新型miRNA novel-m0230-3p调节CSF1/CSF1R/Ras通路以调控牦牛细胞紧密连接和血-睾屏障

The Novel-m0230-3p miRNA Modulates the CSF1/CSF1R/Ras Pathway to Regulate the Cell Tight Junctions and Blood-Testis Barrier in Yak.

作者信息Qiu Yan, Qi Wang, Yong Zhang, Ligang Yuan, Junjie Hu, Xingxu Zhao
PMID39120333
期刊Cells
发布时间2024-08-05
DOI10.3390/cells13151304

实验完整度

包含RNA-seq转录组分析、双荧光素酶报告验证靶向关系、细胞转染功能实验及qRT-PCR/IF/Western blot验证,并有组织病理学和蛋白定位实验,证据层级完整。

主要模型

牦牛正常睾丸和隐睾组织样本 原代牦牛支持细胞(SCs) 293T细胞(双荧光素酶报告实验)

重点核对

隐睾与正常睾丸组织样本来源(每组n=3) novel-m0230-3p mimic/inhibitor转染浓度100 nM及时间48 h 双荧光素酶报告验证CSF1 3'-UTR结合位点 qRT-PCR验证RNA-seq差异表达基因 Western blot和IF检测CSF1、CSF1R、Occludin、ZO-1、Ras表达

摘要

牦牛(Bos grunniens)是中国青藏高原特有的珍贵家畜动物,繁殖率低。隐睾是雄性牦牛不育的主要原因之一。与正常睾丸相比,隐睾中支持细胞(SCs)的紧密连接(TJs)和血-睾屏障(BTB)的完整性均被破坏。MicroRNA是长度约19-25个核苷酸的发夹结构衍生RNA,参与多种生物过程。大量研究表明microRNA参与牦牛的生殖生理。在本研究中,我们执行了RNA测序(RNA-seq)来描述正常睾丸和隐睾牦牛中mRNA和microRNA的表达谱,以鉴定差异表达基因。使用GO和KEGG分析来鉴定差异表达microRNA的靶基因主要参与的生物过程和信号通路。结果发现,novel-m0230-3p是区分隐睾和正常睾丸的重要miRNA,它在隐睾中下调,p < 0.05。Novel-m0230-3p及其靶基因CSF1均显著参与细胞粘附和紧密连接的调控。通过双荧光素酶报告系统验证了novel-m0230-3p与CSF1的结合位点。然后,将novel-m0230-3p的mimics和inhibitors分别体外转染到支持细胞中。使用qRT-PCR、免疫荧光(IF)和Western blotting的进一步分析证实,细胞粘附和紧密连接相关蛋白Occludin和ZO-1的表达均发生变化。具体来说,转染novel-m0230-3p mimics后,支持细胞中Occludin和ZO-1的mRNA和蛋白表达水平均降低,而转染inhibitors后则升高,p < 0.05。这些是通过CSF1/CSF1R/Ras信号通路实现的。总之,我们的研究结果表明在牦牛支持细胞中存在一个涉及CSF1/CSF1R/Ras信号通路的负性miRNA-mRNA调控网络。这些结果为CSF1的分子机制提供了新的见解,并提示novel-m0230-3p及其靶蛋白CSF1可作为牦牛隐睾的潜在治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
novel-m0230-3p是否通过调控CSF1及其下游信号通路影响牦牛支持细胞的紧密连接和血-睾屏障,从而参与隐睾发生?
核心机制
novel-m0230-3p靶向抑制CSF1,进而通过CSF1/CSF1R/Ras信号通路下调支持细胞中紧密连接蛋白Occludin和ZO-1的表达,破坏细胞紧密连接和血-睾屏障完整性。
主要证据
RNA-seq显示隐睾中novel-m0230-3p下调、CSF1上调;双荧光素酶报告验证直接结合;细胞转染mimic/inhibitor后qRT-PCR、Western blot和IF证实CSF1、CSF1R、Ras、Occludin和ZO-1表达相应变化。
研究意义
揭示CSF1在牦牛隐睾中的分子机制,提出novel-m0230-3p和CSF1作为牦牛隐睾潜在治疗靶点,为理解牦牛睾丸发育和雄性生育力提供理论基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

组织病理学分析

比较正常睾丸和隐睾的组织学差异,评估BTB损伤

对正常睾丸和隐睾组织进行H&E染色,观察生精小管结构、支持细胞和间质细胞形态,并检测睾丸重量。

2

RNA-seq转录组分析

鉴定正常睾丸和隐睾中差异表达的mRNA和miRNA,并预测其功能

提取总RNA,构建miRNA和mRNA文库,进行RNA-seq测序,使用edgeR筛选DE mRNAs和miRNAs,并进行GO和KEGG富集分析。

3

qRT-PCR验证RNA-seq结果

验证RNA-seq数据的可靠性

随机选取12个DE mRNAs和6个DE miRNAs进行qRT-PCR,比较表达趋势。

4

双荧光素酶报告实验

验证novel-m0230-3p与CSF1 3'-UTR的直接结合

构建CSF1 3'-UTR野生型和突变型荧光素酶报告质粒,与novel-m0230-3p mimic或mimic NC共转染293T细胞,检测荧光素酶活性。

5

支持细胞分离与纯度鉴定

获得高纯度的原代牦牛支持细胞用于后续功能实验

从牦牛睾丸组织分离支持细胞,培养后通过免疫荧光检测SOX9和WT1表达以鉴定纯度。

6

细胞转染及功能验证

研究novel-m0230-3p对支持细胞中CSF1及其下游通路和紧密连接蛋白表达的影响

将novel-m0230-3p mimic或inhibitor转染至支持细胞,通过qRT-PCR、Western blot和免疫荧光检测相关基因和蛋白表达变化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
pmirGLO克隆载体----
双荧光素酶报告分析试剂盒Promega--
Lipofectamine 2000转染试剂Thermo Fisher--
IV型胶原酶----
胰蛋白酶----
杜氏改良Eagle培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素----
Trlquick试剂SolarbioR1100
TruSeq小RNA样本制备试剂盒Illumina--
Ribo-Zero rRNA去除试剂盒Illumina--
NanoDrop分光光度计Thermo Fisher--
安捷伦2100生物分析仪Agilent Technologies--
Evo M-MLV逆转录试剂盒(含gDNA清除)Accurate Biology--
miRNA第一链cDNA合成试剂盒Accurate Biology--
2×SYBR Green qPCR预混液BimakeB21202
LightCycler 96实时荧光定量PCR仪Roche--
抗β-catenin抗体Proteintech51067-2-AP
抗ZO1抗体Proteintech21773-1-AP
山羊抗兔IgG H&L(Alexa Fluor 647)Abcamab150079
山羊抗小鼠IgG H&L(Alexa Fluor 488)Abcamab150113
DAPI染料Sigma-AldrichD9542
HistoCore MULTICUT切片机LEICA--
抗荧光淬灭封片剂beyotimeP0126
RIPA裂解液SolarbioR0010
PVDF膜MilliporeIPVH00010
兔抗MCSF抗体AbmartT55362
兔抗CSF1R抗体AbmartTP70252
兔抗Ras抗体Abcamab52939
兔抗ZO1抗体----
兔抗Occludin抗体AbmartT55997
小鼠抗GAPDH抗体AbmartM20006
HRP标记的山羊抗兔二抗Biossbs-0295G-HRP
HRP标记的山羊抗小鼠二抗Biossbs-0368G-HRP
增强化学发光液Abnova--
兔抗WT1抗体Proteintech12609-1-AP
兔抗SOX9抗体Biossbs-10725R
兔抗MCSF抗体AbmartT55362

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
组织病理学分析
牦牛正常睾丸和隐睾样本来源、数量(每组n=3)、固定和切片方法
阅读提示:Methods 2.1和2.6,Figure 1
RNA-seq
RNA提取方法、文库构建试剂盒、测序平台、差异表达筛选标准(|log2FC|>1, p<0.05)
阅读提示:Methods 2.2-2.4
双荧光素酶报告实验
293T细胞、转染试剂Lipofectamine 2000、质粒浓度(400 ng)、mimic浓度(100 nM)、转染时间(48 h)
阅读提示:Methods 2.5,Figure 6
支持细胞分离与培养
组织来源、消化条件(1% IV型胶原酶和0.25%胰蛋白酶,37℃ 0.5 h)、培养基(高糖DMEM+10% FBS)
阅读提示:Methods 2.7
细胞转染与功能实验
mimic/inhibitor浓度(100 nM)、转染时间(48 h)、检测方法(qRT-PCR、Western blot、IF)及抗体信息
阅读提示:Methods 2.8-2.10,Figure 7和8