前列腺六跨膜上皮抗原3(STEAP3)通过铁稳态和PI3K/AKT通路调控云南黑猪肌肉卫星细胞(MuSCs)的体外成肌分化

The Six-Transmembrane Epithelial Antigen of the Prostate (STEAP) 3 Regulates the Myogenic Differentiation of Yunan Black Pig Muscle Satellite Cells (MuSCs) In Vitro via Iron Homeostasis and the PI3K/AKT Pathway.

作者信息Wei Zhang, Minying Zhang, Jiaqing Zhang, Sujuan Chen, Keke Zhang, Xuejing Xie, Chaofan Guo, Jiyuan Shen, Xiaojian Zhang, Huarun Sun, Liya Guo, Yuliang Wen, Lei Wang, Jianhe Hu
PMID40358178
期刊Cells
发布时间2025-04-29
DOI10.3390/cells14090656

实验完整度

包含体外细胞模型(MuSCs分离、分化、siRNA/过表达)、铁代谢检测(铁离子含量、铁池)、通路抑制剂实验及Western blot、qPCR、免疫荧光等多层级验证,功能与机制验证明确。

主要模型

云南黑猪原代肌肉卫星细胞(MuSCs) 体外成肌分化模型

重点核对

MuSCs分离自3日龄云南黑猪,n=3 si-STEAP3-935序列及STEAP3过表达质粒(pEGFP-N1)转染 分化培养基:DMEM+2%马血清,诱导1-5天 LY294002(20 μM)抑制PI3K 铁过载(AFC 100 μM)和铁耗竭(DFO 100 μM)处理

摘要

肌肉卫星细胞(MuSCs)的成肌分化是一个重要的生物学过程,在骨骼肌的再生和修复中发挥关键作用。然而,调控成肌细胞肌发生的机制仍需进一步研究。在本研究中,我们基于云南黑猪MuSCs体外模型,采用细胞转染等方法发现STEAP3参与成肌分化。此外,与对照组相比,si-STEAP3处理组细胞分化形成的肌管数量以及成肌分化标记基因MyoG和MyoD的表达显著降低,而在STEAP3过表达组中则显著增加。STEAP3在铁离子代谢中发挥作用,通过摄取铁离子并增强IRP-IRE稳态来影响成肌分化。STEAP3还激活了PI3K/AKT通路,从而促进云南黑猪MuSCs的成肌细胞分化。本研究结果表明,STEAP3过表达增加了细胞内铁离子含量,并激活稳态IRP-IRE系统以调节细胞内铁离子代谢。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
STEAP3在云南黑猪MuSCs成肌分化中的作用及其分子机制是什么?
核心机制
STEAP3通过促进Fe(III)向Fe(II)转化,增强细胞内不稳定铁池,并通过IRP-IRE系统维持铁稳态,进而激活PI3K/AKT信号通路,促进肌卫星细胞的成肌分化。
主要证据
si-STEAP3降低MyoG、MyoD表达及肌管形成;STEAP3过表达增加这些指标。铁代谢基因及IRP1/2表达变化、铁池检测、LY294002抑制PI3K/AKT后分化标志和通路蛋白磷酸化水平的变化均支持该机制。
研究意义
研究揭示了STEAP3在猪肌肉发育中的新功能,为理解肌肉生长调控机制提供了理论基础,可能对猪的生长发育和肉质改良研究有参考价值。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

MuSCs分离、培养与鉴定

获得并验证云南黑猪原代肌肉卫星细胞,建立体外成肌分化模型。

从3日龄云南黑猪仔猪大腿骨骼肌中分离MuSCs,通过酶消化和差速贴壁培养,并用desmin免疫荧光鉴定细胞纯度。

2

成肌分化诱导及标记基因检测

验证MuSCs在体外分化条件下能够形成肌管,并表达成肌标记基因。

将生长至80-90%融合的MuSCs换为分化培养基诱导分化1-5天,通过qPCR检测MyoD、MyoG、MyH3表达,免疫荧光检测MyHC。

3

STEAP3表达模式分析

确定STEAP3在MuSCs分化过程中及不同年龄猪骨骼肌中的表达变化。

利用qPCR和Western blot检测STEAP3在分化不同天数及3天和6月龄猪骨骼肌中的表达,通过免疫组化观察其在肌纤维中的分布。

4

STEAP3功能缺失与过表达实验

验证STEAP3对MuSCs成肌分化的影响。

分别用siRNA(si-STEAP3-935)和STEAP3过表达质粒转染MuSCs,通过qPCR、Western blot和免疫荧光检测分化标记基因和肌管形成情况。

5

铁离子代谢检测及稳态调控分析

探究STEAP3是否通过调节铁离子代谢影响成肌分化,并分析铁稳态相关基因表达。

用Calcein-AM和亚铁比色法检测细胞铁池及Fe2+含量;外源添加AFC或DFO制造铁过载或缺铁环境,qPCR检测铁代谢基因和铁稳态相关基因表达。

6

PI3K/AKT通路验证

验证STEAP3是否通过激活PI3K/AKT通路促进成肌分化。

使用PI3K抑制剂LY294002处理STEAP3过表达或干扰的细胞,Western blot检测p-PI3K、p-AKT表达变化;同时检测铁离子浓度对通路的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
胶原酶IISolarbioC8150
胰酶SolarbioT1320
DMEM/F12培养基SolarbioD6501
胎牛血清Yeasen40130ES76
青霉素-链霉素Yeasen60162ES76
马血清Thermo Fisher26050070
曲拉通X-100BeyotimeP0096
牛血清白蛋白SolarbioSW3015
结蛋白抗体Proteintech16520-1-AP
二抗ProteintechB900210
DAPIElabscienceE-CK-A163
抗荧光淬灭剂SolarbioS2110
抗原修复液ZSGB-BioZLI-9067
STEAP3抗体NOVUSNBP1-76824
DAB显色液ZSGB-BioZLI-9017
TRIzol试剂TAKARA9180
HiScript III RT SuperMixTAKARARR037A
SYBR Green qPCR MixTAKARARR420A
QuantStudio 5 Flex实时荧光定量PCR仪Thermo Fisher--
脂质体3000Thermo FisherL3000015
肌球蛋白重链抗体Proteintech22281-1-AP
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0011
PVDF膜ImmobilonIPVH00010
脱脂奶粉SolarbioD8340
ECL发光液Yeasen36208ES60
STEAP3抗体Proteintech28478-1-AP
PI3K抗体Proteintech60225-1-Ig
磷酸化PI3K抗体ABMARTT40064
AKT抗体Proteintech10176-2-AP
磷酸化AKT抗体Proteintech66444-1-Ig
β-肌动蛋白抗体ABMARTP30002
β-肌动蛋白抗体Proteintech66009-1-Ig
钙黄绿素-AMYeasen40719ES60
流式上样缓冲液ProteintechPF00018
细胞亚铁比色检测试剂盒ElabscienceE-BC-K881-M
LY294002BeyotimeS1737
柠檬酸铁铵----
去铁胺----
氯丙嗪----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
MuSCs分离与培养
组织来源:3日龄云南黑猪仔猪大腿骨骼肌;麻醉与安乐死方案;酶消化条件(胶原酶II浓度、时间、温度);培养基及血清浓度。
阅读提示:见2.1节
成肌分化诱导
细胞起始融合度(80-90%);分化培养基成分(DMEM、2%马血清、2%青霉素/链霉素);诱导天数(1-5天);CO2浓度和温度。
阅读提示:见2.1节、图1
STEAP3干扰与过表达
siRNA序列及浓度;过表达质粒构建;转染试剂(Lipofectamine 3000)及转染时间;转染后细胞处理。
阅读提示:见2.5节
铁代谢调控
AFC和DFO浓度(100 μM);铁池检测方法(Calcein-AM);亚铁比色检测步骤;铁代谢相关基因表达分析。
阅读提示:见2.8、2.9节及图5
PI3K/AKT通路验证
LY294002浓度(20 μM)及处理时间;Western blot检测p-PI3K、p-AKT的条件;铁离子浓度对通路的影响。
阅读提示:见2.1节、2.7节及图6