双重功能ROS响应性水凝胶通过增强软骨修复和减轻炎症缓解颞下颌关节骨关节炎

Dual-functional ROS-responsive hydrogel alleviates temporomandibular joint osteoarthritis by enhancing cartilage repair and mitigating inflammation.

作者信息Yiwen Kuang, Bingqiang Hua, Xiaoping Ye, Yujin Zhao, Meng Yu, Xianwen Liu
PMID40704013
发布时间2025-07-15
DOI10.1016/j.mtbio.2025.102103

实验完整度

包含水凝胶合成表征、体外细胞实验(CCK-8、ROS检测、qPCR、Western blot)和体内大鼠PDE模型验证,并进行了机制验证(NF-κB通路抑制)。

主要模型

大鼠髁突软骨细胞(原代) 大鼠TMJOA模型(部分关节盘切除术) Sprague-Dawley大鼠

重点核对

水凝胶的ROS响应性降解和FGF18释放行为(10 μM H2O2 vs PBS) IL-1β诱导的髁突软骨细胞炎症模型中的处理浓度和时间 大鼠TMJOA模型中水凝胶注射剂量(50 μL,100 μg/mL FGF18)和给药时间点 NF-κB通路相关蛋白(p-IKK、p-p65)的表达变化

摘要

颞下颌关节骨关节炎(TMJOA)是一种退行性疾病,其特征是不同程度的炎症性软骨退化和软骨下骨侵蚀。目前的临床治疗主要侧重于症状缓解,如疼痛管理,且尚无改善骨关节炎(OA)病情的药物(DMOADs)被监管机构批准广泛用于临床。尽管成纤维细胞生长因子18(FGF18)在临床试验中通过刺激软骨再生显示出作为DMOADs的巨大潜力,但其在关节软骨中诱导合成代谢反应的功效受到炎症条件的显著限制。在本研究中,我们使用一种创新的水凝胶递送FGF18,该水凝胶在富含活性氧(ROS)的TMJOA部位发生响应性降解,持续递送软骨修复因子FGF18并消耗ROS,进一步抵消炎症因子对FGF18软骨修复能力的限制,从而阻碍TMJOA的进展。这是首次尝试用FGF18阻碍TMJOA进展,并证明了水凝胶在降低炎症水平和促进TMJOA环境中软骨修复方面的双重功能。这一发现解决了FGF18在临床应用中保留时间短的局限性,也为通过克服炎症环境改善关节软骨修复提供了新策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
能否通过ROS响应性水凝胶递送FGF18并同时消耗ROS,克服炎症环境对FGF18软骨修复能力的限制,从而缓解TMJOA进展?
核心机制
FGF18/THG水凝胶通过ROS响应性降解消耗ROS,释放FGF18和GA,协同抑制NF-κB信号通路,减少炎症因子表达,促进软骨基质合成,抑制基质降解,从而缓解TMJOA。
主要证据
体外IL-1β诱导的软骨细胞实验中,FGF18/THG显著降低ROS水平,上调Col2和Acan表达,下调Adamts5和Mmp13;体内PDE大鼠模型中,FGF18/THG注射改善了软骨结构,降低了OARSI评分,免疫组化显示COL2和ACAN增加,ADAMTS5和MMP13减少,并抑制p-IKK和p-p65的表达。
研究意义
该研究提供了一种通过克服炎症环境改善关节软骨修复的新策略,有望成为TMJOA的治疗方法,并为其他形式的OA治疗提供参考。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

合成与表征THG水凝胶

验证HA-GA共聚物和TSPBA交联剂合成成功,并表征水凝胶的物理化学性质及ROS响应性降解行为。

通过NHS/EDC偶联反应合成HA-GA,通过亲核取代反应合成TSPBA;用1H NMR验证结构;将HA-GA和TSPBA混合形成THG水凝胶,用SEM观察微观结构,流变学测试评估机械性能,并在有无H2O2的PBS中评估降解和FGF18释放。

2

分离培养髁突软骨细胞及细胞毒性评估

获取原代髁突软骨细胞,并评估FGF18/THG对细胞活力的影响以确保生物相容性。

从4周龄雌性SD大鼠分离髁突软骨,消化后培养至P2代。用CCK-8检测不同处理(FGF18、THG、FGF18/THG)下24h和48h的细胞活性。

3

体外炎症模型及抗氧化评估

建立IL-1β诱导的炎症软骨细胞模型,评估FGF18/THG对ROS水平和抗氧化酶表达的影响。

用IL-1β处理P2代软骨细胞诱导炎症,共培养FGF18、THG或FGF18/THG。使用DCFH-DA探针检测ROS,用免疫荧光和qPCR检测CAT和SOD1表达。

4

评估FGF18/THG对软骨基质合成和降解的影响

验证FGF18/THG是否能促进软骨基质合成并抑制降解。

在IL-1β诱导的软骨细胞中,用RT-qPCR和Western blot检测Col2、Acan、Adamts5、Mmp13的表达。

5

大鼠TMJOA模型建立及体内药效评估

在体内验证FGF18/THG对TMJOA的治疗效果。

对SD大鼠进行部分关节盘切除术(PDE)建立TMJOA模型,术后4周注射PBS、FGF18、THG或FGF18/THG,8周后取材进行大体观察、组织学染色和免疫组化分析。

6

机制验证:抑制NF-κB通路

验证FGF18/THG是否通过抑制NF-κB信号通路发挥抗炎和软骨保护作用。

通过免疫组化检测体内p-IKK表达,并通过Western blot和免疫荧光检测体外软骨细胞中p-IKK、p-p65及下游炎症因子(TNF-α、IL-6)的表达和核转位。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
透明质酸钠(分子量100 kDa)----
N-羟基琥珀酰亚胺----
1-乙基-3-(3-二甲氨基丙基)碳二亚胺盐酸盐----
没食子酸----
4-(溴甲基)苯硼酸----
FGF18重组蛋白MCEHY-P7124
FGF18 ELISA试剂盒FineTestER2031
胰蛋白酶Sigma--
II型胶原酶SigmaV900892
DMEM/F12培养基Gibco--
胎牛血清ExCell Bio--
青霉素Gibco--
链霉素----
CCK-8试剂盒APExBIOK1081
白介素-1βPeproTech211-11B
DCFH-DA荧光探针BeyotimeS0033S
TRIzol试剂AGAG21102
Evo M-MLV逆转录试剂盒(含gDNA清除)AGAG11728
SYBR Green qPCR预混液AGAG11702
LightCycler 96实时荧光定量PCR仪Roche--
RIPA裂解液----
蛋白酶抑制剂混合物Beyotime--
磷酸酶抑制剂混合物Beyotime--
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime--
10%预制SDS-PAGE胶ACE--
PVDF膜Merck MilliporePR05505
牛血清白蛋白Solarbio--
COL2抗体Abcamab34712
ACAN抗体Proteintech13880-1-AP
ADAMTS5抗体Abcamab41037
MMP13抗体Proteintech18165-1-AP
磷酸化NF-κB p65抗体CST#3033
NF-κB p65抗体CST#8242
磷酸化IKKα/β抗体CST#2697
IKKβ抗体CST#8943
β-肌动蛋白抗体Biossbs-0061R
HRP标记的二抗ServicebioC1213
增强化学发光底物Merck Millipore--
化学发光成像系统Bio-Rad--
EDTA脱钙液SolarbioE1171
番红O/固绿染色试剂SolarbioG1371
DAB显色试剂盒Goldbridge--
TNF-α抗体Biossbs-10802R
IL-6抗体BosterBA4339
SOD1抗体Biossbs-1079R
CAT抗体Bosterbs-6874R
YF®488标记的山羊抗兔IgG二抗US EverbrightY6105
DAPI核酸染料Solarbio--
Leica DM IL LED显微镜Leica--
Leica DMi8荧光显微镜Leica--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
水凝胶合成与FGF18包封
HA-GA浓度6%,TSPBA浓度3%,混合体积比2:1,FGF18浓度和体积
阅读提示:Methods 2.1
体外ROS响应性释放
H2O2浓度10 μM,释放时间点,水凝胶体积,FGF18初始量
阅读提示:Methods 2.2 and Fig. 2H
原代软骨细胞分离培养
大鼠周龄、性别,消化酶浓度和时间,细胞接种密度
阅读提示:Methods 2.3
体外抗炎实验
IL-1β浓度和刺激时间,FGF18/THG处理浓度和时间
阅读提示:Methods 2.5
大鼠TMJOA模型
动物周龄、性别,PDE手术方法,注射时间点和体积,FGF18剂量
阅读提示:Methods 2.8 and Fig. 5A