建立ICH小鼠模型
通过胶原酶注射诱导脑出血,模拟人类ICH病理状态。
对7-9周龄雄性C57BL/6J小鼠进行立体定位注射0.4单位胶原酶AOF型至左侧纹状体(前囟左2mm、深3.5mm)。
Early-phase administration of human amnion-derived stem cells ameliorates neurobehavioral deficits of intracerebral hemorrhage by suppressing local inflammation and apoptosis
包含体内疾病模型、行为学测试、免疫染色、流式细胞术、Western blotting及TNFα救援实验等多个独立证据层级,并有明确功能验证和机制验证。
胶原酶诱导的脑出血小鼠模型(C57BL/6J小鼠) hAMSCs hADSCs
hAMSC剂量:1.0×10^5 cells/50 μl(高剂量)和2.5×10^4 cells/50 μl(低剂量) hADSC剂量:1.0×10^6 cells/100 μl 给药时间:ICH诱导后24小时(D1)或72小时(D3) 神经行为测试起始时间:ICH后第29天
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过胶原酶注射诱导脑出血,模拟人类ICH病理状态。
对7-9周龄雄性C57BL/6J小鼠进行立体定位注射0.4单位胶原酶AOF型至左侧纹状体(前囟左2mm、深3.5mm)。
比较不同剂量hAMSCs与hADSCs对ICH小鼠神经行为的影响,确定有效剂量。
ICH小鼠随机分为5组,分别接受高剂量hAMSCs(1.0×10^5 cells/50μl)、低剂量hAMSCs(2.5×10^4 cells/50μl)、hADSCs(1.0×10^6 cells/100μl)、载体对照或假手术,于ICH后24小时静脉注射,随后进行神经行为测试。
比较ICH后第1天与第3天给药hAMSCs的疗效差异。
ICH小鼠随机分为4组,分别于ICH后24小时(D1)或72小时(D3)静脉注射hAMSCs(1.0×10^5 cells/50μl)、载体对照或假手术,随后进行神经行为测试。
验证静脉注射的hAMSCs能否穿过血脑屏障到达ICH病灶,并观察其与巨噬细胞/小胶质细胞的共定位。
使用抗人Ku80抗体(STEM101)和抗Iba1抗体进行免疫染色,观察ICH病灶中hAMSCs的分布及其与巨噬细胞/小胶质细胞的关系。
评估hAMSC治疗对ICH病灶中CD11b+CD45+细胞及其亚群(Ly6C+、Ly6G+)的影响。
通过流式细胞术分析ICH病灶和脾脏中CD11b、CD45、Ly6C、Ly6G的表达。
检测hAMSC治疗对ICH病灶中细胞凋亡的影响。
通过TUNEL染色检测ICH病灶中的凋亡细胞。
检测hAMSC治疗对ICH病灶中炎症相关蛋白(iNOS、TNFα、Arginase1等)表达的影响。
通过Western blotting检测脑组织中iNOS、TNFα、Arginase1等蛋白水平。
验证hAMSC抑制凋亡的作用是否由TNFα介导。
在ICH小鼠中同时给予hAMSCs和TNFα,比较TUNEL阳性细胞数量。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | α-MEM培养基 | Invitrogen | -- |
| NeoSERA血小板裂解物 | Japan Biomedical Co., Ltd | -- | |
| Liberase消化酶 | -- | -- | |
| 细胞冻存 | STEM-CELLBANKER冻存液 | Takara Bio | -- |
| ICH诱导 | 胶原酶AOF型A | Worthington | -- |
| Western blotting | RIPA裂解液 | ATTO | WSE-7420 |
| EzBlock Chemi封闭液 | ATTO | AE-1475 | |
| Ez WestLumi plus发光液 | ATTO | WSE-7120L | |
| Luminograph1成像仪 | ATTO | WSE-6100 | |
| 免疫染色 | 抗Iba1抗体 | abcam | ab178847 |
| 抗人KU80抗体 | Takara Bio | STEM101 | |
| Alexa 488标记的抗兔二抗 | CST | -- | |
| Alexa 555标记的抗小鼠二抗 | CST | -- | |
| DAB过氧化物酶底物试剂盒 | Vector | SK-4100 | |
| TUNEL染色 | 原位细胞死亡检测试剂盒POD | Sigma-Aldrich | -- |
| DAB过氧化物酶底物试剂盒 | Vector | -- | |
| 流式细胞术 | Percoll分离液 | GE Healthcare | -- |
| Histopaque分离液 | Sigma | -- | |
| PerCP-Cy5.5标记的抗小鼠CD11b单克隆抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| PE-Cy7标记的抗小鼠CD45单克隆抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| APC标记的抗小鼠Ly-6C单克隆抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| BV421标记的抗小鼠Ly-6G单克隆抗体 | BD Horizon | -- | |
| LSRFortessaX-20流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| Western blotting | 精氨酸酶1抗体 | CST | 93668 |
| iNOS抗体 | CST | 13120 | |
| TNFα抗体 | Santa Cruz | SC-52746 | |
| cleaved caspase 3抗体 | Santa Cruz | SC-56053 | |
| 磷酸化Akt抗体 | CST | 4060 | |
| p38 MARK抗体 | CST | 9212 | |
| 磷酸化NF-κB抗体 | CST | 3039 | |
| NF-κB抗体 | CST | 8242 | |
| 磷酸化STAT3 (Tyr705)抗体 | CST | 9145 | |
| 磷酸化STAT3 (Ser727)抗体 | CST | 9134 | |
| STAT3抗体 | CST | 30835 | |
| pAkt XP抗体 | CST | 4060 | |
| Akt抗体 | CST | 4685 | |
| β-actin抗体 | Sigma | A5441 | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG(H+L)二抗 | Thermo Scientific | 32460 | |
| HRP标记的山羊抗小鼠IgG(H+L)二抗 | Thermo Scientific | 32430 | |
| 神经行为测试 | Be Chase视频追踪系统 | ISONIX | -- |
| 免疫染色 | 低温恒温器 | Leica Biosystems | CM1950 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞制备 | hAMSCs和hADSCs的分离培养条件:hAMSCs使用胶原酶/分散酶消化,培养于含10%牛血小板裂解物(NeoSERA)的α-MEM;hADSCs使用liberase消化,冻存液为STEM-CELLBANKER。 阅读提示:Methods: Cell preparation of hAMSCs and hADSCs |
| ICH模型诱导 | 小鼠品系及性别:C57BL/6J雄性,7-9周龄;胶原酶注射量:0.4单位;注射坐标:前囟左2mm、深3.5mm。 阅读提示:Methods: Mice and ICH induction |
| hAMSC给药 | 剂量:高剂量1.0×10^5 cells/50 μl,低剂量2.5×10^4 cells/50 μl;时间:ICH后24小时(D1)或72小时(D3);途径:静脉注射。 阅读提示:Methods: Administration of hAMSC or hADSC to ICH-bearing mice |
| 神经行为测试 | 测试起始时间:ICH后第29天;具体测试项目:开放空间游泳、水迷宫、被动回避。 阅读提示:Methods: Neurobehavioral tests |