低强度脉冲超声通过调控caveolin-1和MAPK通路减轻CVB3诱导的病毒性心肌炎的心脏炎症

Low-intensity pulsed ultrasound attenuates cardiac inflammation of CVB3-induced viral myocarditis via regulation of caveolin-1 and MAPK pathways.

作者信息Cheng Zheng, Sen-Min Wu, Hao Lian, Yuan-Zheng Lin, Rong Zhuang, Saroj Thapa, Quan-Zhi Chen, Yi-Fan Chen, Jia-Feng Lin
PMID30592150
发布时间2019-03
DOI10.1111/jcmm.14098

实验完整度

高

包含CVB3诱导的小鼠心肌炎模型和LPS诱导的RAW264.7细胞炎症模型,通过Western blot、免疫荧光、ELISA、超声心动图等验证了LIPUS的抗炎作用及caveolin-1/MAPK机制,并利用siRNA敲低进行功能验证。

主要模型

CVB3感染的雄性BALB/c小鼠 脂多糖(LPS)处理的RAW264.7细胞

重点核对

LIPUS治疗时间点:感染后第1、3、5天 LIPUS参数:频率1 MHz,占空比20%,重复频率100 Hz,输出强度0.5 W/cm² CVB3感染剂量:105 TCID50,腹腔注射 caveolin-1 siRNA转染RAW264.7细胞 检测指标:存活率、心室功能(LVEF)、心肌组织病理、炎症因子表达、caveolin-1和MAPK磷酸化

摘要

急性病毒性心肌炎引发的剧烈免疫活动导致大量心肌细胞丢失,临床上患者预后不良。低强度脉冲超声(LIPUS)是治疗骨关节病的有效方式,最近被证实在多种疾病中调节过度活跃的炎症反应。在此,我们旨在研究LIPUS是否通过协调炎症反应减轻柯萨奇病毒B3(CVB3)感染诱导的损伤。雄性BALB/c小鼠腹腔接种CVB3建立急性病毒性心肌炎模型。分别在接种后第1天、第1、3天和第1、3、5天给予LIPUS治疗。所有小鼠随访14天。第1、3、5天LIPUS治疗显著提高了CVB3感染小鼠的存活率,减轻了心室功能障碍,改善了心脏组织病理损伤。Western blotting分析显示,第1、3、5天LIPUS治疗降低了促炎细胞因子,增加了caveolin-1的活化,并抑制了心脏组织中p38丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)和细胞外信号调节激酶(ERK)信号。用脂多糖(LPS)处理RAW264.7细胞以模拟体内增强的炎症反应。LIPUS处理RAW264.7细胞抑制了促炎细胞因子的表达,激活了caveolin-1,并抑制了p38 MAPK和ERK信号。用caveolin-1 siRNA转染RAW264.7细胞减弱了LIPUS处理对促炎细胞因子和MAPK信号的抑制。总之,我们首次证明LIPUS治疗减轻了急性病毒性心肌炎期间剧烈的炎症反应。其潜在机制可能是激活caveolin-1和抑制MAPK信号。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
LIPUS治疗是否能够减轻CVB3诱导的急性病毒性心肌炎中的剧烈炎症反应,其潜在分子机制是什么?
核心机制
LIPUS通过激活caveolin-1并抑制p38 MAPK和ERK信号通路,从而减轻炎症反应。
主要证据
在CVB3感染小鼠和LPS处理的RAW264.7细胞中,LIPUS提高了存活率、改善了心脏功能和病理损伤,降低了促炎细胞因子,且caveolin-1 siRNA敲低逆转了LIPUS对MAPK信号的抑制。
研究意义
为病毒性心肌炎提供了一种新的、有前景的非侵入性治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立病毒性心肌炎小鼠模型

模拟急性病毒性心肌炎,评估LIPUS的治疗效果。

雄性BALB/c小鼠腹腔注射105 TCID50 CVB3建立心肌炎模型,对照组注射PBS。

2

LIPUS治疗

评估不同LIPUS治疗时间点对心肌炎小鼠的影响。

LIPUS治疗以特定参数施加于心脏,每次20分钟,分别在感染后第1天、第1/3天和第1/3/5天进行。

3

评估心脏功能与损伤

检测LIPUS对心肌炎小鼠心功能和心肌损伤的影响。

通过超声心动图测量LVEF、LVEDD、LVESD,检测血浆Troponin I和心脏BNP表达,评估HW/BW和心肌组织病理变化。

4

检测炎症因子和信号通路蛋白表达

探索LIPUS对心脏组织炎症因子和caveolin-1/MAPK信号通路的影响。

Western blot检测心脏组织中TNF-α、IL-6、IL-1β、IFN-γ、ICAM-1、MCP-1、P-caveolin-1、P-p38 MAPK、P-ERK表达。

5

评估巨噬细胞浸润

检测LIPUS对心肌炎小鼠心脏巨噬细胞浸润的影响。

通过免疫荧光染色检测CD68+巨噬细胞浸润。

6

体外验证LIPUS对巨噬细胞的作用

模拟体内炎症反应,验证LIPUS对巨噬细胞炎症反应的直接作用及机制。

RAW264.7细胞用LPS刺激,然后接受LIPUS处理,检测炎症因子和信号通路蛋白。进一步用caveolin-1 siRNA转染以验证caveolin-1的作用。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证细胞功能变化
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
Sonopuls 190Enraf-Nonius BV--
小鼠心肌肌钙蛋白I ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-M0086c
TRIzol试剂Invitrogen Corporation--
RevertAid RT逆转录试剂盒Thermo fisher--
SYBR Green I 预混液Roche--
LightCycler® 480系统Roche--
兔抗磷酸化caveolin-1抗体Cell signaling technology3251
兔抗磷酸化p38 MAPK抗体Cell signaling technology4511
兔抗p38 MAPK抗体Cell signaling technology8690
兔抗磷酸化p44/42 MAPK (Erk1/2)抗体Cell signaling technology4370
兔抗p44/42 MAPK (Erk1/2)抗体Cell signaling technology4695
小鼠抗IL-6抗体Abcamab9324
兔抗GAPDH抗体Abcamab181602
兔抗IFN-γ抗体Abcamab9918
兔抗IL-1β抗体BioworldBS6067
小鼠抗TNF-α抗体Proteintech60291
兔抗caveolin-1抗体Proteintech16447-1-AP
兔抗ICAM抗体Proteintech10020
小鼠抗MCP-1抗体Proteintech25542
HRP标记的山羊抗小鼠二抗biosharpBL001A
HRP标记的山羊抗兔二抗biosharpBL003A
抗CD68一抗Proteintech25747-1-AP
FITC标记的山羊抗兔IgGYeasen33107ES60
4',6-二脒基-2-苯基吲哚beyotimeC1005
RPMI1640培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
脂多糖----
Lipofectamine® 2000试剂Invitrogen--
vevo1100心血管研究超声机Visualsonics--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系(雄性BALB/c)、周龄(4周),CVB3剂量(105 TCID50),接种途径(腹腔注射),接种时间(5周龄)。
阅读提示:Materials and Methods 2.1 Animal preparation 和 2.2 Myocarditis animal model
LIPUS治疗
LIPUS参数(频率1 MHz,占空比20%,重复频率100 Hz,输出强度0.5 W/cm²),治疗时间(20分钟/天),部位(心脏),治疗时间点(第1、3、5天),动物麻醉(1.2%异氟烷)。
阅读提示:Materials and Methods 2.3 Low-intensity pulsed ultrasound therapy 和 2.4 Group
超声心动图
测量时间点(感染后第14天),麻醉(1%-1.5%异氟烷),测量指标(LVEDd、LVESd、LVEF),操作者盲法。
阅读提示:Materials and Methods 2.6 Echocardiographic evaluation
炎症因子检测
组织样本采集时间点(第7天和第14天),Western blot抗体及稀释度,内参(GAPDH)。
阅读提示:Materials and Methods 2.11 Western blotting
体外细胞实验
RAW264.7细胞培养条件(RPMI1640+10% FBS),LPS处理浓度(100 ng/mL)和时间(12小时),LIPUS处理,siRNA转染条件(Lipofectamine 2000,6小时)。
阅读提示:Materials and Methods 2.13 Cellular experiment