NLRC5缺乏通过抑制NF-κB信号减少LPS诱导的小胶质细胞活化并改善小鼠抑郁样行为

NLRC5 Deficiency Reduces LPS-Induced Microglial Activation via Inhibition of NF-κB Signaling and Ameliorates Mice's Depressive-like Behavior.

作者信息Chen Sun, Yuqing Shen, Piaopiao Liu, Yi Shen, Yue Hu, Ping Li, Ying Zhang, Fengqin Miao, Jianqiong Zhang
PMID37686068
发布时间2023-08-26
DOI10.3390/ijms241713265

实验完整度

包括体外原代小胶质细胞和BV2细胞系实验、分子机制(NF-κB、免疫共沉淀)、体内LPS和CUMS抑郁模型及行为学验证,多层次证据支持结论。

主要模型

原代培养小胶质细胞(来自WT和Nlrc5−/−小鼠) BV2小胶质细胞系(shNlrc5敲低) LPS诱导抑郁小鼠模型 CUMS诱导抑郁小鼠模型

重点核对

LPS浓度:10 ng/mL和100 ng/mL(体外);体内1 mg/kg腹腔注射 Nlrc5敲除或敲低效率验证 处理时间:LPS处理8h和24h(体外),小鼠LPS注射5天,CUMS持续35天 行为学测试:OFT、SPT、TST、FST 海马组织中Iba-1阳性小胶质细胞计数和促炎因子表达

摘要

小胶质细胞被认为是中枢免疫微环境的关键免疫效应细胞,其失调与神经炎症和情绪障碍有关。核苷酸结合寡聚化结构域样受体家族含caspase募集结构域蛋白5(NLRC5)是Nod样受体家族的新成员。近期研究表明,NLRC5在小胶质细胞中表达。然而,NLRC5在小胶质细胞活化中的确切作用及其在抑郁症中的功能尚未被研究。在此,我们发现降低NLRC5减少了脂多糖(LPS)诱导的原代培养小胶质细胞和小胶质细胞系中促炎细胞因子(IL-1β、IL-6和TNF-α)的分泌,但在骨髓来源巨噬细胞(BMDM)中无此效应。更详细地说,降低NLRC5通过减弱IKKα/β磷酸化和抑制NF-κB信号传导,减少了LPS诱导的细胞因子分泌。此外,在LPS或慢性不可预测轻度应激(CUMS)诱导的抑郁小鼠海马中,Nlrc5的表达增加。与体外研究结果一致,Nlrc5缺陷抑制了小鼠海马中的小胶质细胞活化,并改善了LPS或CUMS诱导的抑郁样行为。总之,我们证明了NLRC5在LPS诱导的小胶质细胞活化以及LPS或CUMS诱导的抑郁小鼠模型中的关键作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
NLRC5在小胶质细胞活化中的作用及其在抑郁症病理中的功能是什么?
核心机制
NLRC5通过与IKKα/β结合并促进其磷酸化,激活NF-κB信号通路,增强促炎细胞因子转录和分泌,从而促进小胶质细胞活化。
主要证据
原代小胶质细胞和BV2细胞中Nlrc5敲低抑制LPS诱导的促炎因子表达;NF-κB荧光素酶报告基因和Western blot显示p65核转位及IKKα/β磷酸化减弱;免疫共沉淀显示NLRC5与IKKα/β结合增加。体内Nlrc5敲除抑制LPS或CUMS诱导的小胶质细胞活化和抑郁样行为。
研究意义
研究表明靶向NLRC5可能为抑郁症的未来治疗提供新思路。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证NLRC5对LPS诱导的原代小胶质细胞炎症反应的影响

评估NLRC5是否调节原代小胶质细胞对LPS的促炎细胞因子产生。

从WT和Nlrc5−/−小鼠分离原代小胶质细胞,用10或100 ng/mL LPS处理8h和24h,检测Il-1b、Il-6、Tnf-a mRNA和IL-1β分泌。

2

验证NLRC5对LPS诱导的BMDM炎症反应的影响

比较NLRC5在巨噬细胞中的功能,确定其作用是否具有细胞类型特异性。

从WT和Nlrc5−/−小鼠分离BMDM,用LPS处理后检测促炎因子表达和IL-1β分泌。

3

验证NLRC5对NF-κB信号通路的影响

确定NLRC5是否通过NF-κB信号通路促进小胶质细胞活化。

在BV2-shCtrl和BV2-shNlrc5细胞中转染NF-κB荧光素酶报告质粒,检测LPS刺激后的荧光素酶活性;通过Western blot检测p65核转位和IKKα/β、IκB磷酸化。

4

验证NLRC5对IKKα/β磷酸化的作用及直接结合

探究NLRC5调控NF-κB的上游分子机制。

通过Western blot检测p-IKKα/β和p-IκB;通过免疫共沉淀检测NLRC5与IKKα/β的结合。

5

评估NLRC5敲除对抑郁小鼠模型行为的影响

确定NLRC5缺乏是否改善LPS或CUMS诱导的抑郁样行为。

构建LPS和CUMS抑郁小鼠模型,进行OFT、SPT、TST和FST行为测试。

6

检测NLRC5敲除对海马小胶质细胞活化的影响

验证体内Nlrc5缺乏是否抑制LPS或CUMS诱导的小胶质细胞活化。

通过RT-qPCR检测海马促炎因子表达,通过免疫组化检测Iba-1阳性小胶质细胞数量。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Viva Cell BiosciencesC3110-0500
胎牛血清Gibco10099141
青霉素-链霉素Gibco15070063
粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子SigmaSRP3201
巨噬细胞集落刺激因子NovoproteinCB34
慢病毒LV-Nlrc5-RNAi和LV-scrambled-RNAi上海吉凯基因科技有限公司--
RAW264.7细胞系ProcellCL-0190
p-IKKα/β抗体Cell Signaling Technology2697
p-IκB抗体Cell Signaling Technology9246
IKKα/β抗体Abcamab178870
IκB抗体Cell Signaling Technology9242
p65抗体BD Bioscience610868
NLRC5抗体Abcamab105411
p-TAK1抗体ImmunoWayYP1522
TAK1抗体ImmunoWayYT4536
cleaved-Caspase-1 p20抗体Santa Cruz Biotechnologysc1218
β-actin抗体Sigma-AldrichA5441
Histone-3抗体Cell Signaling Technology4499
Trizol试剂SigmaT9424
IL-1β ELISA试剂盒R&D systemsMLB00C
双荧光素酶报告基因试剂盒PromegaE1910
BCA蛋白定量试剂盒Thermo Scientific23227
脂多糖SigmaL2630
抗Iba-1抗体Wako019-19741
增强型DAB过氧化物酶底物试剂盒ServicebioG1212
冷冻切片机LeicaCM1950

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
原代小胶质细胞培养
小鼠品系(WT和Nlrc5−/−),取材日龄(P0-P3),培养基成分,GM-CSF浓度(1 ng/mL)和添加频率(每2天)
阅读提示:Materials and Methods 4.2 Cell Culture
BMDM培养
小鼠品系,M-CSF浓度(20 ng/mL)和添加频率(每2天),培养周期(1周)
阅读提示:Materials and Methods 4.2 Cell Culture
BV2细胞稳转敲低构建
慢病毒种类(LV-Nlrc5-RNAi和LV-scrambled-RNAi),单克隆筛选方法
阅读提示:Materials and Methods 4.2 Cell Culture
LPS刺激实验
LPS浓度(10 ng/mL和100 ng/mL),处理时间(8h和24h)
阅读提示:Results 2.1 and Figure 1
NF-κB信号检测
转染质粒量(NF-κB reporter 1000 ng,RL-TK 80 ng),转染后LPS处理时间(48h后),检测时间(24h后)
阅读提示:Materials and Methods 4.6 Plasmid Transfection and Luciferase Reporter Assay
免疫共沉淀
裂解液、BCA定量、磁珠结合、SDS/PAGE和WB步骤
阅读提示:Materials and Methods 4.7 Immunoprecipitation
LPS抑郁模型
LPS剂量(1 mg/kg)、给药方式(腹腔注射)、给药天数(连续5天)
阅读提示:Materials and Methods 4.8 Mouse Model
CUMS抑郁模型
应激原类型(食物/水剥夺、光照颠倒、热/冷刺激),每天2-3次,持续35天
阅读提示:Materials and Methods 4.8 Mouse Model
行为学测试
OFT测试时间(20分钟),SPT蔗糖浓度(1%)和测试时间(24小时),TST测试时长(6分钟,统计中间4分钟),FST水温(25±1°C)和测试时长(6分钟,统计中间4分钟)
阅读提示:Materials and Methods 4.9 Behavior Test