MGO诱导HUVECs死亡的表征
确定MGO对HUVECs活力的影响和细胞死亡方式。
用不同浓度MGO处理HUVECs 24小时,通过CCK-8、结晶紫染色、形态观察、ROS检测、PI/Hoechst染色和流式细胞术检测细胞死亡。
Promoting the transition from pyroptosis to apoptosis in endothelial cells: a novel approach to alleviate methylglyoxal-induced vascular damage.
包含体外细胞实验(HUVECs)、血管类器官、小鼠模型,并通过抑制剂、腺病毒过表达、Western blot、流式、免疫荧光等验证功能与机制。
人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 人血管类器官(hVOs) 小鼠模型(C57BL/6)
MGO浓度0.8 mM,处理24小时 DT-13预处理浓度1 μM,处理6小时 MYH9过表达腺病毒感染MOI 150 ROCK抑制剂Y27632浓度5 μM,预处理2小时 小鼠腹腔注射MGO 50 mg/kg,DT-13口服5或10 mg/kg
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定MGO对HUVECs活力的影响和细胞死亡方式。
用不同浓度MGO处理HUVECs 24小时,通过CCK-8、结晶紫染色、形态观察、ROS检测、PI/Hoechst染色和流式细胞术检测细胞死亡。
验证MGO是否通过ROS/Caspase3/GSDME通路诱导HUVECs焦亡。
使用抑制剂NAC、Z-VAD-FMK和Z-DEVD-FMK预处理,然后MGO处理,通过Western blot检测GSDME-NT和cleaved Caspase3,观察形态变化。
筛选并验证DT-13对MGO诱导焦亡的抑制作用。
用不同浓度DT-13预处理HUVECs 6小时,然后MGO处理,检测细胞活力、GSDME-NT表达、cleaved Caspase3、PARP和VE-Cadherin水平。
验证DT-13是否促进凋亡小体形成从而将MGO诱导的焦亡转变为凋亡。
通过形态学观察、流式细胞术、Annexin V/PI染色、LDH和IL-18释放检测凋亡小体和细胞死亡方式。
探究DT-13诱导凋亡小体形成的细胞骨架机制。
通过免疫荧光观察细胞骨架形态,使用钙缺乏、Y27632和检测MLC2磷酸化水平验证Ca2+/ROCK/p-MLC2通路。
验证NMMHC IIA在DT-13诱导凋亡小体形成中的作用。
通过Western blot检测NMMHC IIA切割、免疫荧光定位、使用Blebbistatin和MYH9过表达腺病毒验证其功能。
在组织和动物水平验证DT-13对MGO诱导血管损伤的保护作用。
使用离体血管环、血管类器官和小鼠模型,检测血管反应性、血管生成、血压、组织染色。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 内皮细胞培养基 | Sciencell | 1001 |
| mTeSR Plus基础培养基 | STEMCELL | 100-0274 | |
| mTeSR Plus 5X添加物 | STEMCELL | 100-0275 | |
| 基质胶 | Corning | 354234 | |
| 药物处理 | 甲基乙二醛 | Sigma | M0252 |
| N-乙酰半胱氨酸 | Selleck | S1623 | |
| Z-VAD-FMK | Selleck | S7023 | |
| Z-DEVD-FMK | Selleck | S7312 | |
| DT-13 | MCE | 130551-41-6 | |
| Y27632 | Sigma | Y0503 | |
| Blebbistatin | MCE | HY-13441 | |
| 无钙培养基 | Meilunbio | PWL034 | |
| 氯化钙 | Sigma | 449709 | |
| ROS检测 | DCFH-DA | Beyotime | S0033M |
| 流式分析 | Annexin V-FITC | Elabscience | E-CK-A111 |
| 碘化丙啶 | Elabscience | E-CK-A161 | |
| 染色缓冲液 | Elabscience | E-CK-A107 | |
| Western blot | PVDF膜 | PALL | BSP0161 |
| 抗GSDME抗体 | Abcam | ab215191 | |
| 抗VE-钙黏蛋白抗体 | Abcam | ab33168 | |
| 抗Caspase3抗体 | CST | 9662S | |
| 抗MLC2抗体 | CST | 3672S | |
| 抗磷酸化MLC2抗体 | CST | 3671S | |
| 抗PARP抗体 | HuaBio | ET608-56 | |
| 抗切割PARP抗体 | HuaBio | ET1608-10 | |
| 抗MYH9抗体 | Proteintech | 11128-1-AP | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Abcam | ab8226 | |
| 增强化学发光试剂 | Epizyme | SQ201 | |
| LDH检测 | LDH检测试剂盒 | Njjcbio | A020-2-2 |
| ELISA | IL-18 ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-H0253 |
| 细胞培养 | 骨形态发生蛋白4 | Proteintech | HZ-1045 |
| CHIR99021 | APExBIO | A3011 | |
| 血管内皮生长因子A | Proteintech | HZ-1038 | |
| 毛喉素 | Sigma | F3917 | |
| StemPro-34无血清培养基 | Gibco | 10640-019 | |
| 成纤维细胞生长因子2 | Peprotech | 100-18B-100 | |
| 免疫荧光 | 抗α-SMA抗体 | Sigma | A5228 |
| 抗CD31抗体 | Abcam | ab182981 | |
| Alexa Fluor 488标记二抗 | ZSGB-BIO | ZF-0511/ZF-0512 | |
| Alexa Fluor 594标记二抗 | ZSGB-BIO | ZF-0516 | |
| 细胞骨架染色 | 罗丹明标记鬼笔环肽 | Beyotime | C2205S |
| 细胞核染色 | DAPI | Solarbio | C0060 |
| 免疫荧光 | Alexa Fluor 647偶联CD31抗体 | BD Biosciences | 558094 |
| 仪器 | 酶标仪 | TECAN Spark | -- |
| 荧光显微镜 | Leica DM4B | -- | |
| 流式 | BD Aria III流式细胞仪 | BD | -- |
| 形态观察 | 倒置显微镜 | Olympus CKX53 | -- |
| 图像分析 | ImageJ软件 | NIH | 1.53K |
| 统计分析 | Prism软件 | GraphPad | 10.2.3 |
| 动物实验 | Softron BP2010血压计 | Softron | -- |
| 共聚焦显微镜 | 激光共聚焦显微镜 | Leica | SP8 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养和处理 | 细胞类型、培养基、MGO浓度、处理时间、抑制剂浓度和预处理时间、DT-13浓度和预处理时间 阅读提示:Methods: Cell culture and treatment |
| 焦亡机制验证 | GSDME-NT和cleaved Caspase3表达水平、抑制剂效果 阅读提示:Results: MGO triggers pyroptosis via ROS/Caspase-3/GSDME; Figure 2 |
| 凋亡小体形成 | 凋亡小体数量、Annexin V/PI阳性比例、LDH和IL-18释放水平 阅读提示:Results: DT-13 induces PAT; Figure 4 |
| 细胞骨架机制 | MLC2磷酸化水平、Y27632和钙缺乏的影响 阅读提示:Results: DT-13 promotes cytoskeleton rearrangement; Figure 5 |
| NMMHC IIA功能 | NMMHC IIA切割片段、Blebbistatin和MYH9过表达的影响 阅读提示:Results: DT-13 inhibits NMMHC IIA cleavage; Figure 6 |
| 体内验证 | 小鼠品系、MGO和DT-13剂量、给药途径、持续时间、血压测量方法 阅读提示:Methods: Blood pressure monitoring; Results: DT-13 alleviates vascular lesions; Figure 7 |