建立α-syn PFFs诱导的PD动物模型
模拟PD病理过程,观察α-syn传播和多巴胺能神经变性。
对猴和小鼠进行纹状体立体定位注射α-syn PFFs,通过行为学测试、TH免疫组化和Western blot验证模型建立成功。
Low-density lipoprotein receptor-related protein 1 mediates α-synuclein transmission from the striatum to the substantia nigra in animal models of Parkinson's disease.
包含猴和小鼠α-syn PFFs诱导的PD模型、细胞实验(PC12、HEK293A、原代神经元)等多个独立证据层级,并进行了LRP1敲低功能验证和N端赖氨酸机制验证。
α-syn PFFs诱导的食蟹猴PD模型 α-syn PFFs诱导的C57BL/6小鼠PD模型 PC12细胞模型 HEK293A细胞模型
α-syn PFFs注射剂量:猴600 μg,小鼠5 μg(2.5 μg/μL,2 μL) LRP1敲低方式:尾静脉注射携带LRP1 siRNA的慢病毒(1×10^7 TU/mL),8周后注射PFFs α-syn N端赖氨酸残基封闭:使用Sulfo-NHS acetate (NHS)处理α-syn PFFs 细胞处理浓度:PC12细胞使用10 μg/mL α-syn PFFs处理24小时 动物模型:猴为10-12岁雄性食蟹猴,小鼠为6周龄雄性C57BL/6
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟PD病理过程,观察α-syn传播和多巴胺能神经变性。
对猴和小鼠进行纹状体立体定位注射α-syn PFFs,通过行为学测试、TH免疫组化和Western blot验证模型建立成功。
评估LRP1与α-syn积累和多巴胺能损伤的相关性。
通过Western blot和免疫荧光检测纹状体和黑质中TH、LRP1和α-syn的表达水平。
验证LRP1是否介导α-syn传播和神经毒性。
通过尾静脉注射携带LRP1 siRNA的慢病毒敲低小鼠LRP1,随后注射PFFs,评估TH和α-syn水平。
证实LRP1介导α-syn PFFs的细胞摄取。
使用LRP1 siRNA转染PC12细胞,敲低LRP1后检测α-syn摄取。
确定α-syn中负责LRP1介导摄取的结构域。
将Flag标记的全长α-syn、N端片段、缺失N端的片段转染HEK293A细胞,检测LRP1表达变化。
验证α-syn N端赖氨酸残基在LRP1介导内吞中的作用。
用NHS封闭α-syn PFFs的赖氨酸残基,处理PC12细胞,检测LRP1和α-syn水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型建立 | α-突触核蛋白预形成原纤维 | StressMarq | SPR-322 |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Gibco | -- |
| DMEM培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 马血清 | Biological Industries | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Solarbio | -- | |
| Neurobasal-A培养基 | Gibco | -- | |
| B-27添加剂 | Gibco | -- | |
| L-谷氨酰胺 | Gibco | -- | |
| 胰蛋白酶-EDTA | Gibco | -- | |
| 阿糖胞苷 | Sigma | C1768 | |
| 细胞处理 | α-突触核蛋白单体 | StressMarq | SPR-321 |
| LRP1敲低 | Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | 13778 |
| 赖氨酸封闭 | 硫代-NHS乙酸酯 | Thermo Fisher Scientific | 26777 |
| 质粒转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | L3000015 |
| Western blot | RIPA裂解液 | Solarbio | R0010 |
| 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 | Millipore | 539134/524628 | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | 文中未明确说明 | -- | |
| 5×上样缓冲液 | Solarbio | P1040 | |
| PVDF膜 | Millipore | ISEQ00010 | |
| 抗LRP1抗体 | Beyotime Biotechnology | AF1000 | |
| 抗α-突触核蛋白抗体 | Abcam | ab138501 | |
| 抗Flag抗体 | Abmart | T62938 | |
| 抗TH抗体 | Sigma | T2928 | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Affinity Biosciences | T0022 | |
| IRDye 680RD山羊抗兔IgG | LI-COR Biosciences | 926-68071 | |
| IRDye 680RD山羊抗小鼠IgG | LI-COR Biosciences | 926-68070 | |
| ODYSSEY双色红外荧光成像系统 | LI-COR Biosciences | -- | |
| 免疫组织化学 | 小鼠免疫组织化学试剂盒 | ZSGB-BIO | SP-9002 |
| DAB显色底物 | Sigma | D5637 | |
| 免疫荧光 | 抗α-突触核蛋白抗体 | BD Transduction Laboratories | 610787 |
| 抗NeuN抗体 | CST | 24307 | |
| Alexa Fluor 488偶联二抗 | Invitrogen | A11008 | |
| Alexa Fluor 594偶联二抗 | Invitrogen | A11005 | |
| DAPI | Invitrogen | D1306 | |
| 细胞培养 | PC12细胞 | Wuhan Pricella Biotechnology | CL-0480 |
| HEK293A细胞 | Wuhan Pricella Biotechnology | CL-0003 | |
| 动物实验 | 异氟烷 | RWD Life Science | R510-22-10 |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Dojindo Laboratories | CK04 |
| FilterMax F5酶标仪 | Molecular Devices | -- | |
| 动物模型建立 | 立体定位注射仪 | 文中未明确说明 | -- |
| Hamilton针 | 文中未明确说明 | -- | |
| 激光共聚焦显微镜 | 共聚焦显微镜 | ZEISS | -- |
| 光学显微镜 | 光学显微镜 | Nikon Corporation | -- |
| 解剖显微镜 | 解剖显微镜 | Olympus | -- |
| 蛋白检测 | 化学发光成像系统 | Azure Biosystems | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 猴和小鼠的品系、性别、年龄、α-syn PFFs注射剂量、注射体积、注射位点、对照组处理 阅读提示:Methods: Animals |
| LRP1敲低 | 慢病毒滴度、注射途径、敲低时间、siRNA序列 阅读提示:Methods: LRP1 knockdown; Additional Figure 5 |
| 细胞实验 | 细胞系、培养条件、α-syn PFFs处理浓度和时间、siRNA浓度和转染时间 阅读提示:Methods: Cell culture; In vitro treatment of neurons with α-synuclein; LRP1 knockdown |
| 机制验证 | 质粒构建、转染条件、NHS处理浓度和时间 阅读提示:Methods: Transfection with plasmids encoding α-synuclein fragments; Capping the lysine residues in α-synuclein pre-formed fibrils |
| 检测方法 | 抗体稀释比、蛋白上样量、内参选择、统计方法 阅读提示:Methods: Western blot assay; Immunohistochemistry and immunofluorescence staining; Statistical analysis |