生物信息学分析MTCH2表达和预后
评估MTCH2在乳腺癌组织中的表达水平及其与患者生存的关系。
利用GEO和TCGA-BRCA数据集分析MTCH2表达,并进行Kaplan-Meier生存分析。
MTCH2 stimulates cellular proliferation and cycles via PI3K/Akt pathway in breast cancer.
包含生物信息学分析、体外细胞功能实验(CCK-8、流式细胞术)、体内异种移植模型,并验证了PI3K/Akt机制通路。
乳腺癌细胞系MCF-7和T-47D BALB/c裸鼠异种移植模型
MTCH2在乳腺癌细胞系中的表达水平(T-47D最高) 慢病毒感染MOI值(过表达MOI 30,敲低MOI 50) 细胞接种密度(CCK-8实验2*10^4细胞/孔) 异种移植细胞接种量(5*10^6细胞/ml,100 μl) 小鼠分组和每组样本量(4组,每组6只)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估MTCH2在乳腺癌组织中的表达水平及其与患者生存的关系。
利用GEO和TCGA-BRCA数据集分析MTCH2表达,并进行Kaplan-Meier生存分析。
在乳腺癌细胞系中验证MTCH2的表达水平。
通过qPCR和Western blot检测MCF10A、MDA-MB-231、BT474、MCF-7和T-47D细胞中MTCH2表达。
评估MTCH2过表达和敲低对乳腺癌细胞增殖和周期的影响。
使用慢病毒构建稳定过表达或敲低MTCH2的细胞系,通过CCK-8检测细胞活力,流式细胞术分析细胞周期。
验证MTCH2在体内对肿瘤生长的影响。
将稳定转染的MCF-7细胞皮下注射至裸鼠,监测肿瘤体积和重量。
探讨MTCH2是否通过PI3K/Akt通路发挥作用。
使用Western blot检测PI3K和Akt磷酸化水平,并通过IGF-1R过表达进行功能恢复实验。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Kccell | -- |
| RPMI-1640培养基 | Procell | -- | |
| 胎牛血清 | WISENT | -- | |
| 青霉素-链霉素 | NCM Biotech | -- | |
| MCF 10A专用培养基 | Procell | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Thermo Fisher | -- |
| 慢病毒包装 | pLVX-shRNA2-puro载体 | Ourui | -- |
| pLVX-IRES-ZsGreen1载体 | Ourui | -- | |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 逆转录 | 逆转录试剂盒 | Genecopoeia | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 | Beyotime | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| SDS-PAGE凝胶 | Beyotime | -- | |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| MTCH2抗体 | Proteintech | 16888-1-AP | |
| PCNA抗体 | Proteintech | 10205-2-AP | |
| MCM2抗体 | Proteintech | 10513-1-AP | |
| CDK1抗体 | Proteintech | 19532-1-AP | |
| CDK6抗体 | Proteintech | 14052-1-AP | |
| 磷酸化AKT抗体 | Proteintech | 66444-1-Ig | |
| AKT抗体 | Proteintech | 10176-2-AP | |
| PI3K抗体 | Abcam | ab32089 | |
| 磷酸化PI3K抗体 | Cell Signaling Technology | 4228 | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| 抗兔IgG | CST | -- | |
| ECL化学发光检测试剂盒 | Xinsaimei | -- | |
| 化学发光成像系统 | Tanon | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂 | Sigma | -- |
| 细胞周期检测 | 碘化丙啶染色液 | Beyotime | -- |
| 流式细胞仪 | ACEA Biosciences | -- | |
| 细胞培养 | 胰蛋白酶 | NCM Biotech | -- |
| 磷酸盐缓冲液 | Gibco | -- | |
| 吸光度检测 | 多功能酶标仪 | PerkinElmer | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源(ATCC),培养基类型(DMEM、RPMI-1640等),血清浓度(10%或20%),抗生素(1%双抗),培养条件(37°C,5% CO2) 阅读提示:Materials and methods 2.2 Cell lines and culture |
| 慢病毒转染 | MOI值(过表达30,敲低50),细胞密度(1*10^6细胞/孔),转染试剂(Lipofectamine 2000) 阅读提示:Materials and methods 2.3 Construction of the lentivirus and cell transfection |
| CCK-8实验 | 细胞接种密度(2*10^4细胞/孔),重复孔数(3个),检测时间点(0、24、48、72小时),CCK-8孵育时间(2小时) 阅读提示:Materials and methods 2.6 Cell counting kit-8 (CCK-8) assay |
| 细胞周期分析 | 细胞固定条件(乙醇,4°C,24小时),PI染色液体积(500 μl),流式细胞仪型号(ACEA Biosciences) 阅读提示:Materials and methods 2.7 Flow cytometry (FCM) for cellular cycle assay |
| 异种移植模型 | 小鼠品系(BALB/c nude),周龄(5-6周),性别(雌性),细胞接种量(5*10^6细胞/ml,100 μl),分组(4组,每组6只),监测时间(第8天开始每4天) 阅读提示:Materials and methods 2.8 Xenograft model of tumor growth model |