建立病毒性心肌炎小鼠模型
模拟急性病毒性心肌炎,评估LIPUS的治疗效果。
雄性BALB/c小鼠腹腔注射105 TCID50 CVB3建立心肌炎模型,对照组注射PBS。
Low-intensity pulsed ultrasound attenuates cardiac inflammation of CVB3-induced viral myocarditis via regulation of caveolin-1 and MAPK pathways.
包含CVB3诱导的小鼠心肌炎模型和LPS诱导的RAW264.7细胞炎症模型,通过Western blot、免疫荧光、ELISA、超声心动图等验证了LIPUS的抗炎作用及caveolin-1/MAPK机制,并利用siRNA敲低进行功能验证。
CVB3感染的雄性BALB/c小鼠 脂多糖(LPS)处理的RAW264.7细胞
LIPUS治疗时间点:感染后第1、3、5天 LIPUS参数:频率1 MHz,占空比20%,重复频率100 Hz,输出强度0.5 W/cm² CVB3感染剂量:105 TCID50,腹腔注射 caveolin-1 siRNA转染RAW264.7细胞 检测指标:存活率、心室功能(LVEF)、心肌组织病理、炎症因子表达、caveolin-1和MAPK磷酸化
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟急性病毒性心肌炎,评估LIPUS的治疗效果。
雄性BALB/c小鼠腹腔注射105 TCID50 CVB3建立心肌炎模型,对照组注射PBS。
评估不同LIPUS治疗时间点对心肌炎小鼠的影响。
LIPUS治疗以特定参数施加于心脏,每次20分钟,分别在感染后第1天、第1/3天和第1/3/5天进行。
检测LIPUS对心肌炎小鼠心功能和心肌损伤的影响。
通过超声心动图测量LVEF、LVEDD、LVESD,检测血浆Troponin I和心脏BNP表达,评估HW/BW和心肌组织病理变化。
探索LIPUS对心脏组织炎症因子和caveolin-1/MAPK信号通路的影响。
Western blot检测心脏组织中TNF-α、IL-6、IL-1β、IFN-γ、ICAM-1、MCP-1、P-caveolin-1、P-p38 MAPK、P-ERK表达。
检测LIPUS对心肌炎小鼠心脏巨噬细胞浸润的影响。
通过免疫荧光染色检测CD68+巨噬细胞浸润。
模拟体内炎症反应,验证LIPUS对巨噬细胞炎症反应的直接作用及机制。
RAW264.7细胞用LPS刺激,然后接受LIPUS处理,检测炎症因子和信号通路蛋白。进一步用caveolin-1 siRNA转染以验证caveolin-1的作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| LIPUS治疗 | Sonopuls 190 | Enraf-Nonius BV | -- |
| ELISA | 小鼠心肌肌钙蛋白I ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M0086c |
| RT-PCR | TRIzol试剂 | Invitrogen Corporation | -- |
| RevertAid RT逆转录试剂盒 | Thermo fisher | -- | |
| SYBR Green I 预混液 | Roche | -- | |
| LightCycler® 480系统 | Roche | -- | |
| Western blot | 兔抗磷酸化caveolin-1抗体 | Cell signaling technology | 3251 |
| 兔抗磷酸化p38 MAPK抗体 | Cell signaling technology | 4511 | |
| 兔抗p38 MAPK抗体 | Cell signaling technology | 8690 | |
| 兔抗磷酸化p44/42 MAPK (Erk1/2)抗体 | Cell signaling technology | 4370 | |
| 兔抗p44/42 MAPK (Erk1/2)抗体 | Cell signaling technology | 4695 | |
| 小鼠抗IL-6抗体 | Abcam | ab9324 | |
| 兔抗GAPDH抗体 | Abcam | ab181602 | |
| 兔抗IFN-γ抗体 | Abcam | ab9918 | |
| 兔抗IL-1β抗体 | Bioworld | BS6067 | |
| 小鼠抗TNF-α抗体 | Proteintech | 60291 | |
| 兔抗caveolin-1抗体 | Proteintech | 16447-1-AP | |
| 兔抗ICAM抗体 | Proteintech | 10020 | |
| 小鼠抗MCP-1抗体 | Proteintech | 25542 | |
| HRP标记的山羊抗小鼠二抗 | biosharp | BL001A | |
| HRP标记的山羊抗兔二抗 | biosharp | BL003A | |
| 免疫荧光 | 抗CD68一抗 | Proteintech | 25747-1-AP |
| FITC标记的山羊抗兔IgG | Yeasen | 33107ES60 | |
| 4',6-二脒基-2-苯基吲哚 | beyotime | C1005 | |
| 细胞培养 | RPMI1640培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 细胞处理 | 脂多糖 | -- | -- |
| 细胞转染 | Lipofectamine® 2000试剂 | Invitrogen | -- |
| 动物实验 | vevo1100心血管研究超声机 | Visualsonics | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系(雄性BALB/c)、周龄(4周),CVB3剂量(105 TCID50),接种途径(腹腔注射),接种时间(5周龄)。 阅读提示:Materials and Methods 2.1 Animal preparation 和 2.2 Myocarditis animal model |
| LIPUS治疗 | LIPUS参数(频率1 MHz,占空比20%,重复频率100 Hz,输出强度0.5 W/cm²),治疗时间(20分钟/天),部位(心脏),治疗时间点(第1、3、5天),动物麻醉(1.2%异氟烷)。 阅读提示:Materials and Methods 2.3 Low-intensity pulsed ultrasound therapy 和 2.4 Group |
| 超声心动图 | 测量时间点(感染后第14天),麻醉(1%-1.5%异氟烷),测量指标(LVEDd、LVESd、LVEF),操作者盲法。 阅读提示:Materials and Methods 2.6 Echocardiographic evaluation |
| 炎症因子检测 | 组织样本采集时间点(第7天和第14天),Western blot抗体及稀释度,内参(GAPDH)。 阅读提示:Materials and Methods 2.11 Western blotting |
| 体外细胞实验 | RAW264.7细胞培养条件(RPMI1640+10% FBS),LPS处理浓度(100 ng/mL)和时间(12小时),LIPUS处理,siRNA转染条件(Lipofectamine 2000,6小时)。 阅读提示:Materials and Methods 2.13 Cellular experiment |