体外验证FUT8抑制剂对CD4+ T细胞核心岩藻糖基化及细胞因子的影响
验证FUT8抑制剂是否能降低T细胞核心岩藻糖基化并抑制炎症细胞因子产生。
用不同浓度FUT8抑制剂处理小鼠脾脏CD4+ T细胞,通过流式细胞术检测LCA结合评估核心岩藻糖基化,通过qPCR检测细胞因子基因表达,并评估细胞活力。
Suppressing α-1,6-Fucosyltransferase With a Novel Small Molecule Inhibitor Ameliorates Inflammation in Murine T-Cell-Mediated Colitis Models
包含体外CD4+ T细胞实验、两种小鼠结肠炎模型、条件性敲除小鼠及过继转移模型,并进行了功能与机制验证。
TNBS诱导的小鼠结肠炎模型 naive CD4+ T细胞过继转移至Rag2−/−小鼠的慢性结肠炎模型 小鼠脾脏CD4+ T细胞体外培养 LckcreFut8fl/fl条件性敲除小鼠
FUT8抑制剂口服剂量0.5 mg/kg,每日一次 TNBS诱导结肠炎:2.5% TNBS皮肤致敏,7天后2% TNBS直肠内给药 过继转移模型:转移5×10^5 naive CD4+ T细胞至Rag2−/−小鼠,16天后给药 体外实验:FUT8抑制剂浓度0、0.1、0.2、0.5 μM,处理48小时(或3小时qPCR) 流式细胞术检测LCA结合、细胞因子产生及细胞分化
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证FUT8抑制剂是否能降低T细胞核心岩藻糖基化并抑制炎症细胞因子产生。
用不同浓度FUT8抑制剂处理小鼠脾脏CD4+ T细胞,通过流式细胞术检测LCA结合评估核心岩藻糖基化,通过qPCR检测细胞因子基因表达,并评估细胞活力。
验证口服FUT8抑制剂是否能改善TNBS诱导的小鼠结肠炎。
使用TNBS诱导结肠炎模型,口服给予FUT8抑制剂,监测体重、结肠长度、组织学炎症评分,并通过流式细胞术分析结肠固有层细胞因子产生T细胞和核心岩藻糖基化。
验证FUT8抑制剂是否能改善T细胞依赖的慢性结肠炎。
将naive CD4+ T细胞过继转移至Rag2−/−小鼠,16天后给予FUT8抑制剂,评估体重、结肠长度、组织学炎症和结肠固有层T细胞数量。
验证FUT8抑制剂的改善作用是否直接通过T细胞中的FUT8抑制介导。
在LckcreFut8fl/fl小鼠和Fut8fl/fl同窝对照中诱导TNBS结肠炎,并给予FUT8抑制剂,评估疾病严重程度和细胞因子表达。
探究FUT8抑制剂抑制T细胞活化的分子机制。
用FUT8抑制剂处理活化的CD4+ T细胞,通过Western blot检测p38、JNK、ERK磷酸化;在Th1、Th2、Th17极化条件下培养naive CD4+ T细胞,流式细胞术检测分化比例。
评估FUT8抑制剂口服给药的安全性。
野生型小鼠连续3天口服FUT8抑制剂,监测体重、肝脾重量、血清肝肾功能标志物、肝脏和结肠组织学、黏液层厚度及脾细胞细胞因子和Muc2表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 初始CD4+ T细胞分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-104-453 |
| T细胞刺激 | 抗小鼠CD3ε抗体 | BD Biosciences | 553057 |
| 抗小鼠CD28抗体 | BD Biosciences | 553294 | |
| Th1极化 | 抗小鼠IFN-γ抗体 | eBioscience | 17-7311-82 |
| Th2极化 | 抗小鼠IL4抗体 | eBioscience | 16-7041-85 |
| Th17极化 | 抗小鼠IL2抗体 | R&D Systems | MAB402 |
| Th1极化 | 重组小鼠IL12 | Peprotech | 210-12-10UG |
| Th2极化 | 重组小鼠IL4 | Peprotech | 214-14-20UG |
| Th17极化 | 重组人TGF-β1 | Peprotech | 100-21-10UG |
| 流式分析 | CD4磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-117-043 |
| 佛波醇肉豆蔻酸乙酸酯 | Sigma-Aldrich | P8139 | |
| 离子霉素 | Sigma-Aldrich | I9657 | |
| GolgiStop | BD Biosciences | 554715 | |
| 可固定活力染料780 | BD Biosciences | 565388 | |
| 抗CD4抗体 | BioLegend | 100434 | |
| 抗IFN-γ抗体 | BioLegend | 505806 | |
| 抗IL2抗体 | BioLegend | 503809 | |
| 抗IL4抗体 | BioLegend | 504117 | |
| 抗IL13抗体 | BioLegend | 159403 | |
| 抗IL17A抗体 | BioLegend | 506917 | |
| 抗IL10抗体 | BioLegend | 505035 | |
| LCA | Vector Laboratories | FL 1041-5 | |
| Cytofix/Cytoperm试剂盒Plus | BD Biosciences | 554715 | |
| RNA提取 | RNeasyMini试剂盒 | Qiagen | 74104 |
| RT-qPCR | ReverTra Ace qPCR RT Master Mix | Toyobo | FSQ-201 |
| TaqMan基因表达检测 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| THUNDERBIRD探针qPCR混合液 | Toyobo | QPS-101 | |
| Western blot | 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 | Nacalai Tesque | 03969-21, 07575-51 |
| Bullet Blocking One | Nacalai Tesque | 03953-95 | |
| Can Get Signal免疫反应增强液1 | Toyobo | NKB-101 | |
| 抗磷酸化p38抗体 | Cell Signaling Technology | 9211 | |
| 抗p38抗体 | Cell Signaling Technology | 9212 | |
| 抗磷酸化JNK抗体 | Cell Signaling Technology | 9251 | |
| 抗JNK抗体 | Cell Signaling Technology | 9252 | |
| 抗磷酸化ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 4370 | |
| 抗ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 4695 | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | 4967 | |
| SuperSignal West Pico PLUS化学发光底物 | Thermo Fisher Scientific | 34580 | |
| 动物实验 | 灌胃管 | Fuchigami | No.4202 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| TNBS诱导结肠炎模型 | 小鼠品系、年龄、性别;TNBS浓度和给药体积;致敏和激发间隔;FUT8抑制剂剂量、给药途径和持续时间 阅读提示:Methods: Colitis Induction; Figure 2 legend |
| 过继T细胞转移结肠炎模型 | 供体细胞类型和数量;受体小鼠品系和年龄;转移途径;给药开始时间和持续时间;FUT8抑制剂剂量 阅读提示:Methods: Colitis Induction; Figure 3 legend |
| 体外CD4+ T细胞实验 | 细胞来源和分离方法;FUT8抑制剂浓度和处理时间;刺激条件(抗体浓度);检测指标(LCA结合、细胞因子、活力) 阅读提示:Methods: Induction of T Helper 1–, 2–, and 17–Polarized Cells; Flow Cytometry; Figure 1 legend |
| Western blot分析 | 细胞处理条件(FUT8抑制剂浓度、刺激时间和抗体);抗体稀释比例;检测方法 阅读提示:Methods: Western Blot Analysis; Figure 6 legend |
| 安全性评估 | 小鼠品系、性别和年龄;FUT8抑制剂剂量和给药持续时间;评估指标(体重、肝脾重量、血清标志物、组织学、黏液层厚度、基因表达) 阅读提示:Methods: Mice; Figure 7 legend |