IGSF9及突变体构建与细胞系建立
在肺癌细胞系中过表达IGSF9全长、胞外域(ECD)和胞内域(ID)嵌合体,以研究各结构域在侵袭转移中的作用。
利用慢病毒载体在H1299和H1975细胞中稳定表达IGSF9、IGSF9-ECD和LILRB4-ECD-IGSF9-ID,经流式分选获得双阳性细胞。
IGSF9 promotes tumor invasion and metastasis through GSK-3β/β-catenin mediated EMT in lung cancer.
包含体外细胞功能实验、免疫共沉淀、Western blot、免疫荧光、体内尾静脉转移模型及抗体阻断治疗,功能验证和机制验证充分。
非小细胞肺癌细胞系H1299和H1975 小鼠LL/2细胞 NSG小鼠尾静脉转移模型 C57BL/6-Igsf9-/-小鼠模型
IGSF9全长、ECD和ID(LILRB4-ECD-IGSF9-ID嵌合体)在H1299和H1975细胞中的过表达 细胞形态变化(扁平多边形变为细长条状)作为EMT的初步指标 EMT标志物表达变化:E-cadherin下调,ZEB1、N-cadherin、Vimentin上调 β-catenin核转位及细胞质/核分离验证 GSK-3β抑制剂CHIR-98014处理对IGSF9介导的EMT的逆转效果
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在肺癌细胞系中过表达IGSF9全长、胞外域(ECD)和胞内域(ID)嵌合体,以研究各结构域在侵袭转移中的作用。
利用慢病毒载体在H1299和H1975细胞中稳定表达IGSF9、IGSF9-ECD和LILRB4-ECD-IGSF9-ID,经流式分选获得双阳性细胞。
评估IGSF9及其结构域对肿瘤细胞迁移和侵袭能力的影响。
采用transwell迁移和侵袭实验(使用基质胶涂层)及伤口愈合实验检测细胞迁移和侵袭能力。
验证IGSF9是否诱导EMT及其结构域依赖性。
通过实时PCR和Western blot检测间质标志物(ZEB1、N-cadherin、Vimentin)和上皮标志物(E-cadherin、ZO-1)的表达变化;免疫荧光观察β-catenin和E-cadherin的定位。
探究IGSF9胞内域是否通过招募GSK-3β激活Wnt/β-catenin信号通路。
进行免疫共沉淀检测IGSF9与GSK-3β的相互作用;分离细胞质和核蛋白检测β-catenin分布;使用GSK-3β抑制剂CHIR-98014处理细胞,检测信号通路分子变化。
在体内验证IGSF9及其结构域对肿瘤侵袭和转移的促进作用。
将H1299-control、-IGSF9、-IGSF9-ECD和-LILRB4-ECD-IGSF9-ID细胞经尾静脉注射NSG小鼠,通过生物发光成像监测肿瘤进展,并在实验终点检测肺和肝中的GFP+细胞及HE染色。
评估抗IGSF9抗体对肿瘤侵袭和转移的抑制作用。
在NSG小鼠模型中,从第二天开始每隔3天注射抗IGSF9或同型对照,监测肿瘤进展,并在终点分析GFP+细胞和肿瘤数量。在C57BL/6-Igsf9-/-小鼠模型中重复类似实验。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 流式分选与检测 | BD FACSAria III流式细胞分选仪 | BD Biosciences | -- |
| 流式检测 | LSRFortessa流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| C6 Plus流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| 伤口愈合实验 | Zeiss Axio Vert.A1倒置显微镜 | Zeiss | -- |
| 图像分析 | ZEISS ZEN 3.7软件 | Zeiss | -- |
| Transwell迁移/侵袭实验 | Transwell小室 | Corning | 3422 |
| 结晶紫 | Beyotime Biotechnology | C0121 | |
| 实时PCR | RNAiso Plus试剂 | TaKaRa | 9108 |
| Primescript™ RT预混液 | TaKaRa | RR036A | |
| TB Green Premix Ex Taq™ | TaKaRa | RR420A | |
| Western blotting | RIPA裂解缓冲液 | Solarbio | R0020 |
| 磷酸酶抑制剂 | Beyotime Biotechnology | P1081 | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime Biotechnology | P0012 | |
| NE-PER核和细胞质提取试剂 | Thermo Fisher Scientific | 78835 | |
| 免疫共沉淀 | IP裂解缓冲液 | Solarbio | R0020 |
| 蛋白A/G磁珠 | MCE | -- | |
| 免疫荧光 | 细胞培养处理盖玻片 | Solarbio | YA0350 |
| DAPI | -- | -- | |
| Zeiss LSM880共聚焦显微镜 | Zeiss | -- | |
| 体内成像 | 动物光谱成像系统 | PerkinElmer | -- |
| 动物实验 | 异氟烷 | -- | -- |
| 同型对照抗体 | InVivoMab | 847422A1 | |
| 抗IGSF9抗体 | -- | -- | |
| 药物处理(机制验证) | CHIR-98014 | -- | -- |
| 细胞培养 | 嘌呤霉素 | -- | -- |
| 流式染色 | APC偶联链霉亲和素 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源(H1299、H1975、A549、H460、LL/2、HEK293T)及培养条件(培养基、血清浓度、青霉素/链霉素浓度) 阅读提示:Materials and methods - Cell culture |
| 质粒构建与稳定转染 | IGSF9全长、ECD、LILRB4-ECD-IGSF9-ID的载体构建及慢病毒包装,嘌呤霉素筛选浓度(1μg/ml),流式分选标记 阅读提示:Materials and methods - Plasmids and transfection |
| 体外迁移和侵袭实验 | Transwell小室规格(8μm孔径)、细胞数量(1×10^5)、血清浓度(上室3% FBS,下室10% FBS)、迁移时间(8-12h)、结晶紫染色浓度和时间 阅读提示:Materials and methods - Transwell migrations and invasion assays |
| EMT标志物检测 | 实时PCR引物序列(表S2)、Western blot抗体(表S1)、免疫荧光固定和通透条件(4% PFA 15min,0.3% Triton X-100 10min) 阅读提示:Materials and methods - Real-time PCR, Western blotting, Immunofluorescence |
| 免疫共沉淀 | 裂解缓冲液、抗体用量(5-10 μg)、磁珠类型(protein A/G)及洗涤条件(PBST含0.5% Tween-20) 阅读提示:Materials and methods - Immunoprecipitation |
| 体内转移模型 | 细胞数量(1×10^6)、注射体积(200μl PBS)、小鼠品系(NSG或C57BL/6-Igsf9-/-)、成像时间点、抗IGSF9剂量(200μg/小鼠)及给药频率(每3天) 阅读提示:Materials and methods - IGSF9 promoted invasion and metastasis in H1299 NSG mouse model, Anti-IGSF9 was used to treat mouse models |