生物信息学分析
预测CDKN2B-AS1在甲状腺癌中的表达及靶向miRNA和下游靶基因。
使用starBase分析CDKN2B-AS1在甲状腺癌中的表达和靶miRNA;使用miRDB和TargetScan预测miR-122-5p的靶基因。
Cancer stem cell-like cells-derived exosomal lncRNA CDKN2B-AS1 promotes biological characteristics in thyroid cancer via miR-122-5p/P4HA1 axis.
包含多种细胞系体外实验、外泌体提取与功能验证、双荧光素酶报告基因机制验证、裸鼠移植瘤和转移模型等至少两个独立证据层级,并包含功能验证和机制验证。
甲状腺癌细胞系 TPC-1、SW579 CSCs来源外泌体共培养模型 裸鼠皮下移植瘤模型 裸鼠尾静脉转移模型
细胞系:TPC-1、SW579,以及正常甲状腺细胞Nthy-ori3-1 CSCs形成:无血清成球培养12-14天 外泌体共培养:CSCs来源外泌体与受体细胞共培养 转染:sh-CDKN2B-AS1、miR-122-5p inhibitor、sh-P4HA1及各自对照 体内实验:BALB/c裸鼠随机分组(n=6),皮下注射肿瘤细胞28天,尾静脉注射6周
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
预测CDKN2B-AS1在甲状腺癌中的表达及靶向miRNA和下游靶基因。
使用starBase分析CDKN2B-AS1在甲状腺癌中的表达和靶miRNA;使用miRDB和TargetScan预测miR-122-5p的靶基因。
建立CDKN2B-AS1沉默及miR-122-5p/P4HA1调控的细胞模型。
将sh-CDKN2B-AS1、miR-122-5p inhibitor、sh-P4HA1及其对照转染入TPC-1和SW579细胞。
检测CDKN2B-AS1及其轴对细胞活力、干性、迁移和侵袭的影响。
通过CCK-8检测细胞活力,成球实验检测干性,划痕实验和Transwell实验检测迁移和侵袭。
验证CSCs来源外泌体的特征及CDKN2B-AS1的传递。
从转染后的CSCs培养上清中提取外泌体,TEM鉴定形态,PKH67标记后与受体细胞共培养观察摄取。
验证CDKN2B-AS1与miR-122-5p、miR-122-5p与P4HA1的结合关系。
通过双荧光素酶报告基因实验验证靶向结合。
检测EMT相关蛋白和P4HA1的表达变化。
裂解细胞或组织提取蛋白,SDS-PAGE电泳,转膜,抗体孵育,ECL显影。
验证CSCs来源外泌体CDKN2B-AS1对肿瘤生长和转移的影响。
建立裸鼠皮下移植瘤模型和尾静脉转移模型,测量肿瘤体积、重量和肺转移结节,RT-qPCR和western blot检测相关表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Procell | PM150110 |
| 胎牛血清 | Procell | 164210-500 | |
| Leibovitz's L-15培养基 | ATCC | 30-2008 | |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | L3000075 |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Solarbio | CA1210 |
| 酶标仪 | Beyotime | HBS-1096C | |
| 成球实验 | 6孔超低吸附板 | Corning | CLS3471 |
| 显微观察 | 显微镜 | Leica | DMi1 |
| 外泌体分离 | 总外泌体分离试剂 | Invitrogen | 4478359 |
| 外泌体鉴定 | Formvar/碳支持铜网 | Sigma-Aldrich | TEM-FCF100CU |
| 外泌体观察 | 透射电子显微镜 | Jeol Ltd | JEM-2000EXII |
| 外泌体摄取 | PKH67绿色荧光细胞连接试剂盒 | Sigma-Aldrich | MIDI67 |
| 牛血清白蛋白 | Sigma-Aldrich | A1933 | |
| DAPI染色液 | Sigma-Aldrich | D9542 | |
| 荧光观察 | 荧光显微镜 | Carl Zeiss | LSM710 |
| Transwell实验 | Transwell细胞培养小室 | Corning | CLS3399 |
| 基质胶 | Sigma-Aldrich | E6909 | |
| 结晶紫溶液 | Beyotime | C0121 | |
| Western blot | 总蛋白提取试剂盒 | Merck | V900854 |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Solarbio | PC0020 | |
| PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 | |
| E-cadherin抗体 | Cell Signaling Technology (CST) | #14472 | |
| N-cadherin抗体 | Cell Signaling Technology (CST) | #13116 | |
| Vimentin抗体 | Cell Signaling Technology (CST) | #5741 | |
| P4HA1抗体 | Abcam | ab244400 | |
| HRP标记的山羊抗兔二抗 | Abcam | ab205718 | |
| HRP标记的山羊抗小鼠二抗 | Abcam | ab205719 | |
| 增强化学发光底物 | Thermo Scientific | 32132X3 | |
| GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology (CST) | #2118 | |
| Dual-luciferase reporter assay | psiCHECK-2载体 | Promega | C8021 |
| miR-122-5p模拟物 | RIBOBIO | miR10000421-1-5 | |
| 模拟物对照 | RIBOBIO | miR1N0000001-1-5 | |
| 双荧光素酶报告系统 | Solarbio | D0010 | |
| MEM培养基 | Procell | PM150467 | |
| 动物实验 | 石蜡 | Merck | 1496904 |
| H&E染色试剂盒 | Beyotime | C0105 | |
| RNA提取 | Triquick试剂 | Solarbio | R1100 |
| 组织/细胞miRNA提取试剂盒 | Solarbio | R2220 | |
| RT-qPCR | 一步法SuperRT-PCR Mix试剂盒 | Solarbio | T2240 |
| miRNA第一链cDNA合成试剂盒 | TIANGEN | KR211 | |
| FastFire qPCR预混液 | TIANGEN | FP207 | |
| miRNA qRT-PCR试剂盒 | TIANGEN | FP411 | |
| 实时荧光定量PCR仪 | Takara | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源:TPC-1、SW579、Nthy-ori3-1、HTH83、FTC-133等;培养基、血清浓度及培养条件 阅读提示:Materials and methods 2.2 Cell and culture |
| 转染 | 转染质粒和寡核苷酸的种类、序列及浓度;转染试剂使用量 阅读提示:Materials and methods 2.3 Transfection |
| CSCs形成与外泌体提取 | 成球培养的时间、外泌体提取试剂盒型号、离心条件 阅读提示:Materials and methods 2.5 Sphere-forming assay 和 2.6 Exosome isolation and identification |
| 外泌体共培养 | 外泌体与受体细胞的比例、共培养时间 阅读提示:Materials and methods 2.7 Co-culture system |
| 细胞功能实验 | CCK-8检测的细胞密度和时间;划痕实验的细胞密度和时间;Transwell实验的细胞数、基质胶浓度和时间 阅读提示:Materials and methods 2.4 Cell viability assay, 2.10 Wound healing assay, 2.11 Transwell assay |
| Western blot | 蛋白提取方法、抗体稀释比例、封闭液和时间 阅读提示:Materials and methods 2.12 Western blot |
| 体内实验 | 动物品系、性别、周龄、每组数量、细胞注射数量、给药方式、观察时间 阅读提示:Materials and methods 2.14 Animal experiment |