PLVAP介导早期肺腺癌肿瘤微环境的调控

PLVAP mediates the regulation of the tumour microenvironment in early-stage lung adenocarcinoma.

作者信息Linshan Xie, Mengting Sun, Yujie Zheng, Zezhong Yu, Hui Kong, Jinjie Yu, Shaohua Lu, Yong Zhang, Jie Hu, Hongyi Xin, Jian Zhou, Xiangdong Wang, Charles A Powell, Fred R Hirsch, Chunxue Bai, Yuanlin Song, Jun Yin, Dawei Yang
PMID41431249
发布时间2025-12
DOI10.1002/ctm2.70532

实验完整度

包含单细胞转录组、空间转录组、小鼠模型、共培养、迁移侵袭、管形成、免疫荧光等多个独立证据层级,并有明确的功能和机制验证。

主要模型

人肺腺癌单细胞转录组数据(11例亚实性肺结节) KrasG12D小鼠模型 KrasG12DTgfbr2−/−小鼠模型 HUVEC、A549、LKR细胞

重点核对

尖端细胞和I型毛细血管的比例变化(人及小鼠) PLVAP在肿瘤内皮细胞中的表达及与预后的关系 TGFβ1对HUVEC中PLVAP表达的诱导作用(浓度和时间梯度) siRNA敲低PLVAP对HUVEC迁移和侵袭的影响 shRNA过表达PLVAP对HUVEC管形成能力的影响

摘要

背景:早期肿瘤血管侵犯有助于癌症进展。尖端细胞是肿瘤内皮细胞的一个亚群,在抗血管生成治疗后显著减少。然而,它们在早期侵袭过程中的行为及其特征基因的作用尚不完全清楚。方法:本研究采用单细胞转录组分析和10x Genomics Visium空间转录组学,对来自肺结节患者和KrasG12D(K)和KrasG12DTgfbr2−/−(KT)小鼠的新鲜肺组织进行分析。进一步通过生存数据库、免疫荧光、体外共培养、细胞迁移、侵袭实验和内皮管形成实验,研究了尖端细胞标志物血浆囊泡相关蛋白(PLVAP)的作用。结果:早期肺腺癌(LUAD)组织和KT小鼠中尖端细胞比例升高,有证据表明它们来源于I型毛细血管。PLVAP表达在肿瘤内皮细胞中富集,由TGFβ1诱导,并与患者预后负相关。功能上,PLVAP促进内皮细胞侵袭、迁移和血管生成,并调节肿瘤细胞的侵袭性。细胞间分析显示,一些尖端细胞也表达TGFβ1,可能在早期肿瘤发展过程中作用于邻近的肿瘤细胞以增强侵袭。结论:尖端细胞在早期LUAD进展过程中增加,并可能从I型毛细血管演变而来。其标志物PLVAP与不良预后和促侵袭性内皮行为相关。肿瘤分泌的TGFβ1上调内皮细胞中的PLVAP,促进血管生成和肿瘤侵袭。此外,尖端细胞来源的TGFβ1可能进一步刺激肿瘤的侵袭性,突出了有助于早期肿瘤进展的相互作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
早期肺腺癌中尖端细胞的行为及其特征基因PLVAP在肿瘤进展中的作用和机制是什么?
核心机制
肿瘤分泌的TGFβ1诱导内皮细胞中PLVAP表达,PLVAP促进内皮细胞迁移、侵袭和血管生成,进而增强肿瘤细胞侵袭性;部分尖端细胞自身表达TGFβ1,可能进一步作用于肿瘤细胞,形成双向相互作用。
主要证据
单细胞转录组和空间转录组显示尖端细胞增多并可能来源于I型毛细血管;免疫荧光显示PLVAP与CD31共定位且在KT小鼠中表达升高;体外实验显示TGFβ1刺激上调PLVAP,siRNA敲低PLVAP抑制内皮细胞迁移、侵袭和管形成,shRNA过表达增强管形成;共培养实验显示内皮PLVAP调节肿瘤细胞侵袭和迁移;CellChat分析提示尖端细胞TGFβ1作用于肿瘤细胞。
研究意义
本研究揭示了PLVAP作为早期肺腺癌的预后标志物,并提出了TGFβ1-PLVAP轴作为早期肿瘤-内皮串扰的关键机制,为靶向血管的策略以破坏早期转移生态位提供了理论依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

单细胞转录组分析揭示内皮细胞亚群改变

鉴定早期肺腺癌中内皮细胞亚群的组成和变化。

对11例患者肺结节组织进行单细胞转录组分析,聚类得到EC、EP、成纤维细胞和免疫细胞,进一步对EC亚群进行分析,鉴定出8个亚群,比较尖端细胞和I型毛细血管的比例。

2

小鼠模型验证内皮细胞亚群变化

在Kras突变小鼠模型中验证尖端细胞和I型毛细血管的变化。

使用KrasLSL-G12D和KrasLSL-G12DTgfbr2flox/flox小鼠,通过鼻内注射AdCre-GFP构建肺癌模型,15周后取肺组织进行单细胞转录组分析,比较K和KT组中内皮亚群比例。

3

筛选尖端细胞特征基因并进行预后分析

鉴定与肿瘤进展和不良预后相关的尖端细胞特征基因。

取人和小鼠尖端细胞相对于I型毛细血管的差异基因与EC特征基因的交集,得到10个特征基因。利用Kaplan-Meier Plotter数据库进行LUAD生存分析,发现PLVAP高表达与较差的总生存率相关。

4

验证肿瘤细胞通过分泌TGFβ1促进内皮细胞PLVAP表达

探讨肿瘤细胞如何调控内皮细胞中PLVAP的表达。

免疫荧光显示PLVAP与CD31共定位且在KT小鼠中表达升高;将A549或LKR Tgfbr2 KO细胞与HUVEC共培养,检测HUVEC上PLVAP表达;检测肿瘤细胞和上清中TGFβ1表达;用不同浓度和时间TGFβ1刺激HUVEC,检测PLVAP表达。

5

验证PLVAP对内皮细胞功能的影响

评估PLVAP在内皮细胞迁移、侵袭和血管生成中的作用。

使用siRNA敲低HUVEC中PLVAP,进行transwell迁移和侵袭实验;使用shRNA过表达PLVAP,进行管形成实验。

6

验证内皮PLVAP对肿瘤细胞侵袭和迁移的影响

探讨内皮细胞PLVAP是否影响肿瘤细胞的侵袭性和迁移能力。

将HUVEC(PLVAP敲低或过表达)与A549细胞共培养,进行肿瘤细胞侵袭和迁移实验。

7

尖端细胞介导的肿瘤进展相互作用分析

探索尖端细胞与肿瘤细胞之间的相互作用。

分析上皮细胞亚群,通过CellChat推断尖端细胞与上皮细胞的相互作用,发现尖端细胞表达Tgfb作用于K肿瘤EP;体外用TGFβ1刺激LKR细胞检测侵袭和迁移;空间转录组验证尖端细胞表达Tgfb1。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
人脐静脉内皮细胞Zhongqiao Xinzhou Biotechnology Co., Ltd.--
A549细胞----
LKR细胞----
内皮细胞培养基----
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂----
Opti-MEM培养基----
聚凝胺----
BD基质胶Corning354234
转化生长因子β1Sino Biological10804-HNAC
PrimeScript RT预混液TakaraRR036A
TB Green Premix Ex Taq II (Tli RNaseH Plus)Takara--
小鼠TGFβ1 ELISA试剂盒XinboshengEMC107b
抗PLVAP抗体abcamab27853
抗CD31抗体GeneTexGTX34489
DAPIServicebioGDP1025

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
单细胞转录组分析
样本来源(肺结节患者和K/KT小鼠)、细胞数、过滤标准(features >300且<7000、counts<100000、线粒体基因比例<10%)、聚类参数(Louvain resolution=0.4)
阅读提示:Methods 2.1、2.2、2.3
空间转录组分析
10x Genomics Visium平台、样本类型(人FFPE样本和K/KT小鼠)、去卷积方法(stereoscope)
阅读提示:Methods 2.4,Results 3.1、3.2,Figure 1G、2G
细胞培养和转染
细胞系(HUVEC、A549、LKR)、siRNA/shRNA转染条件(siRNA浓度10 µM、5 µL,Lipofectamine RNAiMAX 5 µL,shRNA慢病毒转导含2.5 µg polybrene)
阅读提示:Methods 2.5
迁移/侵袭实验
Matrigel浓度300 µg/mL、上室细胞数1×10^5(EC)或5×10^4(A549)、下室HUVEC数6×10^4、孵育时间24小时
阅读提示:Methods 2.6
管形成实验
Matrigel浓度300 µg/mL、每孔细胞数1×10^4 HUVEC、孵育时间6小时
阅读提示:Methods 2.7
TGFβ1刺激
TGFβ1浓度(5, 10, 20, 40 ng/mL)、刺激时间(12-48小时)
阅读提示:Methods 2.8,Figure 3F
RT-qPCR和ELISA
RT-qPCR引物序列(Table S2)、ELISA试剂盒(Xinbosheng EMC107b)
阅读提示:Methods 2.9、2.10
免疫荧光
一抗(PLVAP ab27853、CD31 GTX34489)、二抗、核染色(Servicebio GDP1025)
阅读提示:Methods 2.11
预后分析
Kaplan-Meier Plotter数据库、LUAD数据集、中位数表达截止值、总生存期分析
阅读提示:Methods 2.12,Results 3.3,Figure 3A、3B