小鼠肝脏再生模型建立与表型观察
观察Shp2缺失后肝细胞增殖模式的变化,寻找补偿性增殖的细胞群体。
对WT和SKO小鼠进行2/3部分肝切除,在不同时间点收集肝脏,进行免疫荧光染色和H&E染色,检测Ki67、CD133等标志物。
Identification of CD133+ intercellsomes in intercellular communication to offset intracellular signal deficit.
包含多个证据层级:小鼠肝脏再生模型、细胞系实验、类器官培养、单细胞RNA测序和超微结构分析,并进行了CD133功能缺失验证。
小鼠部分肝切除模型 Shp2缺陷原代肝细胞 PLC/PRF/5肝癌细胞系 小鼠肠道类器官
Shp2缺失(Alb-Cre;Shp2flox/flox)或MET缺失小鼠模型 Shp2抑制剂SHP099(10 μM)或MEK抑制剂Trametinib(10 nM)处理 CD133+ intercellsome的分离与RNA含量分析 单细胞RNA测序分析肝细胞IEG表达 Prom1敲除(DKO)小鼠及类器官实验
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
观察Shp2缺失后肝细胞增殖模式的变化,寻找补偿性增殖的细胞群体。
对WT和SKO小鼠进行2/3部分肝切除,在不同时间点收集肝脏,进行免疫荧光染色和H&E染色,检测Ki67、CD133等标志物。
确定CD133+细胞簇的来源是单一祖细胞克隆还是多个成熟肝细胞的聚集。
通过尾静脉水动力注射转座子系统标记肝细胞,结合部分肝切除,分析GFP标记的克隆大小和组成。
验证CD133上调是否是对增殖信号缺陷的普遍应激反应。
在MET缺陷小鼠中诱导损伤,并用Shp2或MEK抑制剂处理多种细胞系,检测CD133表达。
明确CD133在细胞内的定位,并分离CD133+囊泡以分析其特征。
用STORM超分辨率显微镜和免疫金电子显微镜观察CD133定位;用抗CD133抗体磁珠从SKO肝组织和PLC细胞中分离CD133+囊泡。
确定CD133+囊泡中携带的RNA种类,以推测其功能。
对分离的CD133+囊泡进行RNA电泳、RT-qPCR和RNA-seq,分析mRNA和miRNA含量,并与外泌体比较。
证明CD133+囊泡能够在细胞间转移。
将稳定表达CD133-Myc或CD133-GFP的细胞与mCherry标记细胞混合培养,通过免疫荧光和CLEM检测CD133融合蛋白的转移。
分析CD133+和CD133-肝细胞中IEG表达多样性,验证mRNA交换假说。
对PHx后4小时和2天的WT和SKO肝细胞进行scRNA-seq,分析IEG表达,计算熵和变异,并进行数学模拟。
验证CD133在信号缺陷下维持细胞增殖的功能。
用Prom1 KO小鼠与Shp2 KO杂交,或用AAV-Cre在肝脏敲除Shp2,分析肝细胞增殖;分离原代肝细胞和肠道隐窝细胞培养,观察类器官增殖。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | SHP099 | -- | CT-SHP099 |
| 曲美替尼 | APExBIO | A3018 | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| DMEM-F12培养基 | Gibco | -- | |
| Williams' E培养基 | Gibco | -- | |
| 原代肝细胞维持添加物 | Gibco | CM4000 | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 马血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 人EGF | Gemini | -- | |
| 氢化可的松 | -- | -- | |
| 霍乱毒素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 人胰岛素 | Gemini | -- | |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| CD133-Myc-Tag表达载体 | SinoBiological | HG15024-CM | |
| 免疫染色 | Ki67抗体 | eBioscience | 14-5698-80 |
| HNF4α抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-8987 | |
| 小鼠CD133抗体 | eBioscience | 14-1331-82 | |
| 人CD133抗体 | CST | 86781 | |
| E-钙黏蛋白抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-7870 | |
| GFP抗体 | Nacalai Tesque | 04404-84 | |
| Shp2抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-280 | |
| Porcupine抗体 | abcam | ab105543 | |
| β-连环蛋白抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-7199 | |
| CHMP2B抗体 | abcam | ab157208 | |
| HuR抗体 | abcam | ab200342 | |
| HuR抗体 | proteintech | 66549-1-Ig | |
| VE-钙黏蛋白抗体 | R&D SYSTEMS | AF1002 | |
| BrdU抗体 | BD Biosciences | 555627 | |
| PECAM抗体 | eBioscience | 13-0311-81 | |
| HGF抗体 | abcam | ab83760 | |
| GFAP抗体 | Dako | Z0334 | |
| EpCAM抗体 | BD Biosciences | 552370 | |
| Sox9抗体 | Millipore | AB5535 | |
| CD44v6抗体 | GeneTex | GTX75661 | |
| AFP抗体 | R&D SYSTEMS | AF5369 | |
| 免疫印迹 | EpCAM抗体 | Bioss | bs-1513R |
| HNF4α抗体 | GeneTex | GTX89532 | |
| GAPDH抗体 | CST | 5174 | |
| β-肌动蛋白抗体 | Sigma | A5316 | |
| Stat3抗体 | CST | 9132 | |
| Erk1/2抗体 | CST | 4695 | |
| 细胞周期蛋白D1抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-20044 | |
| RNA原位杂交 | HCR RNA-FISH探针 | Molecular Instruments | -- |
| ProtectRNA RNase抑制剂 | SIGMA | R7397 | |
| 肝细胞分离 | 胶原酶H | Roche | 11074059001 |
| DNaseI | Roche | 10104159001 | |
| IV型胶原酶 | Gibco | 17104019 | |
| 类器官培养 | 基质胶 | -- | -- |
| B27添加物 | Gibco | 17504044 | |
| N2添加物 | Gibco | 17502048 | |
| N-乙酰半胱氨酸 | -- | -- | |
| EGF | -- | -- | |
| Noggin | -- | -- | |
| R-spondin 1 | -- | -- | |
| 质粒制备 | GenElute HP无内毒素质粒大提试剂盒 | Sigma | NA0410 |
| 囊泡分离 | FITC偶联抗CD133抗体 | Invitrogen | 11-1331-82 |
| FITC选择混合液 | STEMCELL TECHNOLOGY | 18558 | |
| MACS MS柱 | Miltenyi Biotec | 130-042-201 | |
| RNeasy Plus Micro试剂盒 | QIAGEN | 74034 | |
| Anti-PE MultiSort试剂盒 | Miltenyi | 130-090-757 | |
| 外泌体分离 | 总外泌体分离试剂 | Invitrogen | -- |
| RT-qPCR | High-Capacity cDNA反转录试剂盒 | Applied Biosystems | 4368814 |
| DyNAmo Flash SYBR Green qPCR试剂盒 | Thermo Scientific | F415S | |
| 动物实验 | AAV-Cre | Penn Vector Core | -- |
| DEN | Sigma | N0258-1G | |
| BrdU | Sigma | -- | |
| 单细胞RNA-seq | Chromium单细胞3'试剂盒(v3) | 10x Genomics | -- |
| HiSeq 4000测序仪 | Illumina | -- | |
| RNA-seq | NovaSeq 6000测序仪 | Illumina | -- |
| 显微镜 | Nikon A1R TIRF STORM显微镜 | Nikon | -- |
| Leica SP8共聚焦显微镜 | Leica | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | SKO小鼠基因型(Alb-Cre;Shp2flox/flox),PHx手术年龄(8-10周),CCl4剂量(20% in 100 μl corn oil/20g体重),AAV-Cre注射剂量(2x10^11/28g体重) 阅读提示:Materials and methods - Animals |
| 药物处理条件 | SHP099浓度(10 μM for PLC, 20 μM for MCF10A),Trametinib浓度(10 nM),处理时间(2-6天) 阅读提示:Materials and methods - Cell culture and experiments |
| 原代肝细胞培养 | 胶原酶灌注方案(Collagenase H或IV),分离步骤(离心速度和时间),培养条件(Williams' Media E + supplements,胶原包被板) 阅读提示:Materials and methods - Primary hepatocyte isolation and culture |
| 肠道类器官培养 | 隐窝分离方法(EDTA处理步骤),培养条件(Matrigel,培养基添加物),Trametinib浓度(50 nM) 阅读提示:Materials and methods - Intestinal organoid culture |
| CD133+囊泡分离 | 裂解方法(肝灌注+Dounce匀浆),抗体用量,MACS分离流程,RNA提取方法(RNeasy Plus Micro Kit) 阅读提示:Materials and methods - Isolation of CD133+ vesicles |
| 单细胞RNA-seq分析 | 细胞分离(两步灌流、Percoll纯化),10x Genomics上样(5000 GEMs),测序参数,数据过滤标准(基因数200-5000,线粒体UMI<20%),分析时限定门静脉周围亚群 阅读提示:Materials and methods - Single-cell RNA library construction and sequencing, Single-cell RNA-seq data preprocessing, Detection of cell subpopulations |