趋化信号传导的分子动力学在衰老过程中协调牙髓干细胞纤维化

Molecular dynamics of chemotactic signalling orchestrates dental pulp stem cell fibrosis during aging.

作者信息Tianmeng Sun, Qing Zhong, Xiaoyi Yu, Huanyu Luo, Feilong Ren, Cangwei Liu, Peng Chen, Fabian Flores-Borja, Hongchen Sun, Zhengwen An
PMID39866843
发布时间2025-01-10
DOI10.3389/fcell.2024.1530644

实验完整度

包含单细胞转录组分析、体外分子验证(qPCR、Western blot、流式)、组织学染色(Masson、天狼星红)等至少两个独立证据层级,且涉及多种模型和方法验证。

主要模型

小鼠切牙牙髓组织(年轻成年8周龄 vs 年老12月龄) Ccrl2+巨噬细胞(SC0和SC2亚群) 纤维细胞祖细胞(FIB C1)

重点核对

小鼠年龄:年轻成年组(6-8周龄)与年老组(8-12月龄) 单细胞RNA测序数据集:GSE253259(年老组)与GSE146123(成年组,2-4月龄) 目标基因表达:Rarres2、Ccrl2、Cmklr1、Cxcl2、IL-1β 样本量:qPCR n=5,Western blot和流式n=3 统计方法:非配对t检验,数据以均值±SEM表示,p<0.05为显著

摘要

衰老常引发牙髓纤维化,导致临床后果,如对牙齿感染的易感性增加、牙齿活力受损以及对牙科干预的反应性降低。尽管其普遍存在,但该状况背后的精确分子机制仍不清楚。利用我们自己的和公开数据集的单细胞转录组分析,我们确定了Ccrl2+巨噬细胞在衰老早期阶段特别易受影响。值得注意的是,高表达RARRES2(CCRL2的独特配体)的牙髓祖细胞促进了特定巨噬细胞群体向干细胞巢的选择性募集。这一过程最终形成配体-受体复合物,与CMKLR1(一种在巨噬细胞群体中广泛表达受体)结合。这种相互作用通过RARRES2/CCRL2/CMKLR1轴驱动巨噬细胞活化和扩增。通过严格的实验验证,我们证明了干细胞巢内巨噬细胞的活化和扩增导致促炎因子分泌增加,促进衰老期间的牙髓纤维化。我们的发现揭示了牙髓衰老的复杂分子动力学,强调了免疫微环境相互作用。这项研究为通过靶向巨噬细胞和调节免疫微环境来治疗年龄相关性牙髓疾病提供了新的视角。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
牙髓衰老过程中纤维化的分子机制是什么?
核心机制
牙髓祖细胞分泌RARRES2,通过RARRES2/CCRL2/CMKLR1轴募集并激活Ccrl2+巨噬细胞,导致其分泌促炎因子(IL-1β和CXCL2),进而促进牙髓纤维化。
主要证据
单细胞转录组分析显示年老牙髓中Rarres2在纤维细胞祖细胞中上调,Ccrl2+巨噬细胞中Cxcl2和Il-1β表达增高;qPCR、Western blot和流式细胞术确认这些分子在年老牙髓中蛋白和mRNA水平升高;Masson三色和天狼星红染色显示年老组颈环区胶原纤维增多。
研究意义
揭示牙髓衰老的免疫微环境相互作用机制,为靶向巨噬细胞调节免疫微环境以治疗年龄相关牙髓疾病提供新视角和理论依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

单细胞转录组图谱分析

鉴定牙髓衰老相关的细胞类型和基因表达变化。

从年老小鼠(8-12月龄)切牙牙髓获取单细胞,并进行10X Genomics scRNA-seq;整合公共数据集(GSE146123)的成年小鼠数据,经质量控制后,使用Seurat进行聚类和注释,鉴定出6种主要细胞类型,并发现髓系细胞中衰老相关基因Cdkn1a和Sirt2上调。

2

鉴定Ccrl2+巨噬细胞易受衰老影响

确定受衰老影响的髓系细胞亚群。

对骨髓系细胞亚聚类为SC0、SC1、SC2,发现SC0和SC2中Cdkn1a和Ccrl2表达升高,鉴定为Ccrl2+巨噬细胞,并显示其对衰老的易感性。

3

验证RARRES2/CCRL2/CMKLR1轴

验证纤维细胞与巨噬细胞之间趋化信号传导的分子轴。

通过qPCR和Western blot检测年轻(8周龄)和年老(12月龄)小鼠牙髓中Ccrl2、Rarres2和Cmklr1的表达,发现年老组均上调。

4

纤维细胞祖细胞分泌RARRES2招募巨噬细胞

确定分泌RARRES2的细胞类型及其对巨噬细胞募集的贡献。

将纤维细胞分为7个亚群,发现C1亚群高表达Rarres2以及祖细胞标记物Smoc2、Sfrp2、Igfbp3,并通过Monocle轨迹分析确认其为祖细胞。配体-受体分析表明C1与Ccrl2+巨噬细胞通过RARRES2-CCRL2相互作用增强通信。

5

检测促炎因子和纤维化

验证衰老牙髓中巨噬细胞来源的促炎因子升高并伴有纤维化。

通过qPCR、流式细胞术和Western blot检测年老牙髓中Cxcl2和IL-1β表达,确认升高。通过Masson三色和天狼星红染色显示年老组颈环区胶原纤维增多,提示干细胞巢纤维化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
10X Chromium系统10X Genomics--
单细胞5'文库试剂盒10X Genomics--
RNAeasy™动物RNA提取试剂盒(带离心柱)BeyotimeR0027
逆转录试剂盒YEASEN11141ES60
Hieff qPCR SYBR Green预混液YEASEN11202ES03
Biorad实时荧光定量PCR检测系统Biorad--
β-肌动蛋白抗体Proteintech20536-1AP
IL-1β抗体Proteintech26048-1-AP
RARRES2抗体Proteintech10216-1-AP
CXCL2抗体Proteintech16325-1-AP
CMKLR1抗体Biossbs-10185R
CCRL2抗体BiodragonBD-PT0714
HRP偶联二抗ProteintechSA00001-2
IL-1β-PerCP 710Invitrogen46-7114-82
CXCL2抗体(多克隆山羊IgG)R&D SystemsAF-452-SP
R-PE偶联驴抗山羊IgGProteintechSA00008-3
MACSQuant Analyzer 16流式细胞仪Miltenyi Biotec--
树脂封片剂SolarbioG1346
天狼星红染色液SolarbioG1473
GraphPad Prism 8.0GraphPad--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
单细胞RNA测序
小鼠年龄(年老组8-12月龄,成年组2-4月龄)、样本数量(15只)、单细胞悬液制备(胶原酶消化,37°C,30-45分钟)、目标细胞数约10,000、测序平台(Illumina Novaseq)、质量控制参数(nFeature_RNA>500, percent.mt<20, nCount_RNA>500, log10GenesPerUMI>0.8)
阅读提示:见2.1节 Sample collections for single cell RNA-sequencing 和2.2节 Single cell RNA-seq data analysis
RT-qPCR
样本:小鼠切牙牙髓(8周龄年轻 vs 12月龄年老)、RNA提取试剂盒、逆转录试剂盒、qPCR引物序列、内参基因ACTB、样本量n=5、相对定量方法2^-ΔΔCT
阅读提示:见2.4节 RNA extraction and RT-qPCR analysis
Western blot
样本:小鼠切牙牙髓(8周龄 vs 12月龄)、蛋白裂解液、SDS-PAGE电泳、PVDF膜、封闭时间(室温1小时)、一抗孵育(4°C过夜)、二抗孵育(室温1小时)、抗体稀释度及来源(β-actin 1:2500, IL-1β 1:1000, RARRES2 1:300, CXCL2 1:1000, CMKLR1 1:1000, CCRL2 1:1000)、二抗1:10000、样本量n=3
阅读提示:见2.5节 Western blot
流式细胞术
样本:小鼠切牙牙髓(年轻 vs 年老)、固定和免疫染色步骤、抗体及稀释度(IL-1β-PerCP 710 1:100, CXCL2 1:40, Donkey Anti-Goat IgG 1:100)、分析仪器(MACSQuant Analyzer 16)、软件(FlowJo)、样本量n=3
阅读提示:见2.6节 Flow cytometry
组织学染色
组织处理(固定、脱水、包埋)、Masson三色染色各步骤时间(苏木素2-3分钟、丽春红酸性品红10分钟、磷钼酸10分钟、苯胺蓝2分钟)、天狼星红染色步骤(染色时间20分钟)、封片剂(Solarbio G1346和G1473)
阅读提示:见2.7节 Masson's trichrome staining 和2.8节 Picro sirius red staining