皮损伤并促进修复。
将D7 BMDM1或D21 BMDM2气管内转移至IAV感染的Ccr2-/-小鼠,在D7 p.i.检测AEC凋亡、AEC II增殖和肺泡屏障通透性。
确定Plet1是否为再生型巨噬细胞的关键效应分子及其释放条件。
通过微阵列、scRNA-seq、qPCR和流式检测Plet1表达,ELISA检测BALF可溶性Plet1,并用IAV感染AEC条件培养基刺激TR-AM检测Plet1释放。
验证Plet1对上皮增殖和屏障修复的必要性。
在BALO共培养中加入抗Plet1中和抗体,使用Plet1-/-或Cx3cr1iCre-Plet1flx/flx来源BMDM2,检测类器官生长、AEC凋亡、紧密连接基因和屏障功能。
鉴定Plet1促进AEC增殖和屏障保护的信号机制。
用rPlet1处理AEC进行肽基激酶活性谱分析、Western blot检测c-Raf/ERK磷酸化,并用MEK抑制剂U0126和Src激活剂干预增殖及紧密连接基因表达。
评估外源性rPlet1对病毒性肺损伤的治疗潜力及人源相关性。
在IAV感染D3 p.i.气管内给予rPlet1,检测D7 p.i.肺组织炎症、AEC凋亡、紧密连接基因、屏障功能和AEC II增殖,并进行生存分析;同时检测IAV-ARDS患者BALF中PLET1水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 重组小鼠Plet1 | CUSABIO | -- |
| Plet1中和 | 抗Plet1抗体 | R&D Systems | -- |
| 细胞培养 | 基质胶 | Corning | -- |
| 增殖抑制 | U0126 | Promega | #V1121 |
| Src激活 | Src激活剂 | Santa Cruz Biotechnology | #sc-3052 |
| 流式分析 | Annexin V(Alexa Fluor 647,克隆640907) | Invitrogen | A23204 |
| Ki67(FITC,克隆16A8) | BioLegend | 652409 | |
| CD326(EpCam)(APC-Cy7,克隆G8.8) | BioLegend | 118218 | |
| CD206(APC,克隆C068C2) | BioLegend | 141707 | |
| CD40(Pe-Cy5,克隆3/23) | BioLegend | 124617 | |
| Western blot | c-Raf抗体(#9422) | Cell Signaling Technology | 9422 |
| p44/42 MAPK(Erk1/2)抗体(#4695) | Cell Signaling Technology | 4695 | |
| 磷酸化p44/42 MAPK(Erk1/2)抗体(#4370) | Cell Signaling Technology | 4370 | |
| 磷酸化c-Raf抗体(#9427) | Cell Signaling Technology | 9427 | |
| ELISA | 小鼠PLET1 ELISA | Antibody research corporation | -- |
| 人PLET1 ELISA | MyBioSource | -- | |
| RNA提取 | RNeasy试剂盒 | QIAGEN | -- |
| qPCR | SYBR Green I | Invitrogen | -- |
| 他莫昔芬给药 | 他莫昔芬饲料 | Taconic Biosciences | -- |
| 组织消化 | 中性蛋白酶 | BD Biosciences | -- |
| DNA酶 | Serva | -- | |
| 屏障渗漏检测 | FITC标记白蛋白 | Sigma-Aldrich | -- |
| 蛋白浓度测定 | Quick Start Bradford蛋白测定试剂盒2 | Bio-Rad | #5000202 |
| 激酶活性检测 | PamStation12平台 | Pamgene | -- |
| 流式细胞术 | BD LSRFortessa流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 细胞分选 | BD AriaIII | BD Biosciences | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| IAV感染模型 | 病毒株PR8(A/PR/8/1934(H1N1))、剂量2.5-5×10^2 pfu/ml、气管内接种体积70 μl、小鼠年龄10-14周 阅读提示:Methods 'In vivo infection and treatment protocols' |
| BMDM亚群分选与过继转移 | BMDM1于D7 p.i.分选、BMDM2于D21 p.i.分选、纯度≥95%、每只受体转移50,000个细胞于D3 p.i.气管内 阅读提示:Methods 'In vivo infection and treatment protocols'及Results对应段落 |
| 条件性基因敲除 | Cx3cr1iCre-Plet1flx/flx小鼠他莫昔芬饲料0.4 g/kg预处理时间(文中未明确说明具体给药时长) 阅读提示:Methods 'Generation of Plet1 transgenic mice' |
| 重组Plet1治疗 | rPlet1剂量5 μg、于D3 p.i.气管内给药、溶剂PBS-/- 阅读提示:Methods 'In vivo infection and treatment protocols'及Fig. 7d |
| BALO共培养 | BMDM2数量4×10^3、BMDM1/2数量3×10^5、抗Plet1抗体20 ng/ml、培养7-21天 阅读提示:Methods 'Lung organoid experiments' |
| AEC体外刺激 | rPlet1浓度20-40 ng/ml、处理12 h、MEK抑制剂U0126 10 μM、Src激活剂10 μM 阅读提示:Methods 'AEC in vitro assays' |