肺泡II型细胞中胰高血糖素样肽-1受体信号激活增强高氧暴露新生大鼠的肺发育

Glucagon-like peptide-1 receptor signaling activation in alveolar type II cells enhances lung development in neonatal rats exposed to hyperoxia.

作者信息Tong Sun, Haiyang Yu, Dingning Zhang, Dan Zhang, Danni Li, Jianhua Fu
PMID40080965
发布时间2025-05
DOI10.1016/j.redox.2025.103586

实验完整度

包含体内动物模型(高氧暴露、基因敲低/过表达)、体外细胞模型(原代ATII细胞、RLE-6TN细胞)、单细胞测序、功能验证(代谢、线粒体)及机制验证(m6A甲基化、报告基因)。

主要模型

新生Sprague-Dawley大鼠高氧暴露BPD模型 原代肺泡II型(ATII)细胞 RLE-6TN大鼠II型肺上皮细胞 HEK-293T细胞

重点核对

高氧暴露浓度(FiO2=0.85)及暴露时间 GLP-1R基因敲低或过表达所用腺病毒滴度(2.5×10^8 PFU/g)及给药方式 原代ATII细胞分离培养条件 RLE-6TN细胞高氧暴露时间(24, 48, 72h) m6A修饰位点及METTL14在RLE-6TN细胞中的敲低效果

摘要

背景:许多研究报道了胰高血糖素样肽-1受体(GLP-1R)在调节葡萄糖稳态中的重要作用。然而,除胰腺外,GLP-1R还分布在肺等器官中。少数研究报道了GLP-1R在急性和慢性肺疾病中的作用机制。但其对肺发育的影响仍不清楚。在本研究中,我们旨在探讨GLP-1R在体内和体外支气管肺发育不良(BPD)模型中调节肺发育的作用及其潜在机制。方法:新生Sprague-Dawley大鼠分为高氧组(FIO2 = 0.85)和对照组(FIO2 = 0.21)。在出生后第3、7、10和14天提取肺组织,并进行苏木精和伊红染色以进行组织病理学和形态学观察。进行单细胞RNA测序以探讨GLP-1R在肺发育中的作用。进行Western blotting以评估肺组织、原代肺泡II型(ATII)细胞和RLE-6TN细胞中GLP-1R、动力相关蛋白1(DRP1)以及糖酵解相关酶(包括磷酸果糖激酶(PFKM)、己糖激酶2(HK2)和乳酸脱氢酶A(LDHA))的表达。进行双重免疫荧光染色以确认GLP-1R、DRP1和ATII细胞的共定位。使用Seahorse XF96代谢细胞外通量分析仪对从肺组织和RLE-6TN细胞中分离的ATII细胞进行细胞外酸化率和氧气消耗率的实时分析。使用ATP试剂盒测量ATII和RLE-6TN细胞中的三磷酸腺苷(ATP)浓度。线粒体用MitoTracker染色并用HiS-SIM观察。使用RT-qPCR检测肺组织、原代ATII细胞和RLE-6TN细胞中GLP-1R基因水平。我们使用MeRIP-qPCR测定RLE-6TN细胞中GLP-1R mRNA的m6A修饰水平。使用报告基因验证修饰位点和关键甲基转移酶。结果:我们观察到GLP-1R信号调节肺发育并在ATII细胞中发挥关键作用,尤其是在出生后。高氧抑制ATII细胞中GLP-1R蛋白和基因表达,并加速BPD的发展。在高氧条件下,ATII细胞中ATP产生减少,糖酵解水平增加。激活GLP-1R信号通过调节DRP1诱导的线粒体分裂促进ATP产生并下调糖酵解。在RLE-6TN细胞中,我们验证了GLP-1R mRNA的m6A修饰水平降低;通过MeRIP-qPCR测试了修饰位点,主要由甲基转移酶样14(METTL14)诱导。结论:GLP-1R主要在新生大鼠的ATII细胞中表达,可在出生后早期促进肺发育。GLP-1R信号通路调节高氧条件下ATII细胞中的线粒体分裂和葡萄糖代谢。在BPD发病过程中,高氧可通过抑制m6A甲基化来抑制GLP-1R的激活。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
GLP-1R信号是否在新生大鼠肺发育中起作用,并在高氧诱导的支气管肺发育不良(BPD)中如何被调控?
核心机制
高氧通过降低GLP-1R mRNA的m6A甲基化修饰(主要由METTL14介导),下调GLP-1R表达,进而促进DRP1介导的线粒体分裂,增加糖酵解并抑制ATP产生,加重ATII细胞损伤,抑制肺发育。
主要证据
通过体内高氧大鼠模型和GLP-1R基因敲低/过表达模型,结合组织学、ELISA、流式细胞术,以及体外原代ATII细胞和RLE-6TN细胞实验,利用Western blot、Seahorse代谢分析、MitoTracker染色、MeRIP-qPCR和荧光素酶报告基因等验证了GLP-1R在肺发育及BPD中的作用和分子机制。
研究意义
本研究表明GLP-1R信号在肺发育和BPD发病中起关键作用,为靶向保护ATII细胞免受损伤的BPD防治策略提供潜在方向。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

高氧暴露BPD动物模型建立与表型分析

建立新生大鼠高氧诱导的BPD模型,并评估肺发育和组织学变化。

将新生SD大鼠分为高氧组(FiO2=0.85)和对照组(FiO2=0.21),在出生后3、7、10、14天收集肺组织,进行HE染色,评估肺泡壁厚度和辐射状肺泡计数。

2

GLP-1R表达与肺发育相关性分析

检测GLP-1R在出生后不同时间点及胎肺中的表达变化,以及敲低GLP-1R对肺发育的影响。

通过Western blot和RT-qPCR检测肺组织中GLP-1R表达;使用腺病毒敲低GLP-1R,观察肺组织学变化;ELISA检测TGF-β1、VEGF-A、BMP4水平。

3

单细胞RNA测序分析GLP-1R在肺细胞中的表达

确定GLP-1R在肺组织中表达的主要细胞类型,并分析敲低后细胞比例的变化。

对对照组和GLP-1R敲低组的肺组织进行单细胞RNA测序,鉴定细胞类型并分析GLP-1R表达变化。

4

原代ATII细胞和RLE-6TN细胞模型验证

在细胞水平验证高氧对GLP-1R表达的影响,并探究GLP-1R对细胞凋亡和增殖的作用。

分离原代ATII细胞,培养RLE-6TN细胞,进行高氧暴露,检测GLP-1R表达、细胞活力(CCK-8)和凋亡(流式)。

5

GLP-1R信号对代谢和线粒体的调控

探究GLP-1R是否通过调节线粒体分裂和糖代谢影响ATII细胞功能。

使用Seahorse分析ECAR和OCR,检测ATP水平,MitoTracker染色观察线粒体形态,Western blot检测DRP1和糖酵解酶表达。

6

GLP-1R mRNA的m6A修饰机制研究

探讨高氧如何通过m6A甲基化修饰调控GLP-1R表达。

在RLE-6TN细胞中,使用MeRIP-qPCR检测GLP-1R mRNA的m6A水平,敲低METTL3、METTL14、WTAP、VIRMA后检测GLP-1R表达,并通过双荧光素酶报告基因验证METTL14对GLP-1R 3'UTR的调控。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Sprague-Dawley大鼠BEIJING HFK BIOSCIENCE CO., Ltd.--
RLE-6TN细胞BeNa Culture CollectionBNCC337708
RPMI 1640培养基KeyGEN BioTECHKGM31800-500
胎牛血清Procell164210-50
DMEM/F12培养基KeyGEN BioTECHKGM12500-500
胎牛血清ExcellFSP500
胰蛋白酶-EDTAGibco25200056
I型胶原酶SolarbioC8140
细胞计数试剂盒-8MCEHY-K0301
Annexin V-FITC细胞凋亡检测试剂BeyotimeC1062 M
CytoFLEX流式细胞仪BECKMAN COULTER--
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
蛋白酶抑制剂混合物ApebioK1007
磷酸酶抑制剂混合物ApebioK1015
抗GLP-1R小鼠抗体(D-6)Santa Cruzsc-390774
抗DRP1(D6C7)兔单克隆抗体Cell Signalling Technology8570
抗PFKM多克隆抗体Proteintech55028-1-AP
抗己糖激酶2多克隆抗体Proteintech22029-1-AP
抗β-肌动蛋白单克隆抗体Proteintech66009-1-lg
抗LDHA特异性多克隆抗体Proteintech19987-1-AP
二抗ProteintechSA00001-1
二抗ProteintechSA00001-2
增强化学发光试剂Tanon180-501
TRIzol试剂TakaraT9108
逆转录试剂盒Accurate BiologyAG11702
qPCR试剂盒Accurate BiologyAG11728
Seahorse XF96分析仪Agilent Technologies--
XF糖酵解压力测试试剂盒----
XF细胞线粒体压力测试试剂盒----
MitoTracker Red CMXRosSolarbioM9940
HiS-SIM超分辨显微镜Zeiss AGLSM880
牛血清白蛋白BeyotimeST025-20g
Cy3山羊抗兔IgG (H+L)抗体ApeBioK1209
Alexa 488山羊抗小鼠IgG (H+L)抗体ApeBioK1204
DAPIBosterAR1176
曲拉通Solarbio9002-93-1
抗SFTPC多克隆抗体Proteintech10774-1-AP
ATP检测试剂盒BeyotimeS0027
多功能酶标仪BiotekCytation 5
TGF-β1 ELISA试剂盒RUIXIN BIOTECH--
VEGF-A ELISA试剂盒RUIXIN BIOTECH--
BMP4 ELISA试剂盒RUIXIN BIOTECH--
多组织解离试剂盒2Miltenyi Biotec--
红细胞去除试剂盒Miltenyi Biotec130-094-183
死细胞去除试剂盒Miltenyi Biotec130-109-398
细胞分析仪CountstarRigel S2
SeekOne数字液滴单细胞3文库制备试剂盒SeekGene--
测序平台IlluminaNovaSeq 6000
测序平台MGI Tech Co., Ltd.DNBSEQ-T7
TRIzol试剂Invitrogen15596026
NanoDrop分光光度计Thermo Fisher Scientific Inc.OneC
Qubit RNA宽范围检测试剂盒Life TechnologiesQ10210
VAHTS mRNA捕获磁珠VAHTSN401-01/02
抗m6A抗体Synaptic Systems202203
KC-Digital链特异性mRNA文库制备试剂盒Wuhan Seqhealth Co., Ltd.DR08502
psiCHECK2载体----
LipoFiter 3.0转染试剂HANBIO--
pCDNA3.1-METTL14质粒----
双荧光素酶报告基因检测试剂盒Yeasen Biotechnology--
HEK-293T细胞BOSTERCX0001
腺病毒HANBIOAD24050812
腺病毒HANBIOAD23032206

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
高氧动物模型
高氧暴露浓度(85% O2),暴露起始时间(出生后12小时内),暴露持续时间(3、7、10、14天),对照组(21% O2),母鼠交换频率(每24小时),CO2控制方法(钠石灰),湿度控制(硅胶),光周期(12小时昼夜循环)。
阅读提示:Materials and methods, section 2.2
ATII细胞分离与培养
大鼠年龄(出生后3-14天),消化液(0.25%胰蛋白酶-EDTA),消化时间(25分钟),胶原酶I浓度(0.1%),纯化方法(IgG包被板差速贴壁),培养条件(DMEM/F12,10% FBS,37°C,5% CO2)。
阅读提示:Materials and methods, section 2.4
细胞高氧模型
细胞密度(70-80%融合),高氧浓度(85% O2),暴露时间(24、48、72小时),培养条件(RPMI 1640,10% FBS,5% CO2)。
阅读提示:Materials and methods, section 2.5
动物基因敲低/过表达
腺病毒滴度(2.5×10^8 PFU/g),给药方式(滴鼻),给药时间(出生后第4天),病毒吸入确认方法。
阅读提示:Results sections 3.2, 3.4
代谢通量分析
细胞接种密度(ATII细胞10000细胞/孔,RLE-6TN细胞5000细胞/孔),检测液成分(Seahorse XF DEME培养基、谷氨酰胺等),药物浓度(葡萄糖10 mM,寡霉素1 μM,2-DG 50 mM;寡霉素1.5 μM,FCCP 0.5 μM,Rot/AA 0.5 μM)。
阅读提示:Materials and methods, section 2.10
m6A修饰检测
RLE-6TN细胞高氧暴露时间(48小时),MeRIP-qPCR方法,siRNA敲低METTL3、METTL14、WTAP、VIRMA的转染条件,荧光素酶报告基因实验的转染和检测细节。
阅读提示:Methods sections 2.15, 2.16