模型建立与表型观察
验证CXCR2缺失在不同皮肤损伤模型中的愈合表型。
对CXCR2 KO和WT小鼠进行耳洞、背部伤口和WIHN模型,观察伤口闭合、组织学变化及毛囊再生。
Granulocyte colony stimulating factor promotes scarless tissue regeneration.
包含体外细胞实验、三种皮肤损伤模型、基因敲除小鼠、单细胞RNA测序、蛋白质组学分析及功能验证和机制研究。
小鼠耳洞闭合模型 小鼠背部皮肤 wounds 模型 小鼠伤口诱导毛囊新生模型 骨髓来源单核细胞
CXCR2基因敲除小鼠 G-CSF重组蛋白或血浆注射剂量和时间 巨噬细胞极化标志物检测 NETs形成相关检测 单细胞RNA测序数据分析
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证CXCR2缺失在不同皮肤损伤模型中的愈合表型。
对CXCR2 KO和WT小鼠进行耳洞、背部伤口和WIHN模型,观察伤口闭合、组织学变化及毛囊再生。
确定Cxcr2表达的主要细胞类型及免疫细胞亚群。
使用scRNA-seq分析WT和KO小鼠损伤后皮肤组织,鉴定细胞簇并注释;流式验证中性粒细胞招募。
研究CXCR2对中性粒细胞活化和NETs形成的影响。
通过拟时序分析、免疫荧光检测NETs标志物(H3-Cit、MPO、NE)及PADI4 KO小鼠表型。
鉴定CXCR2 KO小鼠血浆中促进再生的循环因子。
通过异种共生和Luminex分析发现G-CSF升高,并验证其必要性(抗体中和)和充分性(重组蛋白注射)。
验证G-CSF对巨噬细胞极化的影响。
体外处理骨髓来源单核细胞,进行bulk RNA-seq;体内检测巨噬细胞极化标志物。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 组织学与免疫荧光 | 抗Arginase-1抗体 | Cell Signaling Technology | 93668 |
| 抗CD80抗体 | ProSci | 8679 | |
| 抗组蛋白H3抗体 | Abcam | ab5103 | |
| 免疫荧光 | 抗MPO抗体 | R&D Systems | AF3667 |
| 抗MRC1抗体 | Cell Signaling Technology | 24595 | |
| 抗F4/80抗体 | Cell Signaling Technology | 70076 | |
| 抗COX2抗体 | Abcam | ab15191 | |
| 抗iNOS抗体 | Cell Signaling Technology | 2982 | |
| 抗G-CSFR抗体 | Bioss | bs-2574R | |
| 抗CD163抗体 | Cell Signaling Technology | 68922 | |
| 抗Ly6G抗体 | BD Pharmingen | 551459 | |
| 山羊抗兔IgG二抗 Alexa Fluor 488 | Thermo Fisher | A-11008 | |
| 山羊抗大鼠IgG二抗 Alexa Fluor 647 | Thermo Fisher | A-21247 | |
| 驴抗兔IgG二抗 Alexa Fluor 555 | Thermo Fisher | A-31572 | |
| 流式细胞术 | Zombie Green细胞活力染料 | BioLegend | 423111 |
| TruStain FcX抗小鼠CD16/32 | BioLegend | 101320 | |
| 抗小鼠CD45抗体 | BioLegend | 103130 | |
| 抗小鼠F4/80抗体 | BioLegend | 123149 | |
| 抗小鼠CD11b抗体 | BioLegend | 101218 | |
| 抗小鼠GR-1抗体 | BioLegend | 127617 | |
| 细胞因子检测 | 小鼠G-CSF Quantikine ELISA试剂盒 | R&D Systems | MCS00 |
| 组织染色 | 天狼星红染色剂 | Sigma-Aldrich | 365548 |
| 凋亡检测 | DeadEnd荧光TUNEL系统 | Promega | G3250 |
| 单细胞RNA测序 | Chromium Next GEM单细胞3'试剂盒v3.1 | 10x Genomics | 1000268 |
| G-CSF去除非人源 | 磁珠偶联试剂盒 | Abcam | ab269890 |
| 组织消化 | Liberase TL研究级 | Roche | 5401020001 |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Gibco | 12633012 |
| 细胞消化 | DNA酶I | Thermo Fisher Scientific | 12633012 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系、年龄、性别、CXCR2 KO及细胞特异性敲除小鼠构建 阅读提示:STAR Methods:Mice |
| 耳洞闭合模型 | 耳洞直径、损伤工具、观察时间点、样本量 阅读提示:STAR Methods:Injury models - Ear hole closure |
| 背部伤口模型 | 伤口大小、是否stented、愈合时间、组织学染色 阅读提示:STAR Methods:Injury models - Stented small back wounds |
| WIHN模型 | 创面面积、毛囊计数方法、血浆或G-CSF注射剂量与时间 阅读提示:STAR Methods:Injury models - Wound induced hair neogenesis |
| G-CSF处理 | G-CSF浓度(50 μg/mL)、注射体积(100 μL)、注射方式(皮内)、连续注射天数 阅读提示:STAR Methods:Injury models - Wound induced hair neogenesis |
| 巨噬细胞极化检测 | 免疫荧光标志物(CD80、COX2、CD163、MRC1、ARG1)、共染F4/80、定量方法 阅读提示:STAR Methods:Histology and immunohistochemistry |
| 单细胞测序及分析 | 样本制备、消化条件、测序平台、数据分析参数(聚类分辨率) 阅读提示:STAR Methods:Single-cell gene RNA-Seq sequencing and analysis |
| 流式细胞术 | 组织消化酶和浓度、抗体组合、门控策略 阅读提示:STAR Methods:Flow cytometry |